РЕФЕРАТ

Отчет 171 с., 4 ч., 130 рис., 40 табл., 122 источника.

ЦЫПЛЯТА-БРОЙЛЕРЫ, ЯИЧНАЯ ПТИЦА, БЕЗОПАСНЫЕ СТИМУЛЯТОРЫ РОСТА, ФИТОЭКСТРАКТЫ, ЭФИРНЫЕ МАСЛА, ПРОБИОТИКИ, ПРЕБИОТИКИ, СИНБИОТИКИ, СОХРАННОСТЬ ПОГОЛОВЬЯ, МЯСНАЯ И ЯИЧНАЯ ПРОДУКТИВНОСТЬ ПТИЦ.

Объектом исследования являлись цыплята-бройлеры, яичная птица, кормовые добавки, включающие синбиотики и фитобиотики.

Цель работы – разработка теоретических основ и создание практических способов повышения продуктивности, неспецифической резистентности и сохранности, улучшения качества получаемой продукции цыплят-бройлеров и яичной птицы на основе введения в рацион кормовых добавок, включающих безопасные стимуляторы роста в виде синбиотиков и фитобиотиков.

Проведены научно-хозяйственные опыты и производственная проверка. В процессе выполнения работы изучены: живая масса подопытной птицы, сохранность поголовья, затраты корма на единицу продукции, мясная и яичная продуктивность птиц, развитие внутренних органов, качество мяса и яиц, переваримость и использование питательных веществ рациона птицей, обмен энергии, азота, кальция и фосфора, минерализация костной ткани, морфологический и биохимический состав крови, бактерицидная активность лейкоцитов, состояние микрофлоры толстого отдела кишечника, морфогистологическое состояние внутренних органов птиц. Определена экономическая эффективность работы.

Установлено, что использование кормовых добавок, включающих синбиотики и фитобиотики в составе комбикорма для мясной и яичной птицы, является целесообразным с биологических и экономических позиций.

ВВЕДЕНИЕ

Птицеводческая отрасль за последние десятилетия заняла лидирующие позиции в сельскохозяйственном сегменте по всему миру. Это объясняется наиболее интенсивными оборотами производства, короткими сроками воспроизводства, и, конечно же, высоким качеством получаемой продукции [1,2,3].

Производство максимального количества конкурентоспособной продукции высокого качества возможно лишь при условиях, которые учитывают биологические особенности птицы, ее физиологическое состояние, направление продуктивности и влияние на нее внешних факторов. Птица современных высокопродуктивных промышленных кроссов, отличается повышенной потребностью в питательных и биологически активных веществах, интенсивностью обменных процессов, скоростью роста и полового созревания. Такая птица является особенно чувствительной к негативному влиянию технологических и стрессовых факторов, которые приводят к определенным отклонениям обмена веществ и физиологических функций и, как следствие, снижению ее продуктивности и качества продукции [4,5,6,7].

Наиважнейшим фактором в повышении продуктивности сельскохозяйственной птицы является рациональная и сбалансированная система кормления [8,9,10]. При этом большую роль в активизации естественных защитных сил организма современных кроссов птиц, отселекцинированных на высокую продуктивность и скороспелость, имеют факторы, влияющие непосредственно на стимуляцию адаптационных способностей и иммунобиологической реактивности организма. К таким факторам относятся биологические стимуляторы различной природы: витамины, адаптогены, пробиотические, пребиотические и синбиотические препараты, ферментные препараты, фитобиотики, подкислители (препараты на основе органических кислот), хелатные соединения микроэлементов и др. Скармливание их в составе рациона обеспечивает лучшую усвояемость питательных веществ организмом, активизирует обмен веществ, обеспечивает стабильное сохранение и повышение продуктивности и жизнеспособности сельскохозяйственной птицы, при этом улучшаются финансовые показатели производства и качество продукции [11-29].

На сегодняшний день, в условиях современного промышленного птицеводства на одну из ведущих позиций выходит проблема сохранения здоровья животных при минимальном использовании кормовых антибиотиков [30-40]. Данную задачу возможно решить за счет организации правильного кормления птиц всех половозрастных групп с использованием кормовых добавок на основе натуральных природных стимуляторов роста, включающих фитобиотические, пробиотические, пребиотические, синбиотические препараты и др.

Цель исследования – разработка теоретических основ и создание практических способов повышения продуктивности, неспецифической резистентности и сохранности, улучшения качества получаемой продукции цыплят-бройлеров и яичной птицы на основе введения в рацион кормовых добавок, включающих безопасные стимуляторы роста в виде синбиотиков и фитобиотиков.

Исходя из цели исследования, поставлены следующие задачи:

• изучить влияние кормовых добавок, включающих синбиотики и фитобиотики, на динамику живой массы подопытной птицы, сохранность поголовья, затраты корма на единицу продукции;
• оценить влияние введения в рацион экспериментальных кормовых добавок на мясную и яичную продуктивность, развитие внутренних органов, качество птицепродукции;
• определить переваримость питательных веществ рациона, обмен энергии, обмен азота при использовании изучаемых кормовых факторов;
• изучить влияние исследуемых препаратов на обмен кальция и фосфора и минерализацию костной ткани птицы;
• определить различия морфологического и биохимического состава крови птицы при скармливании изучаемых препаратов;
• исследовать состояние микробиоценоза толстого отдела кишечника птицы под влиянием экспериментальных кормовых добавок;
• изучить влияние исследуемых кормовых компонентов на морфогистологическое состояние внутренних органов цыплят-бройлеров и кур-несушек;
• определить экономические показатели производства птицепродукции при включении в состав комбикорма новых кормовых препаратов.

Научная новизна исследований. Впервые в комплексном сравнительном исследовании научно обоснованы резервы повышения продуктивных качеств, естественной резистентности мясной и яичной птицы за счет применения в составе комбикорма новых кормовых добавок, включающих безопасные стимуляторы роста в виде синбиотиков и фитобиотиков. Получены новые данные о влиянии изучаемых кормовых факторов на мясную и яичную продуктивность, сохранность поголовья, затраты корма на единицу продукции, качество мяса и яйца, переваримость и использование питательных веществ корма, обмен энергии, минерализацию костной ткани, морфо-биохимические показатели крови, микробиоценоз толстого отдела кишечника, гистологическое состояние внутренних органов, экономические показатели.

Теоретическая и практическая значимость работы. Теоретическая значимость работы определяется углублением знаний об обмене веществ в организме цыплят-бройлеров и промышленных кур-несушек при использовании в составе комбикорма кормовых добавок, включающих синбиотики и фитобиотики. Практическая значимость работы заключается в том, что на основе экспериментального материала разработаны научно-практические рекомендации птицеводческим предприятиям, по использованию в составе комбикормов кормовых добавок, на основе синбиотиков и фитобиотиков, с целью повышения продуктивности птицы и качества продукции.

1 ПРИМЕНЕНИЕ БЕЗОПАСНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ РОСТА В КОРМЛЕНИИ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННОЙ ПТИЦЫ

Полноценное сбалансированное кормление птицы является основой эффективного производства продуктов птицеводства. В настоящее время общемировые тенденции в области питания птиц уходят от использования в рационах кормовых антибиотиков, так как это впоследствии негативно сказывается на здоровье животных, потребителей и окружающей среде. В связи с этим сельскохозяйственные предприятия озадачены вопросами поиска альтернативных кормовых средств природного происхождения, заменяющих антибиотики. Дополнительным требованием к таким средствам выдвигают способность повышения использования птицей питательных веществ рационов.

Положительными характеристиками от применения препаратов природного происхождения являются: оказание положительного влияния на обмен веществ, повышение иммунного статуса, увеличение продуктивности животных, улучшение качества продукции.

Стимуляторами роста природного происхождения являются: пробиотики, пребиотики, синбиотики, фитобиотики, минеральные вещества, и др.

Пробиотики

Понятие пробиотик подразумевает под собой биологический препарат, пищевые и кормовые добавки, в основу которых входят живые микроорганизмы. Эти микроорганизмы являются представителями микрофлоры человека или животных (бифидобактерии, лактобактерии, эшерихии, энтерококки), но при этом не являются представителями индигенной микрофлоры, хотя способствуют ее размножению (дрожжи, апатогенные бактерии рода Bacillus) [41-44].

Пробиотики могут изменить динамику микробной популяции желудочно-кишечного тракта в положительную сторону вследствие изменения баланса полезной и вредной микрофлоры: способствовать увеличению популяции лактобактерий, бифидобактерий и снижению количества колибактерий и клостридий. Уменьшение патогенных бактерий в желудочно-кишечном тракте связано со способностью пробиотических микроорганизмов продуцировать антимикробные вещества (бактериоцины), а также органические кислоты (молочная, пропионовая и др.), в результате чего происходит повышение кислотности, что создаёт неблагоприятные условия для развития большинства вредных микроорганизмов. Кроме этого микроорганизмы-пробионты проявляют антагонистическую активность по отношению к вредной микрофлоре посредством конкуренции за питательные вещества и места адгезии к эпителию внутренней поверхности кишечника. Дополнительный положительный эффект от применения пробиотиков заключается в том, что эти микроорганизмы в процессе своей жизнедеятельности производят полезные для организма-хозяина вещества, такие как витамины, ферменты и аминокислоты [45-53].

Роль кишечной микрофлоры для оптимального, физиологичного функционирования организма животных и птиц огромна. Здоровая микробная популяция обеспечивает нормальное протекание пищеварительных процессов, повышает усвоение питательных веществ корма, что в конечном итоге положительно отражается на продуктивности сельскохозяйственных животных и птиц [54-57].

В последние годы пробиотики пользуются большим спросом у отечественных птицеводческих предприятий в качестве безопасных стимуляторов роста, заменителей кормовых антибиотиков [58,59].

На рынке представлены различные формы пробиотиков: сухие, жидкие, пастообразные. Большим спросом пользуются формы сухих порошков, сухих смесей в капсулах, таблетки, гранулы. Популярность сухой формы объясняется удобством использования, увеличенным сроком годности, а также наличием в своем составе нескольких видов штаммов.

Морозова Е.С., Мурленков Н.В. и Шуметов В.Г. проводили исследования по изучению влияния пробиотика «Oлин». Результаты экспериментов показали, что данная добавка положительно повлияла на мясную продуктивность цыплят-бройлеров. Так, графическими методами нелинейного корреляционного анализа обосновано, что максимум ведущих показателей качества полуфабриката – массы мышц и филе – достигается при дозировке пробиотика около 0,024 г/гол [60].

Исследования Червоновой И.В. подтвердили данные об эффективности применения пробиотика «Олин» на продуктивные показатели цыплят-бройлеров: живая масса цыплят возросла на 6,4%. На фоне его использования отмечено увеличение количества эритроцитов на 9,6-11,5%, концентрации гемоглобина на 5,5-7,9%. К тому же пробиотик «Олин» благоприятно повлиял на содержание общего белка, альбуминов и глобулинов в крови птицы, что свидетельствует о повышении иммунного статуса бройлеров [61].

Данилова А.А. и Ратошный А.Н. изучали действие пробиотика «Споротермин» на продуктивные показатели цыплят-бройлеров. Авторами установлено, что пробиотик способствовал увеличению живой массы цыплят на 9%, сохранности на 2,8%, а также снижению затрат корма на 1 кг прироста живой массы на 8,6% [62].

Проблемой отечественного птицеводства является то, что основными компонентами комбикормов для птицы являются — рожь, пшеница, подсолнечный шрот и овес. Данное сырье характеризуется высоким содержанием некрахмалистых полисахаридов. Переизбыток этих веществ в рационах моногастричных ведет к блокировке доступа пищеварительных ферментов к питательным веществам, что ухудшает их использование [63]. Происходит это за счет того, что из некрахмалистых полисахаридов в желудочно-кишечном тракте птицы образуется вязкий раствор. Этот раствор обволакивает кормовую массу. В итоге организм птицы вырабатывает жидкий помет, что ведет в дальнейшем к существенному снижению продуктивности и увеличению затрат корма. Современные птицеводческие предприятия нашей страны решают эту проблему за счет введения в рацион птицы ферментных препаратов или стимуляторов роста. Манукян В.А., Ленковой Т.Н и Егоровым И.А была изучена эффективность применения ферментативного пробиотика в кормлении бройлеров. В результате исследования установлено, что при введении изучаемой добавки в рацион бройлеров удалось увеличить усвояемость органического вещества на 1,3%, переваримость клетчатки на 5,2%, что привело к снижению затрат корма на 1 кг прироста живой массы на 2,4% [64].

По данным Царук Л.Л. использование пробиотика «Лактисан» в кормлении бройлеров с первого дня жизни позволило повысить массу потрошенной тушки на 12,1%, а количество съедобных частей тушки на 13,9% [65].

Гурциевой М.С. и Калоевым Б.С. проведено исследование по изучению эффективности применения ферментативного пробиотика Целлобактерин в кормлении цыплят-бройлеров. Результаты исследования показали, что он может полностью заменять в рационе кормовые ферменты и пробиотики. Благодаря его скармливанию удалось снизить потребность в антибиотиках и пребиотиках [66].

Исследования Курманаевой В. и Бушова А. по включению в рационы цыплят-бройлеров пробиотических препаратов Целлобактерин, Целлобактерин-Т и Провитол демонстрируют, что данные пробиотики способствуют увеличению сохранности на 1,0-3,0%, интенсивности роста — на 1,5-8,6% и убойного выхода тушек — на 3,2-4,5%. В своей работе авторы отмечают, что вышеперечисленные препараты улучшили видовой состав микроорганизмов желудочно-кишечного тракта птицы. При использовании пробиотика Целобактерин-Т в слепых отделах кишечника цыплят были практически не обнаружены энтеробактерии. Также применение данных пробиотиков позволило снизить уровень клостридий в кишечнике [67].

Опыты, проведённые Гиндулиным А.И., Тремасовым М.Я. и Белецким С.О. подтверждают положительное воздействие на здоровье и продуктивность цыплят-бройлеров пробиотиков на основе бактерий родов Lactobacterium и Bacillus. У опытной птицы было отмечено укрепление иммунной системы и увеличение живой массы на 24,6 и 23,0%. Введение таких пробиотиков в рацион цыплят, подверженных субхроническому Т-2 токсикозу, позволило нормализовать морфологичеcкие и биохимические показатели крови, а именно: количество лейкоцитов увеличилось до 22,4%, гемоглобина – до 8,3%, эритроцитов – до 11,7%; на 12,0 и 15,0% увеличилось содержание общего белка, на 10,3 и 12,0% – глюкозы [68].

Овчаровой А.Н. и Петраковым Е.С. (2018) опытным путём получены данные о положительном влиянии пробиотика «Белсубтил» на физиологический статус и продуктивность цыплят-бройлеров кросса «Кобб-500». В ходе применения данного пробиотика живая масса цыплят бройлеров была увеличена на 4,7%, сохранность поголовья – на 8,33%, выход потрошёной тушки – на 1,5%. Кроме этого, было отмечено повышение в крови количества эритроцитов, увеличение количества бифидобактерий и непатогенных штаммов кишечной палочки в составе микрофлоры пищеварительного тракта [69].

Использование пробиотика «Норд-Бакт» перрорально на молодняке птицы ячного направления «Родонит-3» способствовало увеличению живой массы в возрасте 16 недель на 10,3%, сохранности поголовья – до 99,5%, снижению расходов кормов, повышению концентрации в крови общего белка на 2,5%, альбуминов – на 3,4% [70]

В исследованиях Хитрого Ф.Н. и Прохорова О.Н. описывается эффективность использования пробиотика «Бацелл-М» в кормлении цыплят-бройлеров. Применение данного препарата способствовало увеличению сохранности поголовья на 2,0%, живой массы – на 9,74%, среднесуточного прироста – на 12,7% [71].

Таким образом, пробиотики, за счёт снижения кишечной колонизации и распространения зоонозных и других кишечных патогенов, оказывают положительное влияние на формирование здорового микробиоценоза в организме сельскохозяйственной птицы, тем самым способствуя повышению переваримости и усвояемости питательных и биологически активных веществ кормов, что в свою очередь положительно отражается на продуктивных показателях птицы.

Пребиотики

Пребиотики — это компоненты пищи, которые не перевариваются и не усваиваются в верхних отделах желудочно-кишечного тракта, но ферментируются микрофлорой толстого кишечника и стимулируют её рост и жизнедеятельность [72,73].

К пребиотикам относят неусвояемые, непереваримые углеводы (олигосахариды, фруктоолигасахариды, модифицированный крахмал, инулин, гемицеллюлозы, фруктаны, пектин, хитин), а также биологически активные иммунные белки — лактоглобулины, гликопептиды, отдельные витамины и их производные.

Механизм действия пребиотиков заключается в:

1) торможении роста вредных кишечных микробов (за счет конкуренции за субстраты и места прикрепления к слизистой оболочке);

2) усилении кишечной кислотности (через продукцию короткоцепочечных жирных кислот);

3) стимуляции роста кишечных абсорбирующих клеток;

4) стимулировании кишечной иммунной системы, что способствует повышению продуктивности и улучшению состояния здоровья птицы [74-78].

Осепчук Д.В., Скворцова Л.Н., Пышманцева Н.А. и др. изучали влияние скармливания пребиотика на основе инулина на продуктивные показатели цыплят-бройлеров. Результаты исследования показали, что при применении инулиносодержащего пребиотика снизилась себестоимость 1 кг прироста живой массы на 2,0%, а рентабельность производства повысилась на 3,1% [79].

По данным Кочиш И.И., Мясниковой О.В., Мартынова В.В., Смоленского В.И. использование пребиотика Ветелакт и пробиотика Профорт способствовали повышению числа бифидо- и целлюлозолитических бактерий в кишечнике кур кросса Ломанн, на фоне снижения патогенной и нежелательной микрофлоры. Уменьшение в составе микробиоты доли патогенных и нежелательных микроорганизмов закономерно снижало потребность организма в факторах неспецифической защиты и противоспалительных цитокинах [80].

Буряков Н.П., Бурякова М.А., Миронов М.М. провели исследование по изучению влияния пребиотика «Сель Ист» на показатели обмена веществ и продуктивность цыплят бройлеров. Результаты эксперимента показали, что использование данного препарата в количестве 1 кг на 1 т комбикорма способствовало повышению абсолютного прироста цыплят-бройлеров на 7,5%, сохранности поголовья – на 1,0%, убойного выхода – на 1,44%, при этом затрат корма на 1 кг прироста живой массы снизились на 8,95% [81].

Результаты исследований Шацких Е.В., Нуфер А.И., Галиева Д.М. показали, что выращивание цыплят-бройлеров при замене в составе комбикорма кормовых антибиотиков на пребиотические кормовые добавки СафМаннан и Иммуносан, представляющие углеводные комплексы клеточных стенок дрожжей, способствовало соответственно повышению, убойного выхода потрошеной тушки в среднем на 2,3 и 2,0%; массы потрошеной тушки на 5,6 и 3,8%; количества мышц в составе тушки на 8,1 и 10,2 %; количества мышц в грудке на 2,0 и 17,5 %; количества мышц в бедре на 4,2 и 1,7%; количества мышц в голени на 2,3 и 13,8 %; переваримость сухого вещества в опытных группах была выше в среднем на 4,7%, сырого жира – на 11,35% [82].

Синбиотики

Синбиотики – это кормовые добавки, включающие в себя пробиотики и пребиотики. Используются в кормлении животных с целью восстановления и/или поддержания здоровья кишечной микробиоты.

Промышленное птицеводство подразумевает под собой использование антибиотиков в борьбе с болезнетворными микроорганизмами. Негативным фактором воздействия антибиотиков на живой организм является его способность к подавлению не только болезнетворных микроорганизмов, но и полезной микрофлоры кишечника. Угнетение полезной микрофлоры в итоге ведет к возникновению дисбактериозов. Промышленное птицеводство с 20-го века использует антибиотики в качестве стимуляторов роста.

Бессистемное и длительное использование антибиотиков привело в итоге к селекции в окружающей среде устойчивой к антибиотикам болезнетворной микрофлоры. В связи с этим приходится создавать более мощные антибиотические препараты, в ответ на них селекционируется еще более устойчивая микрофлора. Все это ведет к тому, что использование антибиотиков становится не эффективным и в лечении птицы, и в лечении человека.

При острых диарейных расстройствах кишечника у животных и птицы не эффективно использование пробиотических препаратов на основе культур Lactobacillus, Bifidobacterium, Streptococcus, Bacillus subtilis и др. Так как в этот момент организм совершенно не способен ферментировать и переваривать питательные вещества корма. В итоге были разработаны синбиотические препараты, которые представляют собой активную микробиологическую составляющую (собственно пробиотик) и среду (пребиотик). В таком варианте создаются условия для жизни вносимой микрофлоры.

В работе Кузьменко П.М. изучалось воздействие синбиотического препарата «Синвет» на продуктивные показатели и сохранность цыплят-бройлеров. Результаты исследований доказали положительное воздействие изучаемой добавки на здоровье птицы. Сохранность в опытных группах цыплят, которым скармливали «Синвет», была выше на 7,6% [83].

Юрина Н.А, Омельченко Н.А., Осепчук Д.В. изучали эффективность использования синбиотика «Синбиосорб 2» в кормлении цыплят-бройлеров. Установлено, что под влиянием изучаемого препарата среднесуточный прирост живой массы опытных цыплят был выше на 3,0%, однородность поголовья — на 15,6%, сохранность поголовья — на 1,0% [84].

Буяров В.С. и Метасова С.Ю. исследовали эффективность применения синбиотика «ПроСтор» в кормлении ремонтного молодняка кросса «Росс-308». Авторами отмечено, введение этого препарата в рацион птиц способствовало повышению естественной резистентности организма опытной птицы, что подтверждалось повышением уровня эритроцитов, гемоглобина и содержания общего белка у птицы опытной группы на 12,58; 5,6 и 10,42%, соответственно. После клинических наблюдений и патологоанатомических вскрытий у птицы опытной группы уменьшилось проявление желудочно-кишечных заболеваний на 2-4% в сравнении с контрольной группой. Использование синбиотика «ПроСтор» оказало положительное влияние на рост, однородность птицы по живой массе, сохранность и выход молодняка, предназначенного для замены взрослого поголовья птицы (выход деловой молодки), способствовало сокращению затрат кормов на единицу прироста при выращивании, что вело к снижению себестоимости продукции [85].

Результаты испытания синбиотической добавки «Синбиосорб 1» были описаны в работе Чикова А.Е., Юриной Н.А., Омельченко Н.А. Авторы исследований отмечают, что современная наука направлена на разработку синбиотических препаратов — комплексных форм пробиотиков и пребиотиков. Чистые формы пробиотиков и пребиотиков доказали свою неэффективность в борьбе в диарейными явлениями у птицы. Ученые показали, что применение синбиотика «Синбиосорб 1» в количестве 0,05% способствовало повышению живой массы птицы в возрасте 37 дней на 1,8%, сохранности поголовья – на 1,6%, снижению затрат корма на 1 кг прироста живой массы – на 1,7% [86,87].

Фитобиотики

На сегодняшний день перспективным является направление создания и применения фитобиотиков в кормлении сельскохозяйственной птицы.

Под термином фитобиотики понимают натуральные добавки растительного происхождения, которые обладают различным действием на организм животного.

К функциям фитобиотиков относят:

— антимикробная;

— противовирусная;

— иммуномодулирующая;

— противогрибковая;

— противовоспалительная.

Фитобиотики зарекомендовали себя как эффективные средства в поддержании стабильно-оптимального состояния желудочно-кишечного тракта, обменных процессов в организме сельскохозяйственной птицы, их иммунного статуса, благодаря воздействию определенных биологически активных соединений, содержащихся в них [88-91].

В кормлении животных и птиц фитобиотики используются в качестве средства, повышающего их продуктивность и улучшающего качество пищевых продуктов.

Популяризация фитопрепаратов началась с Европейских стран. Причина всё та же — запрет на применение антибиотиков.

Крупнейшими мировыми производителями фитобиотиков являются Европейские компании. Например, немецкая компания Phytobiotics Futterzusatzstoffe GmbH, начавшая свою работу в 2000 году [92].

Отличительной характеристикой фитобиотиков является их способность к стимуляции эндогенных ферментов, что благоприятно действует на переваримость и усвоение питательных веществ кормов. Фитобиотики, относясь к природным стимуляторам роста (ПСР), могут стать многообещающей заменой антибиотических стимуляторов роста в современных животноводческих хозяйствах. Объединенные в сбалансированную смесь, различные ПСР, эффективно противостоят вторжению патогенных организмов и неблагоприятным условиям содержания [93-97].

Шмакова С.В. и Ланцева Н.Н. опубликовали данные об исследовании эффективности использования фитобиотика на основе отвара кипрея на продуктивные качества бройлеров. Авторы показали, что скармливание данного препарата позволило увеличить живую массу птицы на 8,7%, а среднесуточный прирост на 6,9% [98].

Ланцевой Н.Н., Мартыщенко А.Е., Швыдковым А.Н. были проведены исследования по выявлению действия фитобиотика Флорабис на продуктивные показатели бройлеров. Основу данного препарата составляют тритерпеновые кислоты пихты сибирской в комплексе с ионами кобальта. Кислоты сибирской пихты обладают ярко выраженным противовирусным, бактерицидным и иммуномодулирующим действием. Результаты исследований подтвердили предположения о благотворном влиянии фитобиотика на зоотехнические и физиологические показатели птицы. Результатом скармливания стало увеличение живой массы птицы на 3,8%, среднесуточного прироста на 3,7%, сохранности на 6,7 % на фоне повышения переваримости питательных веществ корма [99].

Результаты исследования Лапкиной Е.З. и Тирранен Л.С. по изучению эффективности использования травяной добавки на основе растений крапивы двудомной и звездчатки средней в кормлении японских перепелов демонстрировали, что травяная добавка не оказала влияния на динамику живой массы птицы, но положительно сказалась на её яйценоскости. У перепелок, которым скармливали изучаемое кормовое средство, яйценоскость наступила на 8 дней раньше, чем у контрольной птицы, при этом яйца опытных перепелок были с более высоким содержанием каротиноидов и витамина А. Также в исследованиях отмечено повышение вкусовых качеств мяса птицы и яиц [100].

Эксперименты, проведенные Кишняйкиной Е.А. и Жучаевым К.В. показали, что применение экстракта чабреца в кормлении птицы мясного направления продуктивности позволяет повысить прирост живой массы цыплят-бройлеров в опытных группах от 2,3 до 4,7 %, снизить затраты корма на 1 кг прироста на 1,1–8,1 %, увеличить сохранность птицы на 2,7–8,1 % и повысить европейский индекс продуктивности на 0,2–21,3 % [101].

Сахно О.Н. и Буяровым В.С. установлено, что использование в составе рациона для цыплят-бройлеров кормовой добавки на основе чесночного аллицина (коммерческое название «Алекс»), способствовало повышению живой массы у опытной птицы на 5,5%. Добавку «Алекс» тестировали совместно с антиоксидантом «Эмицидин», получив аналогичные результаты. Такое комплексное применение добавок позволило увеличить рентабельность производства мяса бройлеров на 4,7% [102].

Игнатович Л.С. проводил исследование по изучению эффективности применения компонентных кормовых добавок на основе травяной муки из тысячелистника на курах несушках. Автор констатирует, что введение в рацион кормовых добавок, состоящих из 0,3-1,0% муки из крапивы двудомной; 0,2-1,0% муки из хвои стланика кедрового; 0,5% муки из бурых морских водорослей (ламинарии); 0,5-1,0% муки из пижмы обыкновенной и 0,5-1,5% муки из тысячелистника обыкновенного, способствует интенсификации обменных процессов, происходящих в организме кур-несушек. Так, использование азота корма возрастало до 9,2%; золы – до 12,0%; кальция – до 7,0%; фосфора – до 13,7%; переваримости протеина – до 2,7%; жира – до 10,8% БЭВ – до 1,6%. Интенсификация обменных процессов способствовала повышению продуктивности птицы: валовой сбор яиц возрастал до 11,3%; интенсивность яйцекладки – до 8,8%; выход яичной массы – до 25,3% к контрольным показателям, в зависимости от доз включаемых компонентов [103].

Результаты исследований Шацких Е.В., Нуфер А.И. свидетельствуют об эффективности использования в рационе цыплят-бройлеров, как дополнительно, так и взамен кормовых антибиотиков, кормовой добавки, включающей в себя эфирные масла, защищенные органические кислоты, экстракт жгучего перца (коммерческое название Проактив Поултри). При этом повышается живая масса в конце откорма (38 дней) у петушков опытных групп на 0,7 и 5,1 % (Р≤0,05), у курочек – на 0,6 и 6,1% (Р≤0,01). Сохранность поголовья бройлеров (в среднем по петушкам и курочкам) в опытных группах была выше, чем в контроле на 1,25% и составила 94,4%. Анализ химического состава грудных и бедренных мышц бройлеров свидетельствует о повышении уровня жира и соответственно энергетической ценности мяса у опытных особей [104].

Подводя итог вышесказанному, стоит отметить, что применение безопасных стимуляторов роста в виде пробиотиков, пребиотиков, синбиотиков, фитобиотиков и др. является перспективным направлением в области кормления сельскохозяйственной птицы. Благодаря их использованию можно достичь повышения производительных мощностей птицеводства, получая при этом высококачественные и безопасные продукты питания, что и послужило основанием для проведения научно-исследовательской работы в данном направлении.

2 ХАРАКТЕРИСТИКА КОРМОВЫХ ДОБАВОК, ИСПОЛЬЗУЕМЫХ В ЭКСПЕРИМЕНТАХ НА ПТИЦЕ

ПроСтор – биологически активная добавка, содержащая пробиотическую составляющую — живые спорообразующие микроорганизмы Bacillus subtilis В-8130, Bacillus subtilis 44-р, Bacillus subtilis 188, в количестве не менее 1х10⁶ КОЕ/г и вспомогательные вещества — жом свекловичный ферментированный, автолизаты дрожжей, минеральные соли, углеводы, фитодобавки (трава эхинацеи пурпурной, плоды расторопши пятнистой).

Способ приготовления биологически активной кормовой добавки ПроСтор осуществляют следующим образом. Проводят раздельное глубинное культивирование штаммов Bacillus subtilis В-8130, Bacillus subtilis 44-р, Bacillus subtilis 188 с получением жидких культур. Далее осуществляют твердофазную ферментацию жидких культур Bacillus subtilis В-8130, Bacillus subtilis 44-р, Bacillus subtilis 188. Их смешивают в соотношении 6:6:1, соответственно, до получения 65 л и наносят на предварительно подготовленный носитель для проведения твердофазной ферментации — стерильный свекловичный жом в количестве 200 кг, обработанный целлюлолитическим ферментом и обогащенный ферментолизатом кормовых дрожжей Saccharomyces cerevisiae.

Для получения ферментолизата кормовых дрожжей Saccharomyces cerevisiae готовят смесь: меласса — 255-265 г, калий фосфорнокислый двузамещенный – 98 -102 г, магний сернокислый — 25-26 г, кормовые дрожжи Saccharomyces cerevisiae — 3 кг и вода до 30 л. Смесь стерилизуют при температуре 120°С в течение 30 мин и добавляют к носителю, в который вносят 4 л раствора целловиридина или целлюлокса F с содержанием целлюлазы не менее 2000 ед/г носителя, доводят рН до 6,0-6,5, смесь тщательно перемешивают, выдерживают 2 ч при температуре 45-50°С. Твердофазную ферментацию проводят в условиях ограниченного доступа кислорода при температуре 45-50°С, рН 7,5-8,0 и влажности замеса 43-48% в течение 48-50 ч. Смесь тщательно перемешивают и высушивают до влажности 8-10%, после чего добавляют сухие порошки травы эхинацеи пурпурной и плодов расторопши пятнистой из расчета 20-50 г порошка эхинацеи и 20-50 г порошка расторопши на 1 кг конечного продукта. Полученную смесь перемешивают в течение 0,5 ч и подвергают дроблению до получения однородной массы [105].

Преимущество сорбированных форм пробиотиков, содержащих бактерии, иммобилизованные на частицах твердого сорбента, заключается в том, что за счет химических и электростатических сил их взаимодействие со стенкой кишечника животных гораздо выше. При этом сорбент ускоряет дезинтоксикационные и репаративные процессы в организме.

В препарате ПроСтор содержится набор важнейших ферментов: целлюлаза, эндоглюканаза, амилаза, протеаза, липаза, органические кислоты, витамины и аминокислоты, иммуноактивные пептиды — продукты метаболизма пробиотиков. Входящий в препарат специально обработанный свекловичный жом, содержит бактерицидные фитокомпоненты — терпены и трерпеноиды, фиточастицы – микросорбенты и пребиотики — пектины свеклы. Композиция обогащена полученным по специальной технологии ферментолизатом кормовых дрожжей Saccharomyces cerevisiae. Комбинация маннан-олигосахаридов и бета-глюканов, входящих в клеточные стенки дрожжей, служит дополнительным пребиотиком. Фитокомпоненты эхинацеи и расторопши расширяют спектр биологического действия препарата.

Пребиотики — субстраты, стимулирующие естественную микрофлору кишечника, они не перевариваются и не всасываются в желудке и тонком отделе кишечника животных. Попадая в толстый отдел кишечника, пребиотики используются в качестве питательной среды для нормальной микробиоты. У млекопитающих в первые дни после рождения основным пребиотическим субстратом является лактулоза, входящая в состав молока. С переходом на смешанное кормление субстратом, способствующим росту нормальной микробиоты, становятся структурные элементы растительных тканей, различные полисахариды (пектины, инулин и др.). Пищевые волокна выполняют и другие важные функции: нормализуют моторику, адсорбируют токсины.

Эхинацея обладает иммуномодуляторными свойствами. Все органы растения содержат полисахариды, эфирное масло (цветки до 0,5%, трава до 0,35%, корни до 0,25%). Главная составная часть эфирного масла — нециклические сесквитерпены. В корнях обнаружены гликозид эхинакозид, бетаин (0,1%), смолы (около 2%), органические кислоты (пальмитиновая, линолевая, церотиновая), а также фитостерины. Основные действующие вещества, обладающие иммуностимулирующей активностью — полисахариды. Препараты эхинацеи демонстрируют антибактериальные, противовирусные и противомикотические свойства: угнетают рост и размножение стрептококка, стафилококка, кишечной палочки, вирусов гриппа, эффективны при воспалительных заболеваниях.

Расторопша пятнистая используется для профилактики различных заболеваний печени. Основными действующими веществами расторопши являются флавоноиды и флавонолигнаны (силибин, силикристин, силидианин), обладающие мощным детоксицирующим, гепатопротекторным, антиоксидантным действием. Кроме того, в растении содержатся алкалоиды, сапонины, жирное масло (до 25%), белки, витамин К, смолы, слизь, тирамин, гистамин, а также макро- и микроэлементы. Лечебными свойствами обладают листья, корни и главное — семена расторопши. Препараты из расторопши повышают защитные свойства печени к инфекциям и отравлениям, стимулируют образование и выведение желчи, способствует очищению и образованию новых клеток печени. Положительное действие этого растения сказывается и на всем желудочно-кишечном тракте.

ГербаСтор – биологически активная добавка, содержащая в своем составе живые спорообразующие бактерии рода Bacillus и молочнокислые микроорганизмы, продукты их метаболизма (ферменты, органические кислоты, витамины), жом свекловичный ферментированный, автолизаты дрожжей, минеральные соли, углеводы, фитодобавки (трава душицы, лист подорожника, цветки ромашки, трава зверобоя). Добавка производится методом микробиологического синтеза.

Принципиальное отличие данного препарата от кормовой добавки ПроСтор заключается в том, что в состав ГербаСтора вводятся дополнительно пробиотические штаммы молочнокислых бактерий, обладающие доказанным антибактериальным действием и комплекс лекарственных трав, содержаших биологически активные вещества, обладающие бактерицидной активностью, способностью к стимуляции обменных и иммунных процессов. Технологической особенностью производства данного препарата является применение определенных частей лекарственных растений: травы душицы, листьев подорожника, цветков ромашки, травы зверобоя и их предварительная обработка биологическими способами для повышения биодоступности входящих полезных компонентов, что делает ввод лекарственных трав на порядок более эффективным.

Основным активным действующим началом душицы обыкновенной считается эфирное масло – до 1,2%. В него входят тимол и карваклол. Высокое содержание последнего делает масло сильным антигистаминным и природным антибиотиком. В растении много витаминов С, К, А, Е, дубильных веществ. Душица — повышает секрецию пищеварительных желез, усиливает аппетит, перистальтику кишечника и улучшает пищеварение.

Цветки ромашки содержат гликозиды, усиливающие отделение желчного, кишечного и желудочного соков, способствуя улучшению пищеварения. Содержащиеся в растении флавоноиды и кумарины оказывают спазмолитическое действие, а наличие хамазулена — ароматического вещества, входящего в состав эфирного масла ромашки, обеспечивает выраженное противовоспалительное, седативное и местноанестезирующее действие. Он усиливает регенеративные процессы, ослабляет аллергические реакции в организме.

Зверобой, благодаря содержанию гиперозида, кверцитина, фетонцидов, витаминов С и РР обладает противовоспалительным, антисептическим, желчегонным действием. Возбуждает аппетит, стимулирует секреторную функцию различных желез.

Подорожник обладает антисептическим, противовоспалительным, кровоочистительным действием, благодаря наличию в его составе гликозидов, дубильных веществ, ферментов, алкалоидов и фитонцидов.

Активо — кормовая добавка, содержащая в своем составе в качестве действующих веществ смесь эфирных масел из экстрактов растений тимьяна (Thymus vulgaris), розмарина (Rosmarinus officinalis), орегано (Origanum vulgaris) (170 г/кг), экстракт перца Чили (15 г/кг), а также наполнитель — гидрогенизированные растительные жиры (815 г/кг). По внешнему виду добавка представляет собой гранулы оранжевого цвета со специфическим запахом, не растворимые в воде.

Биологические свойства Активо обусловлены наличием ароматических биологически активных веществ, входящих в его состав (эфирные масла тимьяна, розмарина, орегано и экстракт перца чили), которые обладают антимикробными (в отношении бактерий Salmonella и Clostridium) и антиоксидантными свойствами, улучшают ароматические и вкусовые качества кормов.

Добавка производится в виде микрокапсул и содержит стандартизированные количества отдельных фитомолекул. Преимущества микрокапсулирования (жировой матрицы): стабильность и обеспечение защиты прохождения ингредиентов через желудок; создание разной ферментативной активности в желудочно-кишечном тракте, постепенное и продолжительное высвобождение компонентов; высокая технологичность (подходит для проведения экструзии и гранулирования).

За счет антибактериальных, противогрибковых и противопаразитарных свойств препарата происходит активация системы антиоксидантных ферментов в организме для нейтрализации свободных радикалов, ингибирование перекисного окисления липидов, увеличение регенерации гепатоцитов, стимуляция пролиферации лимфоцитов, увеличение производства иммунных медиаторов, при этом нормализуется синтез и стабилизируется состав микрофлоры кишечника.

Благодаря входящим в состав препарата компонентам стимулируются обонятельные и вкусовые рецепторы, улучшается потребление корма, обеспечивается активность собственных пищеварительных ферментов организма, повышается эффективность всасывания питательных веществ.

Использование эфирных масел в составе добавки позволяет повысить качественные характеристики мяса птицы: сократить окисление липидов и рост микроорганизмов при хранении; задержать деградацию витамина Е; обеспечить модерацию альдегидов и спиртов, связанных с посторонним привкусом; улучшить цвет в процессе хранения.

Активо Ликвид – жидкая эмульгированная кормовая добавка, содержащая в качестве действующих веществ в 1 мл: масло корицы — 0,30%, масло орегано — 6,0%, лимонную кислоту — 15%; вспомогательные вещества: пектин — 0,45%, хлорид натрия — 0,10% и дистиллированную воду — до 100%. Стандартизированные, специфические фито-молекулы в составе препарата за счет содержания в них фенольных соединений, обладают антибактериальным, противогрибковым, а также противопаразитарным действием против желудочно-кишечных паразитов (к Активо Ликвид чувствительны многие грамположительные и грамотрицательные бактерии). Добавка оказывает стимулирующее действие на процессы пищеварения и проявляет антиоксидантный эффект.

Принимая во внимание ростостимулирующий эффект экспериментальных кормовых добавок, включающих натуральные стимуляторы роста, и не способность их накапливаться в птицеводческой продукции, представляло интерес изучить данные препараты в составе рациона мясной и яичной птицы.

3 ЭФФЕКТИВНОСТЬ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ В РАЦИОНЕ ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ КОРМОВЫХ ДОБАВОК, ВКЛЮЧАЮЩИХ БЕЗОПАСНЫЕ СТИМУЛЯТОРЫ РОСТА

3.1 МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Экспериментальная часть работы выполнялась в условиях птичника учебно-опытного хозяйства ФГБОУ ВО Уральский ГАУ в 2020 году на цыплятах бройлерах кросса «Росс 308» при их напольном содержании с суточного до 37-дневного возраста.

Норма посадки, световой, температурный, влажностный режимы, фронт кормления и поения во все возрастные периоды цыплят соответствовали рекомендациям, разработанным для данного кросса [106].

Согласно схеме научно-хозяйственного опыта (табл. 1) в суточном возрасте были сформированы 4 группы цыплят-бройлеров со средней живой массой 42 г.

Таблица 1 — Схема проведения научно-хозяйственного опыта

Группа	Количество голов	Условия кормления
Контрольная	22 22	Основной рацион (ОР) — комбикорм с питательностью, соответствующей рекомендациям для кросса.
1 опытная	22 22	ОР + ГербаСтор в количестве 0,5 г/кг комбикорма, с 5-го дня выращивания и до конца периода откорма.
2 опытная	22 22	ОР + ПроСтор в количестве 0,5 г/кг комбикорма, с 5-го дня выращивания и до конца периода откорма.
3 опытная	22 22	ОР + Активо в количестве 0,15 г/кг комбикорма, с 5-го дня выращивания и до конца периода откорма.

Формирование групп для научно-хозяйственного и физиологического опытов, а также научные основы исследования осуществлялись в соответствии с рекомендуемыми методиками ФНЦ «ВНИТИП» РАН [107]. При выращивании птицы использовали двухфазное кормление, без включения кормовых антибиотиков – с 5-го по 21-й день и с 22-го по 37-й день. Первые пять дней кормление цыплят осуществляли общими престартерными комбикормами.

Контрольная группа получала основной рацион (ОР), сбалансированный по всем питательным веществам согласно рекомендациям для кросса. Цыплятам опытных групп дополнительно к ОР с 5-го дня выращивания и до конца периода откорма включали исследуемые кормовые добавки: 1 опытная группа получала кормовую добавку ГербаСтор в количестве 0,5 г/кг комбикорма, 2 опытная группа – кормовую добавку ПроСтор – 0,5 г/кг комбикорма, 3 опытная группа – кормовую добавку Активо – 0,15 г/кг комбикорма.

В ходе проведения опыта учитывались следующие показатели:

1. Зоотехнические показатели.
   1. Живая масса. Для учета живой массы проводилось индивидуальное взвешивание птицы: каждые 7 дней выращивания.
   2. Сохранность поголовья. Ежедневно учитывался падеж цыплят-бройлеров, в конце периода выращивания по конечному поголовью был произведен расчет сохранности.
   3. Затраты корма на 1 кг прироста живой массы — по фактическому расходу кормов и полученному приросту живой массы по периодам и за весь период выращивания.
   4. Исходя из зоотехнических показателей продуктивности, велся расчёт европейского индекса продуктивности (ЕИП). ЕИП – показатель, применяемый в мировой практике для оценки продуктивных качеств цыплят-бройлеров, определяемый отношением основных продуктивных качеств (живая масса, умноженная на сохранность, деленные на дни выращивания, умноженные на затраты корма на 1 кг прироста), умноженным на 100.
2. Для определения переваримости питательных веществ, баланса азота, кальция и фосфора, был проведен балансовый (физиологический) опыт. Для этого в возрасте 21-го дня были отобраны по 5 средних, для своей группы, по живой массе петушков-бройлеров. Отобранный помёт и комбикорм гомогенизировался и анализировался в аналитической лаборатории «Уральский НИИСХ» — филиале ФГБНУ УрФАНИЦ УрОРАН.

Анализ корма и помета проводили по общепринятым методикам:

— содержание общего азота – по методу Кьельдаля (или Дьякову), ГОСТ Р.51417-99 (%);

— содержание массовой доли сырого жира – методом экстракции, ГОСТ13496.15-97 (%);

— содержание массовой доли сырой клетчатки – удалением из продукта кислото-щелоче-растворимых веществ и определением сырой клетчатки, ГОСТ 13496.2-97(%);

— содержание сырой золы – гравиметрическим методом, ГОСТ 26226-95 (%);

— содержание кальция – атомно-абсорбционным методом, ГОСТ 26570-95 (%);

— содержание фосфора – фотометрическим методом, ГОСТ 26657-97 (%).

1. Анатомическая разделка тушек птицы проводилась согласно методике ФНЦ «ВНИТИП» РАН [108]. Для этого, в конце периода выращивания, было отобрано по 3 петушка-бройлера из каждой группы со средней живой массой по группе. Убой проводился методом декапитации.
2. При проведении анатомической разделки от каждой тушки петушка- бройлера были отобраны большеберцовые кости и образцы мышечной ткани. Проанализирован их химический состав. В костях определяли количество кальция, фосфора, сырой золы. В мышечной ткани – количество сырого белка, сырого жира, сырой золы.
3. В возрасте 29 дней у 5 средних по группе бройлеров, путем декапитации была отобрана кровь для определения морфологических, биохимических и иммунологических показателей. Из морфологических показателей крови определяли: содержание эритроцитов, средний объем эритроцита, распределение эритроцитов по объему, гематокрит (отношение эритроцитов к общему объему крови), количество гемоглобина, среднее содержание гемоглобина в одном эритроците, среднюю концентрацию гемоглобина в эритроцитах, количество лейкоцитов, лейкоцитарный профиль (лимфоциты, моноциты, эозинофилы, базофилы), СОЭ. Из биохимических показателей в сыворотки крови изучали: содержание общего белка, количество альбуминов, глобулинов, альбуминово/глобулиновый индекс, уровень мочевины, креатинина, мочевой кислоты, содержание глюкозы, холестерина, триглицеридов, уровень ферментов аланинаминотрансферазы (АЛАТ) и аспартатаминотрансферазы (АСАТ), содержание кальция, фосфора, калия, натрия, хлора. Из иммунологических показателей определяли бактерицидную активность лейкоцитов.

Исследование крови проводилось в МАУ Клинико-диагностический центр г. Екатеринбурга. Морфологическое исследование крови осуществлялось в лаборатории гемостаза, на автоматическом анализаторе ADVIA 120, производства фирмы BAYER, а также ручным подсчетом форменных элементов в камере Горяева. Биохимический анализ проводился в клинико-диагностической лаборатории на анализаторе Vitros 350 (Ortho-Clinical Diagnostic, США). Бактерицидную активность лейкоцитов определяли в иммунологической лаборатории методом проточной цитометрии на проточном цитофлуориметре BD FACSCanto II (USA) с использованием программного обеспечения Facs Diva Version 6.1.3.

1. Микробиологические исследования содержимого толстого отдела кишечника (слепых отростков) подопытного поголовья птицы (у 5 голов из каждой группы) проводили по результатам вскрытия после убоя, путём микробиологического посева многократно разведенного биоматериала на необходимые селективные питательные среды.
2. Для проведения морфогистологических исследований были взяты образцы органов птиц от 3 голов из каждой группы. Материал фиксировали в 10-% растворе нейтрального формалина. Изучение общих структурных изменений в органах проводили на парафиновых срезах, препараты окрашивали гематоксилином и эозином по общепринятой методике. Все гистологические исследования документировались фотографированием на микроскопе Leica.

На основании результатов научно-хозяйственного опыта была рассчитана экономическая эффективность использования изучаемых кормовых добавок с учетом цен на 2020 год.

Основные экспериментальные данные обработаны методом вариационной статистики с использованием ПК “Microsoft Excel”. Оценку статистической значимости различий между группами проводили с помощью t-критерия Стьюдента.

3.2 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.2.1 Зоотехнические показатели продуктивности цыплят бройлеров

Динамика живой массы является одним из важнейших показателей, характеризующих полноценность кормления птицы и состояния здоровья. В ходе опыта взвешивание цыплят проводилось еженедельно. В таблице 2 представлена динамика средней живой массы бройлеров смешанного стада, а также отдельно по петушкам и курочкам.

Установлено, что практически на протяжении всего периода откорма в опытных группах наблюдалось превосходство цыплят-бройлеров по живой массе по сравнению с контролем. Так, данные по смешанному поголовью птиц свидетельствуют, что в 7 дневном возрасте живая масса цыплят 1, 2 и 3 опытной группы была выше значения контрольной группы на 0,6; 2,8 и 3,5%; в возрасте 14 дней — на 1,9; 4,0 и 4,1%; в 21 день – на 3,2; 3,6 и 2,8%; в 28-дневном возрасте – на 5,3; 7,4 и 2,5% соответственно. На 35-й день откорма птица контрольной группы, по живой массе, опередила цыплят 1 опытной группы на 0,7%, уступая аналогам 2 и 3 опытных групп на 1,1 и 0,1%, соответственно. К концу откорма (37 дней) цыплята 1, 2 и 3 опытных групп по живой массе опережали контрольных сверстников на 2,0; 1,8 и 2,9%, соответственно.

Рассматривая динамику живой массы птиц в зависимости от половой принадлежности видно, что петушки бройлеры опытных групп в 7 дневном возрасте незначительно отличались по живой массе от контрольных аналогов. В возрасте 14 дней отмечено увеличение данного показателя у петушков 1, 2 и 3 опытных групп относительно контроля на 0,7; 5,1 (Р≤0,01) и 4,1(Р≤0,05) % соответственно. В 21 день живая масса петушков 1 и 3 опытных групп превышала контрольных особей на 2,2%, а у представителей 2 опытной группы — на 4,4% (Р≤0,05). В 28 дневном возрасте у петушков контрольной группы наблюдалась наименьшее значение живой массы — 1762 г, при этом самцы 1, 2 и 3 опытных групп превосходили контроль на 5,3 (Р≤0,05); 8,8 (Р≤0,001) и 3,4%. К 35 дневному возрасту разница по живой массе между контрольной и опытными группами была незначительной, но уже через 2 дня, к концу периода выращивания (37 дней), вновь отмечали увеличение этого показателя у петушков опытных групп, но достоверной разницы, в эти периоды, между группами, не установлено.

Курочки бройлеры 1, 2 и 3 опытных групп в 7 дневном возрасте превосходили контрольных аналогов на 3,6; 6,1 (Р≤0,01) и 5,8%(Р≤0,05). Данное превосходство сохранялось до 28 дневного возраста, когда живая масса курочек 1, 2 и 3 опытных групп была соответственно выше контрольных аналогов на 5,2 (Р≤0,01); 5,7(Р≤0,01) и 1,5%.

Таблица 2 — Динамика живой массы цыплят-бройлеров (М±m), (n=44)

Примечание: здесь и далее *- Р≤0,05; **- Р≤0,01; ***- Р≤0,001

В возрасте 35 дней наблюдали снижение живой массы у курочек 1 опытной группы по сравнению с контролем на 1,6%, у птиц 2 и 3 опытных групп данный показатель превосходил контрольное значение на 2,6 и 1,2 %, но разница не была достоверной.

В конце периода выращивания (37 дней) разница по живой массе, между курочками контрольной и 1, 2 и 3 опытными группами увеличилась, составив соответственно 2,1; 3,8 (Р≤0,05) и 5,3%(Р≤0,05).

Абсолютный прирост живой массы цыплят-бройлеров за период выращивания (по смешанному поголовью) был выше в 1, 2 и 3 опытных группах по сравнению с контролем на 2,0; 1,8 и 2,9%. Данный показатель у петушков контрольной группы составил 2742,7 г, у самцов 1, 2 и 3 опытных групп он был выше контроля на 1,9; 0,1 и 0,9%. Абсолютный прирост у курочек 1, 2 и 3 опытных групп опережал контрольное значение на 2,2; 3,8 и 5,4%.

Динамика среднесуточного прироста цыплят-бройлеров (по смешанному поголовью) представлена в таблице 3 и рисунке 1.

Таблица 3 — Среднесуточный прирост цыплят-бройлеров, г (n=44)

Рисунок 1 – Динамика среднесуточного прироста цыплят-бройлеров, г

В среднем за период откорма наибольший среднесуточный прирост наблюдался в 3 опытной группе и составил 69,6 г, что на 3,0% больше, чем в контроле. В 1 и 2 опытных группах этот показатель превосходил контрольный уровень на 2,1 и 1,8 %.

Затраты корма в контрольной и 3 опытной группах составили 1,76 кг на 1 кг прироста живой массы цыплят-бройлеров. В 1 и 2 опытных группах отмечено снижение затрат корма по сравнению с контролем на 0,02 и 0,05 кг, или на 1,14 и 2,8 %.

За период эксперимента максимальная сохранность поголовья (100%) наблюдалась в 3 опытной группе, превышая значение всех остальных подопытных групп птицы на 2,3%.

По совокупности данных, характеризующих основные продуктивные показатели цыплят-бройлеров, был рассчитан европейский индекс продуктивности. Данный показатель во всех подопытных группах был на достаточно высоком уровне, при этом 1, 2 и 3 опытные группы опережали контрольный уровень (381 ед) на 11, 17 и 21 единицу.

Таким образом, включение в состав комбикорма кормовых добавок ГербаСтор, ПроCтор и Активо, в соответствующих дозировках, оказало стимулирующее влияние на рост и развитие цыплят-бройлеров. В 1 и 2 опытных группах повышение живой массы птицы сопровождалось снижением затрат корма на 1 кг прироста живой массы, а в 3 опытной группе — повышением сохранности поголовья. Некоторые возможные механизмы эффекта стимуляции роста бройлеров под воздействием кормовых добавок синбиотического и фитобиотического состава, согласно литературным данным [108] обусловлены снижением общей бактериальной нагрузки, подавлением патогенных микроорганизмов и прямой модуляции иммунной системы цыплят.

3.2.2 Результаты анатомической разделки цыплят

В 38-дневном возрасте были отобраны по 3 петушка бройлера, наиболее характерных по живой массе, для каждой подопытной группы, с целью оценки влияния изучаемых кормовых добавок на мясные качества птицы. Живая масса петушков контрольной группы, при этом, составила 2869 г, в 1 опытной группе данный показатель был несколько ниже значения контроля — на 0,5%, а во 2 и 3 опытных группах, опережал контроль на 1,4 и 1,1% (табл. 4).

Одним из основных видов продукции птицефабрик являются товарные тушки цыплят-бройлеров. Масса потрошеной тушки в 1 и 2 опытных группах была ниже контроля на 1,62%, а в 3 опытной группе превосходила контроль на 0,68%. Установлено, что наибольший убойный выход потрошенной тушки был в контрольной группе, и составил 71,8%. В 1, 2 и 3 опытных группах данный показатель был ниже контрольного значения, соответственно, на 0,8; 2,1 и 0,3%. При этом в составе тушек петушков из 1, 2 и 3 опытных групп, по сравнению с контрольными аналогами, было большее количество мяса, на 2,5; 0,8 и 5,4%, а также наблюдалась меньшее значение массы костей, соответственно на 15,3; 2,6 и 13,9%. В результате этого мясокостный индекс потрошеной тушки, установленный по отношению массы мышечной ткани к массе костей, в контрольной группе составил 6,8 единиц, что меньше значений 1, 2 и 3 опытных групп, на 1,4; 0,2 и 1,5 единиц.

Содержание кожи в составе тушки в контрольной группе составило 213,8 г, в 1, 2 и 3 опытных группах ее количество было ниже значения контроля на 10,1; 2,6 и 3,1%.

Таблица 4 – Результаты анатомической разделки бройлеров, г (М±m), (n=3)

Результаты анатомической разделки и дальнейшей обвалки тушек цыплят позволили определить развитие отдельных ее частей под воздействием исследуемых кормовых факторов (табл. 5).

Общая масса грудки в контрольной группе была на уровне 826,7 г, что составляет 40,1% от массы потрошеной тушки, при этом в составе грудки выделено 726 г мяса, что составляет 35,2% от массы потрошеной тушки. В 1 опытной группе масса грудки была меньше контрольного значения на 1%, но при этом получен больший процент от массы потрошеной тушки, на 0,3%. Количество мяса в грудке цыплят 1 опытной группы было больше, чем в контрольной группе на 1,2%. Во 2 опытной группе масса грудки имела наименьшее среднее значение среди остальных подопытных групп, и на 3,6% меньше контроля, мяса в составе грудки было меньше значения контроля на 1,5%, при этом процент мышц грудки от массы потрошеной тушки был практически на уровне контроля (35,3%). В 3 опытной группе масса грудки была наибольшей и составляла 40,8% от массы потрошеной тушки, что на 0,7% больше контроля, мышечной массы в составе грудки данной группы было достоверно(Р≤0,05) больше, чем в контрольной группе, на 5,4%.

Масса бедра в контрольной группе составила 160 г, в 1, 2 и 3 опытных группах данный показатель был выше на 0,4; 2,5 и 6,3%, относительно массы тушки, масса бедра 1, 2 и 3 опытных групп, также была несколько выше, чем в контроле, на 0,1; 0,3 и 0,4%.

Таблица 5 – Результаты обвалки отдельных частей тушки бройлера, (М±m), (n=3)

Мышц в бедре цыплят 1, 2 и 3 опытных групп было большее количество, чем у контрольных аналогов на 9,8; 7,0 и 14,7% соответственно. Также 1 2 и 3 опытные группы превосходили контрольных аналогов по относительной массе мышц бедра, в среднем на 0,6%.

Голень цыплят 1, 2 и 3 опытных групп имела большее значение по массе, чем у птицы контрольной группы, как по абсолютной разнице (больше на 1,6; 9,5 (Р≤0,05) и 3,2%), так и по относительному показателю к массе потрошеной тушки (больше на 0,2; 0,7 и 0,2%). Количество мышечной ткани в голени цыплят контрольной группы составило 94,3 г, это меньше, чем у цыплят 1, 2 и 3 опытных групп на 2,5; 8,9 и 3,9%.

Масса крыла у цыплят контрольной группы находилась на уровне 102 г, у бройлеров 1 и 3 опытных групп масса крыльев была достоверно меньше — на 5,2 (Р≤0,01) и 4,6 (Р≤0,05) %, соответственно, а у птиц 2 опытной группы на 4,2% больше контроля. Количество мышечной ткани крыла у петушков 1, 2 и 3 опытных групп превосходило контроль на 6,9; 21,6 и 8,9%.

Каркас — это наименее ценная часть тушки. Все петушки опытных групп имели меньшую массу каркаса, чем контрольные аналоги, в среднем на 6-9%, а также меньшую массу соответствующих мышц на 3-14%.

Таким образом, ввод изучаемых кормовых добавок, благоприятно отразился на мясных качествах цыплят-бройлеров, выражаясь, в относительном и абсолютном повышении количества мышечной ткани в составе тушке, а также в увеличении массы наиболее ценных частей тушки (грудка, голень и бедро) и снижении массы наименее ценных частей (каркас).

3.2.3 Развитие внутренних органов цыплят

Оценку развития внутренних органов цыплят-бройлеров проводили в возрасте 29 и 37 дней, для этого были отобраны по 5 средних по живой массе бройлера из каждой подопытной группы. В таблице 6 представлены результаты измерений некоторых внутренних органов. Средняя живая масса отобранных птиц не имела достоверных отличий между подопытными группами.

В 29 дневном возрасте печень цыплят 1, 2 и 3 опытных групп имела меньшую относительную массу, по сравнению с контрольной группой на 0,12-0,16%. Абсолютная масса кишечника цыплят контрольной группы составляла 84,2 г, а относительная — 5,13%, при длине 183 см. У особей 1 опытной группы абсолютная масса кишечника была меньше, чем у цыплят контрольной группы на 15%, а относительная масса – на 0,89%, при этом кишечник был короче на 5,6 см. У цыплят 2 опытной группы в этот период кишечник имел достоверно меньшую абсолютную массу, чем в контроле, на 26,8% (Р≤0,01) и длина его была короче на 19,6 см. Масса кишечника цыплят 3 опытной группы уступала контролю на 4,5 %, но при этом он был длиннее на 7 см.

Масса поджелудочной железы цыплят подопытных групп в возрасте 29 дней находилась в пределах 3,55-4,45 г. При этом относительная масса поджелудочной железы цыплят контрольной группы составила 0,24%, у аналогов 1 и 2 опытных групп данный показатель был ниже контроля на 0,02 и 0,03%, а у птиц 3 опытной группы напротив, превысил контроль, на 0,3%.

Таблица 6 — Масса внутренних органов цыплят-бройлеров в возрасте 29 дней, (М±m), (n=3)

Слепые отростки толстого отдела кишечника у цыплят контрольной группы имели массу 11,6 г, у бройлеров 1 и 2 опытных групп их абсолютная масса была больше контроля на 6,9 и 13,8%. У цыплят 3 опытной группы данный показатель был меньше контрольного уровня на 12,1%. При этом длина слепых отростков цыплят подопытных групп изменялась в незначительных пределах 16,2-16,4 см.

Масса фабрициевой бурсы у птиц контрольной, 2 и 3 опытных групп была практически одинаковой, составляя 3,8; 3,7 и 3,7 г соответственно. У курочек 1 опытной группы масса данного органа была на 15,8% меньше значения контроля.

Отмечено, что масса тимуса цыплят 1, 2 и 3 опытных групп в возрасте 29 дней была значительно больше контрольного уровня соответственно на 41,7; 83,3(Р≤0,01) и 77,1(Р≤0,01) %.

Масса селезенки птиц контрольной группы составляла 1,8 г, у особей 1, 2 и 3 опытной группы этот показатель был ниже контроля на 9,6; 18,1 и 11,9%.

Масса исследуемых внутренних органов цыплят-бройлеров в возрасте 37 дней соответствовала физиологическим нормам, при этом между группами отмечали некоторые различия (табл. 7). Так, относительная масса печени в контрольной группе составила 2,4%, в 1 и 3 опытных группах она была ниже контроля на 0,22 и 0,06 %, а во 2 опытной группе превышала контроль на 0,02%. Относительная масса почек в контрольной группе составляла 0,62%, в 1 опытной группе данный показатель был выше значения контроля на 0,01%, в 2 и 3 опытных группах ниже — на 0,4-0,5%.

Таблица 7 — Масса внутренних органов цыплят-бройлеров в возрасте 37 дней, г (М±m), (n=3)

Относительная масса сердца, цыплят контрольной группы равнялась 0,5%, аналогичный показатель у цыплят 1 и 2 опытных групп был ниже на 0,05%, а у бройлеров 3 опытной — на 0,01%.

Масса легких у цыплят подопытных групп находилась в пределах 14,3-16,0 г.

Масса кишечника в контрольной группе составила 146 г, при длине 223 см. У птиц 1 и 2 опытной группы кишечник имел большую массу, на 4,1 и 28,3% и был длиннее на 23,3 (Р≤0,05) и 43,3 (Р≤0,01) см, по сравнению с контролем. Масса кишечника цыплят 3 опытной группы была меньше, чем у контроля на 12,8%, при этом он был длиннее на 5 см.

Масса тимуса была самой высокой у цыплят 2 опытной группы, на 38,2% (Р≤0,05) достоверно больше, чем у контрольных сверстников. У птиц 3 опытной данный показатель был больше контроля на 4,1%, а у бройлеров 1 опытной группы соответствовал контролю.

Масса желудка в контрольной группе была наименьшей, составив – 27,2 г. В 1, 2 и 3 группе этот показатель был выше контрольного значения на 37,4 (Р≤0,05); 26,3 и 24,1%.

Таким образом, ввод экспериментальных кормовых добавок в рацион цыплят-бройлеров, не оказал отрицательного влияния на развитие внутренних органов птиц. При этом под влиянием скармливания ГербаСтора отмечалось достоверное возрастание в конце откорма массы мышечного желудка бройлеров. Включение ГербаСтора и ПроСтора в комбикорм сопровождалось достоверным увеличением в конце технологического цикла длины кишечника и повышением относительной массы этого органа у птиц. Использование ПроСтора способствовало достоверному повышению массы центрального органа иммуногенеза цыплят – тимуса, а также характеризовалось тенденцией повышения массы фабрициевой бурсы. Отмеченные положительные изменения в повышении массы центральных органов иммунитета цыплят, с учетом проведенной нами их гистологической оценки, свидетельствующей о выраженной активизации процессов иммуногенеза, говорят о профилактирующем акцидентальную инволюцию действии данного препарата, позволяющего повысить массу органов за счет сохранения лимфоцитов корковой зоны.

3.2.4 Химический состав мяса цыплят-бройлеров

Химический состав грудных мышц представлен в таблице 8. Количество сухого вещества в грудных мышцах петушков контрольной группы составляло 24,5%, у цыплят 1 опытной группы данный показатель был выше контроля на 0,1%, у бройлеров 2 и 3 опытных групп он был меньше контрольного уровня на 0,7 и 1,0 % (Р≤0,05) соответственно. Содержание белка в составе мышечной ткани грудки опытных цыплят было на следующем уровне по отношению к контролю: в 1 опытной группе выше на 0,1%, а во 2 и 3 опытных группах меньше на 0,3 и 1,1% (Р≤0,05) соответственно. Количество жира в мясе цыплят контрольной группы было на уровне 1,36%, в 1 и 2 опытных группах этот показатель был выше, чем у контрольных сверстников на 0,07 и 0,1%, а в 3 опытной группе — меньше на 0,21%.

Таблица 8 – Химический состав грудных мышц бройлеров, % (М±m) (n=3)

Зола в мышцах представлена в основном минеральными веществами, входящими в состав биомолекул. Ее количество в грудной мышце бройлеров контрольной, 2 и 3 опытных групп находилось на уровне 1,06-1,08%, во 2 опытной группе наблюдали повышение данного показателя по отношению к контролю на 0,05 %.

На основе химического анализа грудной мышцы бройлеров была рассчитана энергетическая ценность мяса. В контрольной группе энергетическая ценность составила 398,73 кДж в 100 г мяса. В 1 опытной группе количество энергии в 100 г мышечной ткани грудки составляло 402,9 кДж, что на 1% больше контроля. Во 2 опытной группе данный показатель был меньше контроля на 0,65%. Наиболее низкой энергетической ценностью обладали грудные мышцы цыплят 3 опытной группы — 371,3 кДж, что достоверно уступало контрольному значению на 6,87% (Р≤0,05).

Индекс качества мяса (ИКМ) — отношение жира к белку контрольной группе составил 0,066 единиц. В 1 и 2 опытных группах данный показатель был выше значения контроля на 0,002 и 0,005 единиц соответственно. В 3 опытной группе ИКМ был меньше контроля на 0,008 единиц.

В таблице 9 представлены результаты химического анализа ножных мышц цыплят-бройлеров.

Таблица 9 – Химический состав ножных мышц бройлеров, %

(М±m), (n=3)

В контрольной и 1 опытной группах содержание сухого вещества в ножной мышце было практически на одном уровне (27,3 и 27,1%). Вторая опытная группа уступала по данному показателю контрольному значению на 0,8%, а в 3 опытной группе было наибольшее значение – 27,6%.

По содержанию белка в ножной мышце лидировала контрольная группа – 20,59 %. Уровень белка в ножной мышце 1, 2 и 3 опытных групп был ниже, чем у цыплят контрольной группы на 0,4-0,7%.

Количество жира в составе ножных мышц было наибольшим в 3 опытной группе — 5,48%. У цыплят контрольной и 2 опытной групп содержание жира было на одном уровне, и составляло 4,51 %. Содержание жира в мясе 1 опытной группы было выше, чем в контроле на 0,11%.

Количество зольных веществ в мясе цыплят подопытных групп было на уровне 1,10-1,13%.

Энергетическая ценность 100 г мяса ножных мышц в контрольной группе составила 514,8 кДж, в 1 и 2 опытных группах данный показатель был меньше, чем у контрольных аналогов на 1,1 и 2,3%. В 3 опытной группе получен наибольший показатель энергетической ценности мяса окорочка, превосходивший контрольный уровень на 5,8%.

Индекс качества мяса в контрольной группе был равен 0,22 единицы, в 1 и 2 опытных группах он был выше на 0,01 единицу, а в 3 опытной превышал контроль на 0,05 единиц.

Таким образом, химический анализ мышечной ткани цыплят-бройлеров показал, что при включении в состав рациона цыплят-бройлеров комплексных препаратов на основе синбиотиков и фитобиотиков (ГербаСтора и ПроСтора) наблюдалась тенденция повышения количества жира в грудных мышцах бройлеров и снижение содержания белка в ножных мышцах. При использовании фитобиотической микрокапсулированной добавки (Активо) отмечено достоверное снижение, по сравнению с контролем, количества сухого вещества и белка в грудных мышцах и тенденция увеличения белка и жира в ножных мышцах.

3.2.5 Переваримость питательных веществ комбикорма

В таблице 10 показаны коэффициенты переваримости питательных веществ цыплятами-бройлерами, полученные по результатам балансового опыта. Коэффициент переваримости сухого вещества цыплятами бройлерами 1, 2 и 3 опытных групп был выше значения контроля на 1,8; 0,5 и 1,9%, соответственно.

Переваримость сырого протеина у цыплят контрольной группы составляла 93,6%, у цыплят 2 группы она была ниже контрольного значения на 0,4%, а у цыплят 1 и 3 опытных групп выше, чем у контрольных сверстников — на 0,1 и 1,6%.

Сырой жир переваривался цыплятами контрольной группы на 67,3 %, в 1, 2 и 3 опытных группах данный показатель превосходил контроль на 10,7; 11,0 и 6,7%.

Во всех опытных группах отмечали повышение переваримости клетчатки по сравнению с контрольной группой: в 1 опытной группе — на 2,1; во 2 опытной группе – на 8%, в 3 опытной группе – на 3%.

Таблица 10 – Коэффициенты переваримости питательных веществ цыплятами-бройлерами, % (n=5)

Переваримость безазотистых экстрактивных веществ у цыплят 1, 2 и 3 опытных групп была выше контрольного уровня на 2,2; 1,7 и 1,0%.

Таким образом, данные о переваримости питательных веществ комбикорма цыплятами-бройлерами свидетельствуют об эффективности ввода в состав рациона анализируемых кормовых добавок. Во всех опытных группах установлено повышение переваримости жира, клетчатки и безазотистых экстрактивных веществ. Помимо этого, в 3 опытной группе также отмечено повышение переваримости сырого протеина. Результаты балансового опыта подтверждают более высокий уровень живой массы птицы, получавшей экспериментальные кормовые компоненты, по сравнению с контрольными аналогами.

3.2.6 Обмен энергии

Обменная энергия важнейший показатель общей питательной ценности корма. Для его расчета была вычислена валовая энергия корма и энергия помета, с помощью уравнений регрессии (табл. 11).

Потребление валовой энергии коррелировало с потреблением корма цыплятами-бройлерами и было наибольшим во 2 опытной группе – 2,07 МДж/гол в сутки, это больше относительно контрольной группы на 2%. Контрольная и 1 опытная группы получили в период проведения балансового опыта по 2,03 МДж валовой энергии корма на голову в сутки. Меньшее количество энергии в этот период получено цыплятами 3 опытной группы, меньше значения контроля на 5,9%.

Часть энергии корма не переварилось цыплятами и вышло в составе помета. Больше всего энергии содержалось в помете у цыплят контрольной группы, в 1, 2 и 3 опытных группах количество энергии в помете было меньше на 10,0; 5,0 и 15,0%, соответственно.

Таблица 11 – Обмен энергии в организме цыплят-бройлеров, МДж/гол в сутки (n=5)

Оставшееся количество энергии, называемое обменной, используется птицей на жизнедеятельность и образование продукции. Известно, что недостаток энергии приводит к изменениям метаболизма, в том числе к снижению использования протеина и выделению продуктов обмена в виде солей мочевой кислоты, что может привести к возникновению мочекислого диатеза, снижению продуктивности и резистентности птицы [109-112]. В контрольной группе количество обменной энергии на 1 цыплёнка в сутки было на уровне 1,62 МДж, что составляет 80,1 % от валовой энергии корма. В 1 и 2 опытных группах уровень обменной энергии был выше, чем в контроле на 3,1 и 4,3%, при этом использование обменной энергии от валовой энергии корма было больше аналогичного показателя контрольной группы на 2,2 и 1,5%, соответственно. В 3 опытной группе количество обменной энергии было меньше, чем в контроле на 3,1%, но при этом использование энергии в данной группе было выше контрольного уровня на 2,1%, в связи с меньшим выделением энергии с помётом.

3.2.7 Обмен азота

Азотистые вещества корма играют важную роль в реализации птицей ее продуктивного потенциала, они не полностью перевариваются организмом, и полнота их переваримости во многом зависит от структуры белковой молекулы, вида корма, степени гидролиза в организме, содержанием в рационе других биологически активных веществ.

Баланс азота в организме цыплят-бройлеров представлен в таблице 12.

У петушков бройлеров контрольной группы в теле за сутки откладывалось 2,5 г азота, что составляло 64,2% азота, принятого с кормом. Во 1,2 и 3 опытных группах наблюдалось увеличение количества удерживаемого азота корма соответственно на 0,8; 5,2 и 1,2%, по сравнению с контрольной группой. Процент использования азота от принятого с кормом также был выше в 1, 2 и 3 опытных группах, по сравнению с контролем, на 1,3; 1 и 2,6%.

Таблица 12– Баланс азота в организме цыплят-бройлеров, г на голову в сутки (n=5)

Таким образом, включение в рацион цыплят-бройлеров исследуемых кормовых добавок способствует увеличению использования азота птицей. Наилучшее использование данного элемента наблюдалось в 3 опытной группе.

3.2.8 Обмен кальция и фосфора, минерализация костной ткани

По результатам балансового опыта был определен баланс кальция и фосфора в организме исследуемых птиц (табл.13).

Таблица 13– Баланс кальция в организме цыплят-бройлеров, г на голову в сутки (n=5)

Петушки-бройлеры контрольной группы в среднем за учетный период балансового опыта потребляли с кормом 0,9 г кальция в сутки на голову, при этом выделялось с пометом в среднем 0,61 г. В итоге отложение в теле кальция в сутки составило 0,29 г, или 32,6% от принятого с кормом.

В 1 опытной группе отложение кальция в теле птицы было больше, чем в контрольной группе на 65,5%, при этом использование этого макроэлемента от всего принятого с кормом было выше, чем аналогичный показатель контрольной группы на 8,51%.

Цыплята 2 опытной группы использовали кальций корма на 31,18%, это меньше, чем аналогичный показатель контроля на 1,4%, но при этом в теле кальция отложилось больше, чем в контроле на 27,6%.

Лучше всего использовали кальций петушки 3 опытной группы. Коэффициент его использования в организме от принятого с кормом составил 52,9%. При этом поступление кальция было минимальным и составляло 0,99 г на голову в сутки, из них в теле отложились 0,52 г кальция.

В таблице 14 показан баланс фосфора. Использование фосфора цыплятами контрольной группы составило 24,6% (табл.14). У цыплят 2 опытной группы данный показатель был меньше, чем в контрольной группе на 0,9%, но при этом в теле этого элемента отложилось больше на 0,03 г. Петушки-бройлеры 1 и 3 опытных групп в ходе опыта показали наибольшее использование фосфора, на 14,75 и 10,75%, по сравнению с контрольной группой.

Таблица 14 – Баланс фосфора в организме цыплят-бройлеров, г на голову в сутки (n=5)

В таблице 15 представлены результаты химического анализа большеберцовых костей цыплят-бройлеров в возрасте 37 дней. Достоверной разницы между показателями не обнаружено. Количество сухого вещества в составе костной ткани в подопытных группах было на уровне 93,3-93,5%. Наибольшее количество сырой золы было в контрольной группе (45,1%), в 1, 2 и 3 опытных группах данный показатель уступал контролю соответственно на 1,7; 2,1 и 1,1%.

Таблица 15 – Содержание сырой золы, кальция и фосфора в большеберцовой кости цыплят-бройлеров, % (n=3)

В 1 и 2 опытных группах количество кальция и фосфора в костях было меньше, чем в контрольной группе, соответственно на 0,6 и 0,7% и на 0,4 и 0,6%. В 3 опытной группе содержание кальция было больше контроля на 0,2%, а фосфора, меньше, на 0,2%.

Таким образом, скармливание исследуемых кормовых добавок благоприятно воздействует на использование кальция и фосфора птицей из корма и обеспечивает оптимальный процесс обмена этих макроэлементов в организме. При этом наиболее высокие показатели получены в 3 опытной группе.

3.2.9 Морфологический состав крови цыплят-бройлеров

Процессы, протекающие в организме при использовании биологически активных добавок, отражаются на морфологическом составе крови и её физико-химических свойствах, по которым можно судить о степени интенсивности окислительных процессов и уровне обмена веществ. Изученные нами морфологические показатели крови цыплят-бройлеров при включении в комбикорм кормовых добавок, включающих безопасные стимуляторы роста в составе рациона, представлены в таблице 16.

Морфологический анализ крови свидетельствовал о том, что изучаемые показатели находились в пределах физиологических значений, однако между группами отмечены некоторые отличия. Так, в возрасте 29 дней количество эритроцитов в крови цыплят контрольной группы составляло 3,38 10¹²/л. В 1 и 2 опытной группе содержание этих форменных элементов было выше в сравнении с контрольным значением на 4,7 и 3,9 %, что может свидетельствовать о повышении процесса эритропоэза под действием препаратов ГербаСтор и ПроСтор. В 3 опытной группе содержание эритроцитов в крови бройлеров незначительно уступало контролю – на 0,6%. Повышение количества эритроцитов во 2 опытной группе сопровождалось увеличением их среднего объема, по сравнению с контролем, на 14 % и снижением распределения эритроцитов по объему на 1,54 %. Величина гематокрита (отношение эритроцитов к общему объему крови) в 1 и 2 опытных группах превышала контроль на 1,69 и 1,81%, а в 3 опытной группе соответствовала ему.

В ходе оценки количества гемоглобина в крови установлена тенденция повышения его у птиц всех опытных групп, что свидетельствует об активизации окислительно-восстановительных процессов в организме под действием изучаемых кормовых средств. При этом более высокий его уровень наблюдали у бройлеров, получавших ПроСтор – на 5,53%. У цыплят 1 опытной группы, в рацион которых включали ГербаСтор, содержание гемоглобина было выше контроля на 4,3%, у аналогов 3 опытной группы, при использовании Активо – на 0,62 %.

Среднее содержание гемоглобина в одном эритроците — это показатель, который отражает концентрацию железосодержащего белка в красном кровяном тельце, было выше во 2 и 3 опытных группах, по сравнению с контролем – на 1,41 и 1,34 %, в 1 опытной группе этот параметр был ниже контрольного значения на 0,36%. Средняя концентрация гемоглобина в эритроцитах в крови цыплят также имела тенденцию повышения у бройлеров 2 и 3 опытных – на 0,4 и 1,04 %, а у цыплят 1 опытной группы уступала контролю на 0,29%.

Таблица 16 — Морфологические показатели крови цыплят-бройлеров в возрасте 29 дней (M±m; n=5)

Анализируя содержание лейкоцитов в крови цыплят видно, что у бройлеров 1 и 2 опытных групп их было больше, чем в контроле на 8,03 и 14,75%, что может говорить об усилении лейкопоэза в пределах референсных значений. В крови особей 3 опытной группы количество лейкоцитов было ниже, чем у контрольных сверстников на 5,3%.

Сравнение процентного соотношения различных видов лейкоцитов в крови бройлеров показало, что во всех опытных группах количество лимфоцитов и моноцитов было меньше контрольного уровня: в 1 опытной группе – на 5,2 и 1,0%, во 2 опытной группе – на 11,8 и 0,6 %, в 3 опытной группе — на 2,2 и 2,8% соответственно.

Содержание псевдоэозинофилов и эозинофилов (в сумме) в контрольной группе находилось на уровне 21,00%. Использование в составе рациона испытуемых кормовых добавок сопровождалось повышением данных групп лейкоцитов в крови цыплят: в 1 опытной группе – на 5,6; во 2 опытной группе — на 12,4 % (Р≤0,001) и 3 опытной группе на 4,2%. Данные изменения находились в пределах нормативных значений.

Уровень базофилов в крови бройлеров всех групп соответствовал физиологическим требованиям для птиц этого возраста и колебался в пределах 1,8 – 2,6%.

Скорость оседания эритроцитов у цыплят, задействованных в опыте, соответствовала нормативному уровню и составляла: в контрольной группе – 2,6 мм/час, в 1 опытной группе – 2,4; во 2 опытной группе – 2,6 и в 3 опытной группе – 2,4 мм/час.

Таким образом, при введении комплексных препаратов на основе синбиотиков и фитобиотиков, а также фитобиотической микрокапсулированной добавки дополнительно к основному рациону цыплят-бройлеров, анализируемые морфологические показатели крови птиц не выходили за пределы физиологических норм, что свидетельствует об отсутствии отрицательного влияния добавок на организм птицы.

3.2.10 Биохимический состав крови бройлеров

В таблице 17 представлены биохимические показатели крови цыплят-бройлеров в возрасте 29 дней.

Анализируя содержание общего белка в сыворотке крови мясной птицы видно, что при использовании комплексной добавки ПроСтор, включающей синбиотики и фитобиотики, дополнительно к основному рациону (2 опытная группа), его величина имела тенденцию к повышению на 4,32%, по сравнению с контролем, находясь в пределах физиологической нормы. У бройлеров 1 опытной группы количество общего белка в крови соответствовало контрольному значению, а у цыплят 3 опытной группы уступало ему на 6,07%.

Концентрация альбуминов в сыворотке крови птиц контрольной и 2 опытной группы была одинаковой, составив 10,28 г/л, а у особей 1 и 3 опытной группы содержание этой белковой фракции было ниже контроля на 3,11 и 9,14%.

Таблица 17 — Биохимический состав крови цыплят-бройлеров в возрасте 29 дней, (M±m; n=5)

Концентрация альбуминов в сыворотке крови птиц контрольной и 2 опытной группы была одинаковой, составив 10,28 г/л, а у особей 1 и 3 опытной группы содержание этой белковой фракции было ниже контроля на 3,11 и 9,14%. Максимальное количество глобулинов было отмечено в сыворотке крови бройлеров 2 опытной группы, что на 6,93% превышало контроль. Уровень глобулинов у цыплят 1 опытной группы незначительно опережал контроль – на 1,06%, а у сверстников 3 опытной группы уступал контролю – на 4,22%. Соотношение альбуминов к глобулинам — А/Г индекс, составил в контрольной группе 0,60; в 1 опытной группе 0,58; во 2 и 3 опытной группе — 0,57 единиц, что свидетельствует о преобладании альбуминсинтезирующей функции печени у бройлеров, получавших исследуемые кормовые добавки.

Мочевина является одним из конечных продуктов белкового обмена птиц. Она представляет собой диамид угольной кислоты, образующийся в печени при обезвреживании аммиака, синтезируется специальной группой ферментов. Она не выполняет каких-либо функций в крови или во внутренних органах. Её уровень в крови — отражение баланса между скоростью синтеза в печени и скоростью выведения почками с мочой. Это соединение необходимо для безопасного выведения азота из организма. Нами установлено, что при дополнительном включении изучаемых кормовых компонентов в рацион уровень мочевины в сыворотке крови птиц 1 опытной группы соответствовал контролю, составив 0,26 ммоль/л. Во 2 и 3 опытных группах наблюдали существенное снижение данного метаболита в сыворотке крови бройлеров по сравнению с контролем на 15,38 %, что говорит о снижении катаболических процессов в организме цыплят этих групп и повышении степени усвоения азота свободных аминокислот, что благоприятно отражается на продуктивности бройлеров.

Креатинин — это важное химическое соединение в организме, образующееся в результате распада белковых молекул, и регулирующее биоэнергетику на уровне митохондрий. Это вещество представляет собой неотъемлемую часть остаточного азота. Организм ничего с креатинином сделать не может, кроме как вывести его. Накапливаемый в крови сверх меры креатинин начинает оказывать токсическое воздействие на системы организма, постепенно увеличивая их отравление. Исходя из данных научно-хозяйственного опыта, видно, что наименьшее количество креатинина было в сыворотке крови у цыплят 3 опытной группы, меньше, чем в контроле на 4,85%. У птиц 1 и 2 опытных групп данный метаболит был на уровне контрольного значения, находясь в пределах 23,06-23,34 мкмоль/л и соответствуя физиологической норме.

Основным конечным продуктом белкового обмена у птиц является мочевая кислота. Оптимальным принято считать содержание мочевой кислоты в сыворотке крови не выше — 360 мкмоль/л [113]. В наших исследованиях установлено, что у птиц всех подопытных групп количество мочевины в сыворотке крови не превышало оптимальный уровень. При этом наименьшее значение этого метаболита отмечено во 2 опытной группе – 131,13 мкмоль/л, что ниже контроля на 33,36%. Низким содержанием мочевой кислоты характеризовались 1 и 3 опытная группа, меньше, чем у особей контрольной группы на 26,45 и 19,51%. Тенденция снижения количества мочевой кислоты в сыворотке крови цыплят опытных групп свидетельствует о лучшем усвоении белкового азота в организме птиц, что подтверждается более высокими приростами живой массы.

Уровень углеводного обмена определяли по содержанию глюкозы в сыворотке крови. Данный метаболит играет роль связующего звена между энергетической и пластической функциями в организме. Более высокое содержание глюкозы в сыворотке крови отмечали у цыплят 2 опытной группы — 14,29 ммоль/л, что на 7,37% было выше контроля. У бройлеров 1 и 3 опытных групп разница по этому показателю с контролем была незначительна.

Липидный обмен оценивали по содержанию холестерина и триглицеридов в сыворотке крови цыплят. Холестерин содержится во всех клетках животного и необходим уже на самых ранних стадиях развития. Причём его общее количество в организме остаётся примерно на одном уровне при любых экзогенных воздействиях, посредством гомеостаза организма [114]. В наших исследованиях уровень холестерина у птиц контрольной группы составил 2,94 ммоль/л, у цыплят 1 и 3 опытных групп наблюдали его снижение, по отношению к контрольному уровню на 6,46%, а во 2 опытной группе, повышение — на 12,59%.

В отношении содержания триглицеридов установлена тенденция их снижения у цыплят 1 и 2 опытных групп, по сравнению с контролем, соответственно на 32,1 и 21,43 % и достоверное снижение у цыплят 3 опытной группы на 42,86%, (Р≤0,05), что говорит об активизации липидного обмена в организме птицы и согласуется с исследованиями других авторов [22,115].

Ферменты АЛАТ и АСАТ занимаются транспортировкой аминокислот из одной молекулы в другую. Аминокислоты играют основную роль в построении белков. В АЛАТ находится аминокислота — аланин (отсюда и название АЛАТ), а в АСАТ присутствует аспарагин и фермент пиридоксин (витамин В 6). Имеется перечень органов, в которых синтезируются данные ферменты, по убыванию, т.е. в списке на первом месте будет стоять орган, где фермента больше всего. АЛАТ присутствует в: печени, почках, сердце, в скелетных мышцах. АСАТ присутствует в: сердце, печени, клетках головного мозга, мышечной ткани скелетной мускулатуры. Если происходит разрушение клеток, значит, нарушается их целостность, и ферменты попадают в кровь. В зависимости от того, какого фермента больше в анализе крови, можно сделать вывод о состоянии соответствующего органа. Фермент АЛАТ является специфическим маркером функционального состояния печени, повышение его связано с гепатитами разной этиологии. Повышение активности АСАТ характерно при нарушении функций сердечно-сосудистой системы. В наших исследованиях уровень данных ферментов не имел достоверных различий между группами. Отмечено снижение уровня АЛАТ у цыплят-бройлеров 2 и 3 опытной группы по сравнению с контролем на 8,55 и 4,27%, и повышение у цыплят 1 опытной группы на 19,7%. Поскольку этот фермент в преобладающем количестве синтезируется в клетках печени, можно предполагать о меньшем клеточном повреждении в этом органе у птицы, получающей ПроСтор и Активо, что подтверждается проведенными нами морфогистологическими исследованиями печени.

Аналогично изменениям АЛАТ, изменялась активность фермента АСАТ в сыворотке крови цыплят подопытных групп. Её количество в крови бройлеров 2 и 3 опытных групп было меньше, по сравнению с контролем на 6,73 и 17,34% и превышало контрольный уровень у бройлеров 1 опытной группы на 11,1%.

Анализ минерального состава сыворотки крови показал, что количество кальция у птиц, участвующих в эксперименте, соответствовало физиологической норме, при этом в опытных группах бройлеров содержание этого макроэлемента было ниже контроля на 1,92-4,23%.

При оценке количества фосфора в крови наблюдали повышение его уровня у птиц 1 и 2 опытных групп на 13,75 и 5,42%. У сверстников 3 опытной группы содержание этого макроэлемента соответствовало контрольному значению и составляло 2,4 ммоль/л.

Содержание калия, натрия и хлора в крови подопытных птиц варьировало в пределах 4,85-5,65 ммоль/л, 150,4-151,2 ммоль/л и 112,2-115,6 ммоль/л соответственно и находилось в пределах физиологических значений.

Таким образом, проведенное биохимическое исследование крови позволило установить, что применение экспериментальных кормовых добавок при выращивании цыплят-бройлеров дополнительно к основному рациону не оказывает отрицательного влияния на обменные процессы в организме птиц. При этом наблюдается улучшение усвоения белкового азота у бройлеров опытных групп, о чем свидетельствует снижение мочевой кислоты в сыворотке крови. Данное обстоятельство подтверждается увеличением использования азота корма цыплятами (по результатам балансового опыта) и повышением их среднесуточного прироста. Кроме того, использование исследуемых кормовых средств сопровождается активизацией липидного обмена в организме птиц, что характеризуется тенденцией снижения количества триглицеридов в сыворотке крови у особей 1 и 2 опытных групп и достоверно меньшим их содержанием у бройлеров 3 опытной группы, а также способствует снижению активности трансаминаз, демонстрируя более высокую устойчивость внутренних органов, в частности печени и сердца, к неблагоприятным экзогенным и эндогенным воздействиям.

3.2.11 Бактерицидная активность лейкоцитов цыплят-бройлеров

Уровень естественной резистентности организма имеет большое значение в процессах адаптации птицы к условиям окружающей среды. Центральным звеном врожденного клеточного иммунитета являются фагоцитирующие лейкоциты, основная функция которых в организме – антимикробная защита, они играют также роль медиаторов воспаления, обладают цитотоксическим, противоопухолевым действием [116,117].

Оценка бактерицидной активности лейкоцитов цыплят-бройлеров оценивалась по интенсивности протекания фагоцитоза. Фагоцитоз – процесс узнавания, активного захвата и поглощения (переваривания) микроорганизмов, разрушенных клеток и инородных частиц специализированными клетками иммунной системы. Этот анализ позволяет оценить резерв моноцитов и псевдоэозинофилов к перевариванию чужеродных агентов.

Моноциты — большие белые кровяные клетки, которые превращаются в макрофаги в тканях. Макрофаги — мобильные клетки — широко представлены в организме птиц. При активации они могут повысить их фагоцитарную активность и миграцию в место нахождения инфекции. Антиген, преодолевший механические барьеры организма и попавший в кровоток, вначале встречается с макрофагами и либо соединяется с рецепторами на поверхности макрофага, либо захватывается макрофагом путем пиноцитоза, подвергается внутриклеточному ферментативному расщеплению, в результате чего в кровоток поступают подготовленные антигенные детерминанты — непосредственные антигенные раздражители для лимфоцитов, имеющих на своей поверхности комплементарные рецепторы. Только после этого лимфоцит может трансформироваться либо в плазматическую клетку, продуцирующую антитела, либо в клетку памяти, способную впоследствии при повторном контакте с этим агентом «узнать» его, либо в активизированный лимфоцит, участвующий в клеточном иммунном ответе, например, стать лимфоцитом — киллером, участвующим в отторжении злокачественных клеток собственного организма, или превратиться в толерантную клетку, не способную впоследствии ответить на этот антиген [118].

Основными клетками крови, защищающими организм от инфекционно-токсических воздействий, у птиц являются псевдоэозинофилы, которые активно участвуют в процессе фагоцитоза и способны переваривать микробов внутри клетки благодаря наличию ряда ферментов типа протеиназ. Кроме протеолитических, они содержат и другие ферменты, оказывающие бактерицидное действие. Псевдоэозинофилы не синтезируют антитела, но, адсорбируя молекулы иммунных глобулинов на своей поверхности, могут доставлять их к очагу воспаления. Эта популяция клеток обладает амебовидной подвижностью, что способствует выполнению фагоцитарной функции. Псевдоэозинофилы обладают большой жизнеспособностью в очаге воспаления при недостатке кислорода. Их высокая активность объясняется большими запасами гликогена, который используется для ресинтеза АТФ при анаэробном гликолизе, таким образом восполняется затраченная при фагоцитозе и движении энергия. Большой резерв псевдоэозинофилов находится в костном мозге, в случае необходимости (при инфекции) они быстро поступают в кровяное русло [119].

Результаты исследования на бактерицидную активность лейкоцитов отображаются как процент активных фагоцитов к их общему количеству. Выявление активных моноцитов и псевдоэозинофилов производится с помощью бактерий с флуоресцентными метками. Биоматериалом для исследования является цельная кровь с гепарином.

Результаты наших исследований показали (табл.18), что бактерицидная активность лейкоцитов у цыплят 1 и 3 опытной группы была достоверно выше, чем у контрольных аналогов на 11,08 и 14,38 (Р≤0,05), во 2 опытной группе этот показатель был ниже, чем в контроле на 7,48%.

Таблица 18 — Бактерицидная активность лейкоцитов цыплят-бройлеров в возрасте 29 дней, (M±m; n=5)

Таким образом, установленные изменения фагоцитарной активности лейкоцитов демонстрируют стимулирующее влияние применяемых препаратов ГербаСтор и Активо на неспецифическую резистентность организма цыплят-бройлеров, свидетельствуя о более высокой иммунологической реактивности.

3.2.12 Состояние микрофлоры толстого отдела кишечника цыплят-бройлеров

Органы и системы организма постоянно сообщаются с внешней средой, являясь открытыми биологическими системами, колонизированными микроорганизмами. Сообщество популяций микроорганизмов, обитающих в определенном биотопе, характеризуется относительным постоянством, которое поддерживается механизмами аутостабилизации [120,121].

Анализ состояния микрофлоры толстого отдела кишечника цыплят-проводили в возрасте 29 дней (табл. 19).

Проведенное исследование микрофлоры толстого отдела кишечника бройлеров, в частности, слепых отростков, показало, что анализируемые патогенные микроорганизмы (шигеллы, сальмонеллы, кампилобактеры, диарогенные эшерихии, иерсинии, вacillus cereus, аэромонас, плезиомонас) отсутствовали.

Из потенциально-патогенной флоры не были обнаружены: энтеробактерии клебсиелла, энтеробактер, серрация, неферментирующие грамотрицательные палочки — синегнойная палочка, ацинетобактер, грамположительные кокки – золотистый стафилококк, грибковая флора Candida sp.

Таблица 19 – Результаты анализа микрофлоры толстого отдела кишечника цыплят-бройлеров в возрасте 29 дней, n=5

Примечание: не обнаружены – н/о

Во всех подопытных группах установлено наличие протей (Proteus spp) — Proteus mirabilis, в количестве 10⁸ КОЕ/мл. Staphylococcus Saprophyticus имели место быть во всех группах, при этом в контрольной группе они были отмечены во всех 5-ти образцах, а в опытных группах – в 3-х из 5-ти. Среди прочей потенциально-патогенной флоры у птиц контрольной и опытных групп был обнаружен Trichosporon asahii: в контрольной и 1 опытной группе – в 4-х анализируемых образцах из 5-ти; во 2 опытной группе – в 4-х образцах из 5-ти, но с менее выраженным количеством КОЕ/мл, по сравнению с контрольной и 1 опытной группами; в 3 опытной группе данный представитель потенциально-патогенной флоры кишечника был определен только в 2-х образцах из 5-ти, при этом его количество не превышало норматив.

Что касается представителей нормальной флоры, которым принадлежит важная роль в регуляции и поддержании рН, водно-солевого обмена и анаэробиоза в кишечнике, деконьюгации желчных кислот, синтезе витаминов, аминов и других биологически активных соединений, то в контрольной и опытных группах содержание бифидобактерий было в норме и находилось на уровне 10¹⁰ КОЕ/мл. Содержание лактобактерий в контрольной и 1 опытных группах составляло 10⁸ КОЕ/мл; во 2 опытной группе – в 4-х образцах — 10⁸ КОЕ/мл, в 1-м образце — 10⁴ КОЕ/мл; в 3 опытной группе — в 3-х образцах 10⁸ и в 2 образцах — 10⁴ КОЕ/мл.

Количество кишечной палочки (номофлор) во всех группах не превышало норматива и было на уровне 10⁸ КОЕ/мл.

Ни в одной из подопытных групп не были обнаружены E.coli лактозонегативные (Escherichia coli inactivae) и E.coli гемолитические (Escherichia coli haemolytic).

Энтерококки не были обнаружены в контрольной и 2 опытной группах цыплят-бройлеров. В 1 опытной группе эти представители нормальной флоры присутствовали в 3-х исследуемых образцах в количестве 10⁸ КОЕ/мл и 2-х образцах не обнаружены. В 3 опытной группе наличие энтерококков отмечено в 1 образце и в 4-х образцах не обнаружено.

Патогенные бактерии (кампилобактер) — Campylobacter jejuni и Campylobacter coli не были обнаружены ни в одном образце во всех подопытных группах.

Одновременно с исследованием микробиоценоза слепых отростков цыплят-бройлеров была проведена антибиотикограмма – лабораторное исследование, позволяющее определить чувствительность микрофлоры к антибактериальным препаратам. Данное исследование показало (табл. 20), что Escherichia coli во всех подопытных группах оказалась чувствительна к цефтриаксону и цефотаксиму. Установлена устойчивость Staphylococcus saprophyticus к цефокситину в контрольной, в 1 и 2 опытных группах. Proteus mirabilis был устойчив к цефтриаксону и цефотаксиму во всех экспериментальных группах. Enterococcus faecium оказался устойчивым к ванкомицину в 1 и 3 опытных группах. Escherichia coli inactivae была чувствительна к цефтриаксону и цефотаксиму в 1 опытной группе.

Таблица 20 — Чувствительность микрофлоры кишечника цыплят-бройлеров к антибиотикам (антибиотикограмма)

Staphylococcus xylosus проявил чувствительность к цефокситину в образцах толстого отдела кишечника цыплят 2 и 3 опытных групп, а Staphylococcus lentus оказался чувствительным к цефокситину у представителей 3 опытной группы.

Таким образом, проведенное исследование микрофлоры слепых отростков кишечника цыплят-бройлеров свидетельствовало об отсутствии во всех образцах экспериментальных групп патогенных микроорганизмов и бактерий. Из потенциально-патогенной флоры установлено: наличие во всех группах одинакового количества протей (Proteus spp) — Proteus mirabilis; присутствие Staphylococcus Saprophyticus — при меньшем их количестве в образцах опытных групп; наличие Trichosporon asahii — с минимальным проявлением в образцах 3 опытной группы. В отношении нормальной флоры слепых отростков можно констатировать, что включение комплексных добавок на основе синбиотиков и фитобиотиков и фитобиотической добавки не повлияло на количественное содержание бифидобактерий и кишечной палочки (номофлор), при этом сопровождалось незначительным снижением количества лактобактерий в единичных образцах при включении ПроСтора и Активо, а также выраженным наличием энтерококков при использовании ГербаСтора на фоне их отсутствия в образцах контрольной и 2 опытной группы и единичным присутствием в 3 опытной группе.

3.2.13 Морфогистологическое состояние внутренних органов цыплят-бройлеров

В ходе гистологического исследования изучали препараты печени, поджелудочной железы, двенадцатиперстной кишки, слепой кишки, селезенки, тимуса и фабрициевой бурсы от цыплят-бройлеров 37 дневного возраста.

ПЕЧЕНЬ

Контрольная группа. Структура органа была не нарушена, отмечено значительное количество очагов полиморфноклеточного инфильтрата (рис.2). В гепатоцитах наблюдалась зернистая дистрофия, глиссонова капсула была без изменений (рис.3). В кровеносных сосудах разного калибра отмечено формирование тромбов (рис.4). В системе триады как признак воспалительной реакции наблюдались диффузные полиморфноклеточные инфильтраты (рис. 5).

Рисунок 2 – Срез печени цыплят контрольной группы. Ув. 400

Примечание: здесь и далее Ув. – увеличение микроскопа

Рисунок 3 – Срез печени цыплят контрольной группы. Ув. 630

Рисунок 4 – Срез печени цыплят контрольной группы. Ув. 200

Рисунок 5 – Срез печени цыплят контрольной группы. Ув.400

1 опытная группа. В печени цыплят 1 опытной группы наблюдали утолщение тромбов в сосудистом русле и стенки сосудов (рис.6). Установлены значительные очаги некрозов, охватывающие целые дольки (рис.7). Некрозы также выявлены в стенке протоков с перидуктальной воспалительной инфильтрацией (рис.8). В гепатоцитах наблюдалась зернисто-жировая дистрофия (рис.9).

Рисунок 6 – Срез печени цыплят 1 опытной группы. Ув. 200

Рисунок 7 – Срез печени цыплят 1 опытной группы. Ув. 200

Рисунок 8 – Срез печени цыплят 1 опытной группы. Ув. 200

Рисунок 9 – Срез печени цыплят 1 опытной группы. Ув. 400

2 опытная группа. В органе наблюдали незначительную зернистую дистрофию гепатоцитов и некоторое разрыхление паренхимы (рис.10,11).

Рисунок 10 – Срез печени цыплят 2 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 11 – Срез печени цыплят 2 опытной группы. Ув. 400

3 опытная группа. Отмечены полиморфноклеточные инфильтраты как в зоне островков межуточной соединительной ткани, так и между островками, а также значительное количество ограниченных лимфоидноклеточных инфильтратов и очаги вакуольной дистрофии гепатоцитов (рис. 12,13,14).

Рисунок 12 – Срез печени цыплят 3 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 13 – Срез печени цыплят 3 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 14 – Срез печени цыплят 3 опытной группы. Ув. 400

Поджелудочная железа

Контрольная группа. Содержимое протоков поджелудочной железы было уплотненное, в межуточной соединительной ткани отмечены воспалительные инфильтраты, наблюдается слущивание эпителия протоков в просвет, островки Лангерганса единичные многоотросчатые (рис.15,16,17, 18).

Рисунок 15 – Срез поджелудочной железы цыплят

контрольной группы. Ув. 400

Рисунок 16 – Срез поджелудочной железы цыплят

контрольной группы. Ув. 400

Рисунок 17 – Срез поджелудочной железы цыплят

контрольной группы. Ув. 400

Рисунок 18 – Срез поджелудочной железы цыплят

контрольной группы. Ув. 400

1 опытная группа. В протоках поджелудочной железы наблюдается неоднородный по консистенции секрет, отмечено слущивание эпителия в просвет протока (рис. 19).

Рисунок 19 – Срез поджелудочной железы цыплят

1 опытной группы. Ув. 400

В кровеносных сосудах наблюдается формирование тромбов (рис.20), периваскулярно и в паренхиме железы располагаются рассеянные и локальные лимфоидноклеточные инфильтраты (рис. 21).

Рисунок 20 – Срез поджелудочной железы цыплят

1 опытной группы. Ув. 200

Рисунок 21 – Срез поджелудочной железы цыплят

1 опытной группы. Ув. 400

2 опытная группа. В паренхиме поджелудочной железы отмечены четко очерченные островки Лангерганса на фоне высокой функциональной активности органа (рис.22,23). Патологических процессов не выявлено.

Рисунок 22 – Срез поджелудочной железы цыплят

2 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 23 – Срез поджелудочной железы

цыплят 2 опытной группы. Ув. 400

3 опытная группа. Островки Лангерганса хорошо очерчены, отмечена выраженная секреторная активность железы (рис.24), имеют место полиморфноклеточные воспалительные инфильтраты с гиперемией сосудов венозного русла (рис. 25).

Рисунок 24 – Срез поджелудочной железы цыплят

3 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 25 – Срез поджелудочной железы цыплят

3 опытной группы. Ув. 400

Тонкий кишечник (12-перстная кишка)

Контрольная группа. В 12-перстной кишке наблюдается воспалительная реакция ворсинок (рис.26), гиперсекреция крипт и гиперемия сосудов мышечной оболочки (рис.27,28).

Рисунок 26 – Срез 12-перстной кишки цыплят контрольной группы. Ув. 200

Рисунок 27 – Срез 12-перстной кишки цыплят контрольной группы. Ув. 400

Рисунок 28 – Срез 12-перстной кишки цыплят контрольной группы. Ув. 400

1 опытная группа. В 12-перстной кишке соотношение длины ворсинок к длине крипт составляло около 7:1. Ворсинки пальцевидной формы, утолщены. Наблюдается воспалительная инфильтрация стромы ворсинок с реактивными изменениями цилиндрического эпителия с многочисленными межэпителиальными лимфоцитами. На отдельных участках цилиндрический эпителий десквамирован в просвет, отмечена очагово выраженная деструкция ворсин (рис.29).

Рисунок 29 – Срез 12-перстной кишки цыплят 1 опытной группы. Ув. 200

Клеточный инфильтрат стромы ворсин 12-перстной кишки представлен мелкими округлыми клетками с четко оформленным базофильным ядром и узким ободком базофильной, реже эозинофильной цитоплазмы. Среди желез слизистой наблюдается диффузно-очаговая инфильтрация аналогичными клетками (рис.30).

Рисунок 30 – Срез 12-перстной кишки цыплят 1 опытной группы. Ув. 400

Гладкие миоциты стенки кишки были с дистрофическими изменениями (неравномерное просветление цитоплазмы, пылевидные эозинофильные включения в цитоплазме). Наиболее выражен циркулярный слой (рис.31, 32).

Рисунок 31 – Срез 12-перстной кишки цыплят 1 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 32 – Срез 12-перстной кишки цыплят 1 опытной группы. Ув. 100

2 опытная группа. В 12-перстной кишке выявлены процессы утолщения мышечной оболочки, утолщение ворсинок и их инфильтрация, в некоторых участках отмечено разрушение эпителия ворсинок и нарушение их структуры (рис. 33,34,35,36).

Рисунок 33 – Срез 12-перстной кишки цыплят 2 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 34 – Срез 12-перстной кишки цыплят 2 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 35 — Срез12-перстной кишки цыплят 2 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 36 – Срез 12-перстной кишки цыплят 2 опытной группы. Ув. 400

3 опытная группа. На поверхности эпителия 12-перстной кишки, в просвете и между ворсинками наблюдается накопление катарального экссудата, отмечено утолщение мышечной оболочки и кровоизлияния (рис.37,38,39).

Рисунок 37 – Срез 12-перстной кишки цыплят 3 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 38 – Срез 12-перстной кишки цыплят 3 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 39 – Срез 12-перстной кишки цыплят 3 опытной группы. Ув. 400

Толстый кишечник (Слепая кишка — слепые отростки)

Контрольная группа. В слизистой оболочке слепых отростков толстого отдела кишечника наблюдались воспалительные инфильтраты (рис.40). На протяжении всего исследуемого образца демонстрировалась активная воспалительная инфильтрация (рис.41), серозная оболочка была утолщена (рис.42).

Рисунок 40 – Срез слепой кишки цыплят контрольной группы. Ув. 400

Рисунок 41 – Срез слепой кишки цыплят контрольной группы. Ув. 400

Рисунок 42 – Срез слепой кишки цыплят контрольной группы. Ув. 400

1 опытная группа. В слепой кишке цыплят 1 опытной группы наблюдали ярко выраженную воспалительную реакцию, в просвете был экссудат с наличием крови, отмечена гиперсекреция эпителия крипт рис.43,44).

Рисунок 43 – Срез слепой кишки цыплят 1 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 44 – Срез слепой кишки цыплят 1 опытной группы. Ув. 400

2 опытная группа. Наблюдалась умеренная воспалительная реакция (рис.45). Значительное количество лимфоидных фолликулов было в состоянии активизации – признак активного местного иммунитета (рис.46).

Рисунок 45 – Срез слепой кишки цыплят 2 опытной группы. Ув. 200

Рисунок 46 – Срез слепой кишки цыплят 2 опытной группы. Ув. 200

3 опытная группа. В слепых отростках цыплят отмечали умеренную воспалительную реакцию и наличие активизированных лимфоидных фолликулов (рис.47).

Рисунок 47 – Срез слепой кишки цыплят 3 опытной группы. Ув. 200

СЕЛЕЗЕНКА

Контрольная группа. В селезенке цыплят контрольной группы отмечена активная реакция лимфоидных фолликулов, орган значительно кровенаполнен (рис.48). Элементы стенки кровеносных сосудов трабекул в состоянии активной пролиферации (рис. 49). В некоторых участках имеют место очаги кровоизлияний (рис.50), капсула утолщена и отечна (рис.51).

Рисунок 48 – Срез селезенки цыплят контрольной группы. Ув. 200

Рисунок 49 – Срез селезенки цыплят контрольной группы. Ув. 400

Рисунок 50 – Срез селезенки цыплят контрольной группы. Ув. 400

Рисунок 51 – Срез селезенки цыплят контрольной группы. Ув. 400

1 опытная группа. Наряду с центрами размножения, в селезенке цыплят 1 опытной группы встречаются четко ограниченные лимфоидные фолликулы (рис.52).

Рисунок 52 – Срез селезенки цыплят 1 опытной группы. Ув. 200

В просвете сосудов, наряду с эритроцитами, встречаются лейкоциты и макрофаги, как признак воспалительной реакции (рис.53), незначительное количество лимфоидных фолликулов (рис.54). Капсула органа была слегка утолщена (рис. 55).

Рисунок 53 – Срез селезенки цыплят 1 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 54 – Срез селезенки цыплят 1 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 55 – Срез селезенки цыплят 1 опытной группы. Ув. 400

2 опытная группа. В перитрабекулярном пространстве селезенки отмечены пятнистые кровоизлияния (рис.56), четко выражены центры размножения лимфоцитов и зрелые лимфоидные фолликулы (рис.57).

Рисунок 56 – Срез селезенки цыплят 2 опытной группы. Ув. 200

Рисунок 57 – Срез селезенки цыплят 2 опытной группы. Ув. 200

Капсула органа плотная не утолщена (рис.58), фолликулы и пульпа гиперплазированы (рис.58,59).

Рисунок 58 – Срез селезенки цыплят 2 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 59 – Срез селезенки цыплят 2 опытной группы. Ув. 400

3 опытная группа. В органе отмечено активное разрастание соединительной ткани в трабекулах и пролиферация элементов стенки сосудов в ней (рис.60, увеличение 200).

Рисунок 60 – Срез селезенки цыплят 3 опытной группы. Ув. 200

Капсула слегка утолщена отмечено расширение подкапсулярных синусов (рис.61). В пульпе отмечено появление значительного количества соединительнотканных элементов (рис.62). Наряду с этим выявлено разрыхление и оголение ретикулярной стромы органа (рис.63).

Рисунок 61 – Срез селезенки цыплят 3 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 62 – Срез селезенки цыплят 3 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 63 – Срез селезенки цыплят 3 опытной группы. Ув. 400

ТИМУС

Контрольная группа. В тимусе цыплят контрольной группы наблюдалась: гиперемия сосудов и жировые включения, зрелые тельца Гассаля, резкое расширение лимфатических сосудов (рис.64,65,66,67).

Рисунок 64 – Срез тимуса цыплят контрольной группы. Ув. 400

Рисунок 65 – Срез тимуса цыплят контрольной группы. Ув. 400

Рисунок 66 – Срез тимуса цыплят контрольной группы. Ув. 400

Рисунок 67 – Срез тимуса цыплят контрольной группы. Ув. 400

1 опытная группа. В органе отмечены массовые кровоизлияния и гиперемия сосудов всех калибров в той или иной степени выраженности во всех представленных образцах (рис.68,69).

Рисунок 68 – Срез тимуса цыплят 1 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 69 – Срез тимуса цыплят 1 опытной группы. Ув. 400

2 опытная группа. Дольки тимуса четко ограничены, в них видно разграничение на корковую и мозговую зоны, наблюдаются как сформированные, так и молодые тельца Гассаля, свидетельствующие о выраженном Т-клеточном иммунитете (рис.70,71).

Рисунок 70 – Срез тимуса цыплят 2 опытной группы. Ув. 400

Рисунок 71 – Срез тимуса цыплят 2 опытной группы. Ув. 400

3 опытная группа. В тимусе цыплят 3 опытной группы наблюдалось разрыхление мозгового вещества, но дольки органа хорошо очерчены (рис.72,73) и представлены тимические тельца Гассаля (рис.74), увеличение 630).

Рисунок 72 — Срез тимуса цыплят 3 опытной группы. Ув. 72

Рисунок 73 – Срез тимуса цыплят 3 опытной группы

Рисунок 69 — Тимус цыплят 3 опытной группы

ФАБРИЦИЕВА БУРСА

Контрольная группа. Структура органа сохранена фолликулы четко очерчены с выраженной зональностью слоев, эпителий равномерно покрывает слизистую полости бурсы (рис. 70, увеличение 100). В некоторых участках эпителия видны кисты, как признак инволютивного процесса (рис.71, увеличение 400). В некоторых участках в эпителии отмечена слизистая дистрофия (рис.72, увеличение 400).

Рисунок 70 — Фабрициева бурса цыплят контрольной группы

Рисунок 71 — Фабрициева бурса цыплят контрольной группы

Рисунок 72 — Фабрициева бурса цыплят контрольной группы

1 опытная группа. Структура органа сохранена, но слои в фолликулах слабо разграничены (рис.73, увеличение 100). В эпителии содержится значительное количество кист, а в подэпителиальной выстилке воспалительные инфильтраты (рис.74, увеличение 400). Наружная оболочка (капсула) утолщена и огрубевшая (рис.75, увеличение100).

Рисунок 73 — Фабрициева бурса цыплят 1 опытной группы

Рисунок 74 — Фабрициева бурса цыплят 1 опытной группы

Рисунок 75 — Фабрициева бурса цыплят 1 опытной группы

2 опытная группа. В органе отмечены четко очерченные фолликулы с разделением на корковую и мозговую зоны (рис.76, увеличение 100), в некоторых фолликулах выражена активизация процесса иммуногенеза (рис.77, увеличение 400).

Рисунок 76 — Фабрициева бурса цыплят 2 опытной группы

Рисунок 77 — Фабрициева бурса цыплят 2 опытной группы

3 опытная группа. Отмечено разрыхление и утолщение капсулы и наличие воспалительного инфильтрата под ней (рис.78, увеличение 200), в эпителии бурсы наблюдается воспалительный процесс с десквамацией эпителия в просвет бурсы (рис.79, увеличение 400).

Рисунок 78 — Фабрициева бурса цыплят 3 опытной группы

Рисунок 79 — Фабрициева бурса цыплят 3 опытной группы

Таким образом, анализ процессов, зарегистрированных на препаратах гистологических срезов печени, поджелудочной железы, двенадцатиперстной кишки, слепой кишки, селезенки, тимуса и фабрициевой бурсы от 37 дневных цыплят-бройлеров контрольной и трех опытных групп показал благополучие подопытного поголовья по инфекционным и паразитарным заболеваниям, высокие показатели по клеточному и гуморальному иммунитету.

Что касается обменных процессов, то наилучшие показатели были зарегистрированы во 2 опытной группе птиц, близкие к ним были показатели в 3 опытной группе. В 1 опытной группе наблюдались некоторые патологические процессы в печени в виде некроза и полиморфноклеточной инфильтрации, как очаговой, так и диффузной, на фоне зернистой дистрофии, характерной для гепатоза и гепатита, те же процессы отмечены и в контрольной группе цыплят-бройлеров. Секреторная активность поджелудочной железы была наиболее выраженной у представителей 2 опытной группы. Во всех группах птицы выявлены катаральные воспалительные процессы в кишечнике на стадии серозного и слизистого катара не переходящие в гнойный катар с сохранением функции пристеночного пищеварения.

Лимфоидные органы В-системы иммунитета птиц – селезенка, лимфоидные фолликулы кишечника, фабрициева бурса, и Т-системы иммунитета — тимус, к 37 дню выращивания, то есть к концу технологического периода, претерпели некоторые инволютивные процессы, но находились на высоком функциональном уровне, при этом наилучшие результаты показали представители 2 опытной группы.

3.2.12 Экономическая эффективность использования экспериментальных добавок на цыплятах-бройлерах

В таблице 21 представлены результаты экономической эффективности выращивания цыплят-бройлеров по данным научно-хозяйственного опыта в расчёте на 1000 голов начального поголовья.

Установлено, что в связи с увеличением валового прироста живой массы бройлеров в 1, 2 и 3 опытных группах при использовании экспериментальных кормовых добавок, стоимость прироста живой массы птиц возросла, по сравнению с контролем соответственно на 4,97; 4,42 и 10,56 тыс. рублей. Общие затраты в 1, 2 и 3 опытных группах с учетом затраченных денежных средств на покупку экспериментальных препаратов, были выше, чем в контроле, соответственно на 0,37; 0,37 и 1,03%. С учетом всех затрат полученный чистый доход в 1, 2 и 3 опытных группах был выше, чем в контроле на 5,9; 5,1 и 11,8%, соответственно. Дополнительный доход на 1 посаженную голову в 1 опытной группе составил 4,33 рубля; во 2 опытной группе – 3,78 рублей; в 3 опытной группе данный показатель был самым высоким и составил – 8,77 рублей.

Таблица 21 — Экономическая эффективность выращивания бройлеров в расчёте на 1000 голов начального поголовья (научно-хозяйственный опыт)

Рентабельность производства мяса бройлеров в 1 и 2 опытных группах, при использовании кормовых добавок ГербаСтор и ПроСтор, превысила контрольный уровень на 2,3 и 2,0 %. Наибольшее превосходство по этому показателю над контрольным значением — на 4,5%, было получено в 3 опытной группе, получавшей дополнительно к основному рациону кормовой препарат Активо.

4 ЭФФЕКТИВНОСТЬ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ В РАЦИОНЕ ЯИЧНОЙ ПТИЦЫ ФИТОБИОТИЧЕСКИХ КОРМОВЫХ ДОБАВОК

4.1 МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Экспериментальная часть работы выполнялась в условиях птичника ПАО «Птицефабрика «Боровская» в 2020 году на молодняке и курах-несушках кросса «Хай-Лайн Браун» при их клеточном содержании с 14-недельного до 28-недельного возраста.

Технологические параметры содержания и кормления контрольной и опытной птицы соответствовали рекомендациям, принятым в ПАО «Птицефабрика «Боровская» для данного кросса.

Согласно схеме научно-хозяйственного опыта (табл. 22) в 14-недельном возрасте были сформированы 2 группы ремонтного молодняка со средней живой массой в контрольной группе 1262,01±6,94 г, в опытной — 1263,20±6,64 г. Формирование групп для научно-хозяйственного и физиологического опытов, а также научные основы исследования осуществлялись в соответствии с рекомендуемыми методиками ФНЦ «ВНИТИП» РАН (2013). При выращивании и содержании птицы использовали фазное кормление – с 14-ой по 24-ю недели и с 25-ой недели до конца опыта.

Таблица 22 — Схема проведения научно-хозяйственного опыта

Контрольная группа получала основной рацион (ОР), сбалансированный по всем питательным веществам согласно рекомендациям для кросса. Куры опытной группы дополнительно к ОР получали фитобиотическую капсулированную добавку Активо в количестве 100 г/т комбикорма с 16-ой по 21-ю неделю выращивания, в течение 42 дней и жидкую фитобиотическую добавку Активо Ликвид в количестве 500 мл/1000 л воды с 21-го недельного возраста, в течение 5 дней и с 24-х недельного возраста, в течение 5 дней.

В ходе эксперимента учитывались следующие зоотехнические показатели:

• 1. Живая масса (г) – путем индивидуального взвешивания 203 кур еженедельно до 28 недель.
  2. Однородность по живой массе (%) – еженедельно до 28 недель жизни. Целевая однородность массы тела в стаде 80%, диапазон плюс/минус 10% от среднего значения.
  3. Сохранность поголовья (%) – путем ежедневного учета падежа с выяснением его причин и расчета в процентах от начального поголовья.
  4. Конверсия корма (кг) – затраты корма на 10 штук яиц путем деления количества израсходованного комбикорма за весь период опыта на количество полученной продукции.
  5. Яичная продуктивность за период опыта – путем ежедневного подсчета количества снесенных яиц, определения возраста снесения 1-го яйца и пика продуктивности.
  6. Интенсивность яйцекладки (%) – путем определения отношения количества яиц, снесенных за определенный период, к числу кормодней того же периода, выраженного в процентах.
  7. Масса яиц (г) – путем индивидуального взвешивания на электронных весах с точностью до 0,01 г за 5 смежных дней каждого продуктивного месяца по 30 штук яиц.
  8. Морфологические и биохимические показатели 30 яиц из каждой группы каждый продуктивный месяц.

В течение опыта проводились следующие исследования.

1. Оценка развития внутренних органов кур в ходе проведения анатомической разделки тушек птицы согласно методике ФНЦ «ВНИТИП» РАН (2013). Для этого в 24-х недельном возрасте было отобрано по 5 средних по живой массе кур из каждой группы. Убой проводился методом декапитации.

2. Определение переваримости питательных веществ, баланса азота, кальция и фосфора, на основании проведения балансового (физиологического) опыта. Для этого в возрасте 24-х недель из каждой группы были отобраны по 3 средних по живой массе курицы. Опыт проводился в соответствии с рекомендуемыми методиками ФНЦ «ВНИТИП» РАН (2013). Отобранный помёт и комбикорм гомогенизировался и анализировался в аналитической лаборатории «Уральский НИИСХ» — филиале ФГБНУ УрФАНИЦУрОРАН.

Анализ корма и помета проводили по общепринятым методикам:

— содержание общего азота – по методу Кьельдаля (или Дьякову), ГОСТ Р.51417-99 (%);

— содержание массовой доли сырого жира – методом экстракции, ГОСТ13496.15-97 (%);

— содержание массовой доли сырой клетчатки – удалением из продукта кислото-щелоче-растворимых веществ и определением сырой клетчатки, ГОСТ 13496.2-97(%);

— содержание сырой золы – гравиметрическим методом, ГОСТ 26226-95 (%);

— содержание кальция – атомно-абсорбционным методом, ГОСТ 26570-95 (%);

— содержание фосфора – фотометрическим методом, ГОСТ 26657-97 (%).

3. Анализ химического состава большеберцовых костей на содержание кальция, фосфора, сырой золы. Материал был взят от 5 птиц из каждой группы в возрасте 24-х недель.

4. Анализ морфологических показателей крови . Для этого в 24- недельном возрасте у 5 средних по группе кур, путем декапитации отбиралась кровь. При взятии кровь стабилизировали антикоагулянтом гепарином. В цельной крови определяли: содержание эритроцитов, средний объём эритроцита, ширину распределения эритроцитов, гематокрит, количество гемоглобина, среднее содержание гемоглобина в эритроците, содержание лейкоцитов (с визуальным подсчетом лейкоцитарной формулы: процентное содержание лимфоцитов, моноцитов, эозинофилов, псевдоэозинофилов, базофилов), количество тромбоцитов, СОЭ.

5. Анализ биохимического состава сыворотки крови кур в возрасте 24-х недель. Исследование включало определение: общего белка, альбуминов, мочевины, креатинина, мочевой кислоты, глюкозы, холестерина, триглицеридов, аланинаминотрансферазы (АЛАТ), аспартатамино-трансферазы (АСАТ), общего кальция, ионизированного кальция, неорганического фосфора, калия, натрия, хлора.

Исследование крови проводилось в лаборатории Университетской клиники ФГБОУ ВО Тюменского ГМУ Минздрава России. Морфологический анализ крови выполнялся на гематологическом анализаторе ВС-5800 MINDRAY (Китай), подсчет лейкоцитарной формулы осуществлялся с использованием микроскопа МС300 MICROS (Австралия). Биохимический анализ крови выполнялся на биохимическом анализаторе BS-380 MINDRAY (Китай) и ионселективном анализаторе ТОПАЗ (Россия).

6. Исследование микробиоценоза кишечника (дисбактериоз, с определением чувствительности к антибиотикам). Для этого в возрасте 24–х недель из каждой группы от 5 средних по живой массе кур отбиралось содержимое толстого отдела кишечника (слепых отростков) в специальные пробирки и отправлялось в микробиологическую лабораторию.

7. Для проведения морфогистологических исследований были взяты образцы органов (печень, поджелудочная железа, двенадцатиперстная кишка, селезенка, тимус, фабрициева бурса) от 3 голов птиц из каждой группы в возрасте 24-х недель. Материал фиксировался в 10-% растворе нейтрального формалина. Изучение общих структурных изменений в органах проводилось на парафиновых срезах, препараты окрашивали гематоксилином и эозином по общепринятой методике. Все гистологические исследования документировались фотографированием на микроскопе.

На основании результатов научно-хозяйственного опыта рассчитывалась экономическая эффективность использования изучаемых кормовых добавок с учетом цен на период проведения исследований.

Основные экспериментальные данные обработаны методом вариационной статистики с использованием ПК «Microsoft Excel». Оценку статистической значимости различий между группами проводили с помощью t-критерия Стьюдента.

4.2 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

4.2.1 Зоотехнические показатели роста и развития яичных кур

Активный рост и развитие кур продолжается до 32-36 недель жизни. По физиологическим нормам, вступая в продуктивную фазу, птица должна набирать живую массу, соответствующую возрасту. Данный показатель оказывает большое влияние на массу и качество снесенных яиц.

Анализ динамики живой массы и однородности птицы кросса «Хай-Лайн Браун», представленный в таблице 23, показал, что, начиная с 19-недельного возраста — период разноса, живая масса опытных кур была ниже контрольных, при этом обе группы имели нормативную массу до 23-недельного возраста. В 24 недели жизни живая масса контрольных особей превышала норматив на 0,32%, а у опытных аналогов — уступала нормативному значению на 0,16%. С 25-недельного возраста и до конца анализируемого опытного периода (28 недель) куры-несушки контрольной и опытной групп не выполняли норматив по живой массе. Отставание опытных особей по данному показателю от контрольных аналогов с 25-й по 27-ю неделю находилось в пределах 0,06-0,28 %. При этом динамика набора живой массы до 27-недельного возраста была в обеих группах положительной. В 28 недель живая масса опытной птицы была ниже контроля на 1,78 % (Р≤0,01), что вероятно связано с более ранним и интенсивным выходом кур на пик продуктивности.

Однородность птицы обеих групп была выше норматива (80 %) на протяжении всего периода опыта. Снижение данного показателя в опытной группе в сравнении с нормативом отмечено на 18-й и 19-й неделе жизни, соответственно на 8,57 и 1,18 %, а в контрольной группе на 19-й неделе жизни – на 0,2%. Это можно объяснить тем, что в данный период содержания птица начинает быстро развивать яйцекладку и соответственно больше энергии тратит на продуктивность, в связи с чем повышается изменчивость по живой массе.

Таблица 23 — Динамика живой массы и однородности кур, М±m (n=203)

Примечание: степень достоверности *Р≤0,05; ** Р≤0,01; *** Р≤0,001 здесь и далее по сравнению с контролем

Таким образом, включение исследуемых фитобиотических кормовых добавок в рацион кур-несушек не оказало отрицательного влияния на живую массу и однородность птицы.

4.2.2 Сохранность поголовья

Несбалансированное кормление и неблагоприятные условия содержания являются причинами возникновения заболеваний органов пищеварения, яйцеобразования и других болезней незаразной этиологии. Сохранность и причины падежа птицы представлены в таблице 24. Введение изучаемых добавок в технологию содержания птицы характеризовалось более высокой сохранностью поголовья. Так, данный показатель превосходил контроль за опытный период — 14-28 недель жизни, на 0,26 %. При этом в период доращивания кур (14-20 недель) сохранность опытных птиц была выше на 0,08 %, а в продуктивный возраст (21-28 недель) – на 0,18 %.

Следует отметить, что в причинах падежа у кур опытной группы отсутствовали болезни органов желудочно-кишечного тракта (энтерит, отравления, воспаление сумки мускульного желудка¸ язвы желудка и пр.) и органов дыхания; меньший падеж зафиксирован по причинам: гепатит, истощение и перитонит, соответственно на 0,09; 0,06 и 0,03 %. Падежа по болезни органов яйцеобразования в группе кур, получавших фитобиотики, было меньше на 0,01%.

Таблица 24 – Сохранность и причины падежа кур, %

Таким образом, результаты анализа сохранности поголовья и причин падежа птиц свидетельствуют, что исследуемые добавки способствуют повышению иммунного статуса и сопротивляемости организма к неблагоприятным факторам.

4.2.3 Развитие внутренних органов

Уровень физиологической скороспелости кур-несушек во время разноса яйцекладки оценивали по развитию внутренних органов и гребней в возрасте 24-х недель (табл.25). Для этого из каждой группы были отобраны по 5 голов птиц со средней живой массой.

Установлено, что у кур опытной группы масса печени была достоверно выше контроля на 12,53 % (Р≤0,05), масса мышечного желудка была меньше контрольного уровня на 4,08 %, а масса железистого желудка превышала контроль на 0,8%. Куры-несушки в опытной группе отличались большей массой пищевода и кишечника по сравнению с контрольной на 19,80 % и 0,07 % соответственно. При этом кишечник птиц, получавших фитодобавки, был длиннее такового у контрольных особей на 1,65 %. Наиболее развитыми у опытных кур оказались слепые отростки, превышающие контроль по массе на 27,59 % (Р≤0,05) и по длине на 8,41 %.

Таблица 25 – Развитие внутренних органов и гребня у кур-несушек в возрасте 24-х недель, М±m (n=5)

В ходе анализа репродуктивных органов определено, что абсолютная масса яичников и яйцевода у контрольных кур была выше, чем у опытных аналогов на 5,61 и 4,22 % соответственно, при этом длина яйцевода превосходила контроль на 4,27 %. Оценка развития гребней кур — по высоте и длине, свидетельствовала о их полноценном, соответствующем возрасту развитии, в обеих подопытных группах.

Таким образом, сравнительный анализ состояния внутренних органов и гребней кур показал, что птицы обеих подопытных групп имели нормальное развитие и были физиологически готовы к полноценной яйцекладке. При этом, включение экспериментальных фитодобавок способствовало лучшему развитию печени и слепых отростков, о чем свидетельствует их достоверное превосходство по массе над контролем в пределах нормативных значений. У опытных кур отмечена тенденция большей массы пищевода и более высоких значений длины кишечника и яйцевода.

4.2.4 Яичная продуктивность кур-несушек

Яйценоскость – один из главных продуктивных и экономических показателей содержания промышленного стада кур-несушек, который в значительной степени обусловлен физиологическими процессами образования яйца, связанными с наследственной предрасположенностью, возрастом и условиями внешней среды. Показатели яичной продуктивности кур представлены в таблице 26.

Таблица 26 – Яичная продуктивность кур-несушек за период 18-28 недель жизни

Примечание: N – норматив для кросса «Хай-Лайн Браун»

Сравнительный ежедневный учет яйценоскости кур в период с 18-ти по 28-ми недельный возраст показал, что контрольная птица, по сравнению с опытной, на один день раньше снесла 1-е яйцо и вышла на 50-процентную продуктивность. Однако, пика продуктивности раньше на 17 дней достигла опытная птица – в возрасте 172 дней, против 189 дней в контроле и он был выше на 0,1 %.

Отставание опытной группы по количеству снесенных яиц на начальную и среднюю несушку на 0,9 и 1,7% соответственно, а также повышение расхода корма на 0,007 кг на 10 штук яиц объясняется менее интенсивным разносом кур. При этом расход корма на голову в опытной группе был ниже, по сравнению с контрольным уровнем, на 0,49 г или 0,42 %. Обращают на себя внимание показатели качества яиц: загрязненных яиц в опытной группе было меньше, чем в контроле на 0,10 %, а яиц с поврежденной скорлупой (бой и насечка) – на 0,05 %.

Включение в рацион фитобиотических добавок способствовало повышению массы яиц в опытной группе на 4,7%.

Интенсивность яйцекладки (табл. 27) у кур опытной группы в целом за период — 18-28 недель жизни, была ниже, чем в контроле на 0,94 %, при этом стоит отметить, что более низким этот показатель был до 20-недельного возраста.

Таблица 27 – Интенсивность яйценоскости кур-несушек, %

Далее, начиная с 21-недельного возраста, опытная птица более интенсивно начала разноситься и на 28-й неделе жизни интенсивность яйценоскости у кур опытной группы опережала контроль на 0,22%. Кроме того, динамика яйценоскости у кур опытной группы была более равномерной (рис. 80). В контрольной же группе наблюдалось понижение яйценоскости в течение учетного периода: на 27-й неделе на 0,19%, по сравнению с показателем предыдущей 26-й неделей.

Рисунок 80 – Динамика интенсивности яйценоскости кур-несушек за период 18-28 недель

Резюмируя описанные результаты по яичной продуктивности, можно сделать вывод, что кормовые добавки Активо и Активо Ликвид имеют явный пролонгирующий эффект, который позволяет птице выдерживать высокий темп продуктивности, что не маловажно при длительном содержании кур-несушек яичных кроссов.

4.2.5 Морфологические и биохимические показатели яиц

Для оценки полноценности яиц в возрасте 24-х и 28-ми недель (каждый продуктивный месяц) исследовали по 30 яиц из каждой группы. Данные морфологического анализа яиц приведены в таблице 28.

Масса яиц является главным и первоначальным признаком для их классификации по стандарту и определения цены. При одинаковой яйценоскости количество яичной массы может быть различно, что отражается на выходе продукции и ее стоимости. Кроме того, масса яйца наряду с живой массой птицы, связана с оценкой однородности взрослого стада.

Установлено, что масса яиц опытной группы превышала контроль в 24-х и 28-ми недельном возрасте на 5,26 (Р≤0,01) и 3,32 % соответственно. При этом прочность скорлупы превосходила контроль на 0,72 и 1,73 % в те же периоды проверки.

Высота белка яиц кур контрольной группы в 24-недельном возрасте была больше, чем у опытных сверстников на 5,88 % (Р≤0,001) и соответственно, зависящая от данного показателя, единица ХАУ была больше на 4,41 % (Р≤0,001). В 28-недельном возрасте два этих показателя также были выше в контрольной группе, однако разница снизилась до 2,06 и 1,31 % соответственно, по сравнению с опытными значениями.

Таблица 28 – Морфологические показатели яиц кур-несушек, М±m (n=30)

Наряду с морфологическими показателями яиц оценивали и их биохимические параметры. Данные приведены в таблице 29. В желтке яиц опытных кур в возрасте 24-х недель наблюдалось большее содержание каротиноидов и витамина В₂ на 46,93 (Р≤0,001) и 2,55 % соответственно по сравнению с контролем. В 28-недельном возрасте количество каротиноидов наоборот было большим в контрольных яйцах — на 11,52 % (Р≤0,01) по сравнению с опытным значением, а уровень витамина В₂ превосходил контроль у опытных особей на 2,6%. Содержание витамина В₂ в белке яиц подопытных кур в возрасте 24-х недель было практически на одном уровне, а в 28-ми недельном возрасте его количество у опытных птиц уступало контролю на 2,65 %.

Таблица 29 – Биохимические показатели качества яиц кур-несушек, М±m (n=30)

Наиболее насыщенный цвет желтка по шкале Roche, особенно в 28-недельном возрасте, наблюдали в контрольной группе, превышение по сравнению с опытными аналогами составило 4,48 %.

4.2.6 Переваримость питательных веществ комбикорма

С целью изучения влияния кормовых добавок Активо и Активо Ликвид на переваримость и усвоение питательных веществ корма промышленной птицей в течение 3 дней был проведен балансовый опыт в возрасте 24-х недель жизни (табл.30).

Таблица 30 – Коэффициенты переваримости питательных веществ курами-несушками, % (n=3)

Переваримость сухого вещества в организме кур опытной группы была выше, чем контроле на 2,30 %. Переваримость сырого протеина птиц опытной группы незначительно уступала контрольной группе — на 0,78 %.

Введение в рацион изучаемых добавок Активо и Активо Ликвид способствовало существенному повышению переваримости сырого жира и сырой клетчатки у опытной птицы, по сравнению с контролем, на 13,03 и 17,38 % соответственно.

По переваримости безазотистых экстрактивных веществ куры опытной группы уступали особям контрольной группы на 2,48 %.

Таким образом, полученные в ходе физиологического опыта данные свидетельствуют о положительном влиянии изучаемых добавок на переваримость и усвоение питательных веществ корма.

4.2.7 Обмен энергии в организме кур-несушек

Потребность птицы в энергии складывается из затрат на поддержание жизни, затрат на синтез, транспорт и отложение веществ в продукцию и собственно энергии, отложенной в продукцию. Затраты энергии у птиц зависят от ее возраста, интенсивности обмена веществ, условий содержания, стресс-факторов и других внешних воздействий.

В таблице 31 представлены результаты исследований обмена энергии у птицы.

Таблица 31 – Баланс энергии в организме кур-несушек, МДж/гол в сутки (n=3)

Установлено, что дополнительное введение в рацион кур фитобиотических добавок по предлагаемым схемам способствовало повышению количества обменной энергии в организме птиц на 2,1%, по сравнению с контролем, при этом отношение обменной энергии к валовой энергии корма превысило контрольный уровень на 0,37%.

4.2.8 Обмен азота в организме птицы

Определение азота, отложенного в теле птицы, находится по разности поступившего количества и выделенного в помете. Данные по расчету баланса азота у кур представлены в таблице 32.

Таблица 32 – Баланс азота в организме кур-несушек, г на голову в сутки (n=3)

В обеих группах баланс азота был положительным. Потери азота в помете у кур, получавших Активо и Активо Ликвид, были ниже на 0,17 г. В результате среднесуточное использование азота в расчете от принятого с кормом в теле кур опытной группы было выше контроля на 2,00 %.

4.2.9 Обмен кальция и фосфора, минерализация костной ткани

Кальций и фосфор относятся к группе макроэлементов и выполняют в организме важные физиологические функции, связанные в основном с минеральным обменом. Недостаток или дисбаланс этих веществ нарушает минерализацию костяка птиц, что в свою очередь негативно сказывается на продуктивности и экономических показателях содержания.

Проведенный расчет баланса кальция (табл. 33) свидетельствует, что он был положительным.

Таблица 33 – Баланс кальция в организме кур-несушек, г на голову в сутки (n=3)

Потери кальция с помётом в опытной группе, по сравнению с контрольной группой, были ниже на 0,5 г, и как следствие, использование его в организме кур, получавших исследуемые добавки, было выше, чем в контроле на 10,13 %. Повышение использования кальция в организме опытных птиц согласуется с оценкой морфологических показателей яиц, свидетельствующей об увеличении толщины и прочности скорлупы, по сравнению с контролем.

Расчет баланса фосфора в организме кур показал (табл.34), что в обеих группах было малоэффективное использование данного макроэлемента от принятого, при этом у опытных птиц оно было выше контроля на 0,06 %.

Таблица 34 – Баланс фосфора в организме кур-несушек, г на голову в сутки (n=3)

Интенсивная эксплуатация кур-несушек обуславливает значительные изменения в их скелете. С обменом веществ в костной ткани тесно связана продуктивность кур. Скелет определяет потенциальные возможности несушки в смысле ее продуктивности. Химический состав большеберцовой кости кур в возрасте 24-х недель приведен в таблице 35.

Таблица 35 – Химический состав большеберцовой кости кур-несушек, % (n=5)

Преимущество по содержанию золы, кальция и фосфора в большеберцовой кости было отмечено у птицы опытной группы. Так, количество золы было выше, по сравнению с контролем на 0,18 %, а содержание кальция и фосфора на 2,40 и 1,59 %.

4.2.10 Морфологический состав крови кур

Условия кормления и содержания, сезон года, порода и конституция, физиологическое состояние, уровень продуктивности влияют на состав и свойства крови. Морфологический состав крови кур-несушек представлен в таблице 36.

Результаты полученных исследований позволяют заключить, что основные морфологические показатели крови кур-несушек в 24-недельном возрасте находились в пределах физиологической нормы, но между группами по отдельным параметрам наблюдались различия. Так, количество эритроцитов в крови кур опытной группы превышало значение контрольных особей на 1,20 %, при этом средний объем эритроцитов был выше на 2,79%, а гематокрит (отношение красных клеток крови к ее общему объему) на 1,40 %. Ширина распределения эритроцитов в крови опытных кур была ниже 0,64 %, по сравнению с контрольной группой. Количество гемоглобина у кур, потреблявших фитопрепараты, было выше контроля на 5,34%, что сопровождалось повышением содержания гемоглобина в одном эритроците и средней концентрации гемоглобина в эритроците на 3,68 и 0,91%, данное обстоятельство может свидетельствовать об активизации окислительно-восстановительных процессов в организме птиц.

В ходе анализа общего количества лейкоцитов и лейкограммы крови кур отмечено, что у опытных особей было большее, по сравнению с контролем, содержание лейкоцитов — на 15,42%, меньший уровень лимфоцитов и эозинофилов – на 8,4 и 0,2%. Содержание моноцитов в крови контрольной и опытной птицы было на одном уровне и составляло 4,8%. Наблюдалась тенденция снижения у птиц, получавших экспериментальные препараты, количества псевдоэозинофилов на 2,2% по отношению к контролю.

Таблица 36 — Морфологический состав крови кур несушек, M±m (n=5)

Уровень базофилов в крови кур опытной группы достоверно превосходил контроль на 1,8% (P≤0,05), при этом находясь в пределах оптимальных референтных величин. Количество тромбоцитов у опытных особей достоверно превышало этот показатель в контроле на 48,67% (P≤0,05).

Скорость оседания эритроцитов у цыплят, задействованных в опыте, соответствовала нормативному уровню, при этом у птиц, в рацион которым вводили изучаемые кормовые средства, данный показатель был достоверно ниже на 41,2% (Р≤0,05).

Таким образом, дополнительное включение в рацион кур-несушек фитобиотических добавок Активо и Активо Ликвид не оказало отрицательного влияния на организм птицы, способствуя при этом активизации окислительно-восстановительных процессов, о чем свидетельствует увеличение количества эритроцитов и гемоглобина, и повышению защитных функций, естественной резистентности организма, что подтверждается умеренным возрастанием количества лейкоцитов, достоверным повышением базофилов и снижением скорости оседания эритроцитов, в пределах физиологических значений.

4.2.11 Биохимический состав крови кур

Биохимический состав крови экспериментальных кур-несушек представлен в таблице 37.

Таблица 37 — Биохимический состав крови кур-несушек, M±m (n=5)

У кур яйценоскость коррелирует с окислительными свойствами крови и интенсивностью роста. Установлена связь между белковым составом крови и жизнеспособностью, скороспелостью и яйценоскостью. Возможно прогнозирование яйценоскости по уровню кальция в сыворотке крови [122].

Включение в рацион несушек фитобиотиков по предложенным схемам способствовало повышению количества общего белка в сыворотке крови птиц на 7,07%, при этом уровень альбуминов был достоверно выше контроля на 5,30 % (Р≤0,05). Отмеченные изменения в белковом обмене у опытных птиц говорят об активизации белокобразующей функции печени, что имеет большое значение в период интенсивного образовании яйца.

Количество мочевины и креатинина в крови птиц, получавших добавки, достоверно превышало контрольный уровень на 28,03 и 86,36% (P≤0,001).

Содержание конечного продукта белкового обмена птиц – мочевой кислоты, у опытных кур было меньше, по сравнению с контрольными аналогами на 10,91 %, что свидетельствует о лучшем использовании белкового азота в организме и благоприятном состоянии печени, что в свою очередь подтверждается достоверным снижением на 46,73 % (Р≤0,001) содержания в сыворотке крови фермента АЛАТ.

Содержание АСАТ в крови опытных кур было достоверно выше контроля на 13,84%, что говорит о более высокой скорости физиологической регенерации клеток сердца, печени, почек и других органов в период интенсивной яйцекладки птиц под действием добавок.

Показательно, что в опытной группе кур, принимающих кормовые фитопрепараты, на пике продуктивности, с одной стороны снижается количество глюкозы и холестерина в крови, по сравнению с контролем на 13,60 % (Р≤0,01) и 2,48%, а с другой стороны, повышается уровень триглицеридов — необходимых компонентов яичного желтка, на 6,44 %.

Уровень большинства определяемых макроэлементов в сыворотке крови показал, что их содержание у птиц, получавших новые кормовые средства, был выше, чем у контрольных сверстников. Так, содержание общего кальция повысилось на 3,04%, неорганического фосфора – на 7,41%, калия – на 1,73%, натрия – на 1,3%.

Таким образом, фитобиотические добавки Активо и Активо Ликвид обладают стимулирующим действием на обменные процессы в организме кур-несушек. Об этом свидетельствует повышение интенсивности белкового обмена, выражающееся в возрастании уровня общего белка и снижении количества мочевой кислоты, а также катаболическая направленность углеводного обмена, характеризующегося достоверным снижением уровня глюкозы в крови, что вероятно обусловлено возрастанием энергетических потребностей организма птиц, в связи с более ранним их выходом, по сравнению с контрольными аналогами, на пик продуктивности и удержанием его на более высоком уровне.

4.2.12 Состояние микрофлоры толстого отдела кишечника кур

Микробиологическое исследование позволяет выявить нарушение видового состава и количественных соотношений микроорганизмов в норме заселяющих нижние отделы желудочно-кишечного тракта. У здоровой птицы нормальная микрофлора занимает главенствующее положение по количеству и активности, условно-патогенная проявляет весьма умеренную активность, а патогенная присутствует только в малых концентрациях. Однако, при введении в рацион кормов низкого качества, загрязненных микотоксинами, частой смене рационов, заболеваемости, снижении иммунитета, нарушении условий содержания, стрессовых факторах, условно-патогенная и патогенная микрофлора начинают получать конкурентное преимущество.

Результаты анализов содержимого толстого отдела кишечника кур в возрасте 24-х недель представлены в таблице 38.

Таблица 38 — Микробиологические исследования толстого отдела кишечника кур в возрасте 24-х недель, n=5

Установлено, что в содержимом толстого отдела кишечника у кур обеих групп отсутствовали патогенные микроорганизмы.

При сравнении наличия условно-патогенной микрофлоры в слепых отростках птиц, отмечено меньшее количество у опытных особей стафилококков. Так, в 4 опытных образцах содержание данных микроорганизмов составляло 10³ КОЕ/мл и в 1 образце – 10² КОЕ/мл, в тоже время, в контроле, в 1 образце их содержалось 10⁵ КОЕ/мл, в 2-х образцах – 10⁴ КОЕ/мл и в 1 образце – 10² КОЕ/мл. Грибковая флора Candida sp. в опытной группе была обнаружена только в одном образце — в количестве 10⁷ КОЕ/мл, а в контрольной группе — в 3-х образцах (1 образец — 10⁵, 2 образца – 10⁴). Повышение дрожжеподобных грибов этого рода может свидетельствовать о снижении иммунной защиты организма и низком значении рН.

Анализ нормальной флоры толстого отдела кишечника свидетельствовал о снижении количества бифидобактерий у представителей опытной группы и повышении количества лактобактерий по сравнению с контрольной группой. Кроме того, наблюдали отсутствие в контрольной группе лактострептококков и E.coli лактозонегативных. В опытной группе лактострептококки присутствовали в следующем количестве: 1 образец – 10⁷, 1 образец – 10⁶ и 3 образца – <10⁵. E. coli лактозонегативные у опытных особей были обнаружены в одном образце в количестве 10⁶.

В отношении E. coli гемолитических наблюдалась противоположная картина: в контрольной группе они были обнаружены в 2 образцах в количестве 10⁶ КОЕ/мл, а в опытных образцах, они не были выявлены. Присутствие гемолитической кишечной палочки требует иммунокоррекции, т.к. может вызвать кишечные проблемы при малейшем ослаблении иммунитета у птиц.

Следовательно, включение в рацион кур промышленного стада фитобиотических препаратов не оказало отрицательного воздействия на состояние микробиоценоза несушек.

4.2.13 Морфо-гистологическое состояние внутренних органов кур

Гистологическое исследование, является методом диагностики заболевания на тканевом уровне, исследование под микроскопом специально подготовленного участка патологической ткани позволяет получить представление о сути и выраженности патологического процесса, выявить его особенности, определить нарушение функций, структуры исследуемых тканей.

Печень контрольных кур

На рисунке 81 в первом образце наблюдается умеренный отек стромы, полнокровие центральных вен, очаговые кровоизлияния в ткани печени, преимущественно вокруг центральных вен. Гепатоциты неправильной и округлой формы формируют хорошо различимые септы. Отмечены группы гепатоцитов с признаками белковой дистрофии.

Рисунок 81 — Срез печени 1 контрольной курицы. Ув.100

Во втором образце, представленном на рисунке 82, балки хорошо выражены, синусоиды визуализируются, на отдельных участках расширены, полнокровны.

Рисунок 82 — Срез печени 2 контрольной курицы. Ув. 200

В третьем образце (рис. 83) балки хорошо выражены, синусоиды визуализируются, присутствует очаговое полнокровие центральных вен.

Рисунок 83 — Срез печени 3 контрольной курицы. Ув. 200

Печень опытных кур

На рисунке 84 показан первый образец, на котором видно, что гепатоциты расположены немного хаотично, синусоиды узкие, присутствует венозное полнокровие.

Рисунок 84 — Срез печени 1 опытной курицы. Ув. 100

Во втором образце (рис. 85) отдельные гепатоциты были с пенистой или зернистой цитоплазмой. Отмечено полнокровие центральных вен и перицентральных синусоидов.

Рисунок 85 — Срез печени 2 опытной курицы. Ув. 100

Третий образец (рис. 86, 87) характеризует очаговое полнокровие центральных вен.

Рисунок 86 — Срез печени 3 опытной курицы. Ув. 200

Рисунок 87 — Срез печени 3 опытной курицы. Ув. 200

Поджелудочная железа контрольных кур

На рисунке 88 отображен срез первого образца. Ткань железы слабодольчатая, септы очень тонкие. Немногочисленные капилляры полнокровны. Ацинарные клетки с оксифильной цитоплазмой и базофильным базально расположенным ядром, ядра части клеток светлые пузырьковидные. Цитоплазма с хорошо выраженной эозинофильной зернистостью. Островки Лангерганса распределены неравномерно, мелкие округлой и овоидной формы. Клетки островков с бледно-оксифильной цитоплазмой и светлым ядром.

Рисунок 88- Срез поджелудочной железы 1 контрольной курицы. Ув.100

Во втором срезе (рис. 89) ткань железы дольчатая, септы хорошо развиты, содержат полнокровные капилляры. Островки Лангерганса распределены неравномерно (парно) мелкие, преимущественно овоидной формы.

Рисунок 89 — Срез поджелудочной железы 2 контрольной курицы. Ув.100

На третьем образце (рис. 90) септы представлены отечной соединительной тканью. Островки Лангерганса разновеликие с исчезновением базофилии ядер. Капилляры развиты умеренно, полнокровны.

Рисунок 90 — Срез поджелудочной железы 3 контрольной курицы. Ув.100

Поджелудочная железа опытных кур

В первом образце (рис. 91) ткань железы слабодольчатая, септы очень тонкие, представлены отечной зрелой соединительной тканью. Ацинарные клетки с оксифильной цитоплазмой и базофильным базально расположенным ядром, ядра части клеток светлые пузырьковидные. Отдельные клетки ацинусов с хорошо выраженной эозинофильной зернистостью в цитоплазме. Островки Лангерганса распределены неравномерно, мелкие округлой и овоидной формы. Капилляры единичные.

Рисунок 91 — Срез поджелудочной железы 2 опытной курицы.Ув. 100

Во втором образце (рис. 92) видно, что ткань дольчатая, септы расширены за счёт отека. Ацинусы без особенностей. Островки Лангерганса единичные, очень мелкие, неправильной формы.

Рисунок 92 — Срез поджелудочной железы 2 опытной курицы. Ув. 100

На рисунке 93 в третьем срезе наблюдается строма железы с очаговым отеком. Выводные протоки выстланы кубическим эпителием, просвет свободен. Островки Лангерганса распределены неравномерно, мелкие, округлой формы и неправильной формы (имеют «лопасти»), отдельные островки формируют мелкие скопления – от 2 до 3. Клетки островков с нежной эозинофильной цитоплазмой, отдельные клетки с гиперхромными ядрами. Капиллярная сеть в островках и железе развита хорошо.

Рисунок — 93 Срез поджелудочной железы 3 опытной курицы.Ув. 100

12-перстная кишка контрольных кур

Здоровый кишечник обеспечивает надежный иммунный ответ и барьер против патогенов, токсинов и других вредных веществ. Нарушение здоровья кишечника отрицательно сказывается на усвоении питательных веществ корма, приводит к ослаблению иммунного ответа, замедлению роста, нарушению однородности стада, снижению яйценоскости.

Проведенный гистологический анализ 12-перстной кишки показал, что в первом образце (рис. 94) между поперечным и продольным слоями гладких миоцитов стенки присутствуют группы адипоцитов. Крипты расположены тесно, выстилающий эпителий высокий призматический, ядра расположены в несколько рядов, встречаются фигуры митозов в среднем 1-2 на крипту. Бокаловидные клетки в криптах немногочисленные. В строме между криптами выраженная диффузная мононуклеарная инфильтрация. Ворсины деструированы, гистологическая структура не прослеживается. В просвете кишки клеточный детрит из десквамированного призматического эпителия и лейкоцитов.

Рисунок 94 — Срез 12-перстной кишки 1 контрольной курицы. Ув. 100

Во втором контрольном образце наблюдали (рис. 95) гладкие миоциты стенки с дистрофическими изменениями. Крипты различной глубины, просвет большинства крипт не определяется, в эпителии отдельных крипт апикально крупные вакуоли. В строме неравномерно выраженная диффузная преимущественно лимфо-плазмоцитарная инфильтрация. Ворсины пальцевидные, широкие, на большем протяжении деструированы.

Рисунок 95 — Срез 12-перстной кишки 2 контрольной курицы.Ув. 100

В третьем срезе (рис. 96) мышечная стенка неравномерной толщины, часть крипт разрушена. В строме диффузная, от умеренной до выраженной мононуклеарная, инфильтрация (больше выраженная в строме деструированных ворсин).

Рисунок 96- Срез 12-перстной кишки 3 контрольной курицы. Ув.100

12-перстная кишка опытных кур

На первом образце (рис. 97, 98) видно, что гладкие миоциты стенки представлены с исчезновением базофилии ядер и оксифильной зернистостью цитоплазмы. Крипты расположены тесно, выстилающий эпителий высокий призматический, ядра расположены в несколько рядов, встречаются фигуры митозов в среднем 1-2 на крипту. Ворсины деструированы, гистологическая структура не прослеживается. В просвете кишки клеточный детрит из десквамированного призматического эпителия и лейкоцитов.

Рисунок 97 — Срез 12-перстной кишки 1 опытной курицы.Ув. 100

Рисунок 98 — Срез 12-перстной кишки 1 опытной курицы.Ув. 200

Во втором срезе наблюдали (рис. 99) гладкие миоциты стенки с исчезновением базофилии ядер и оксифильной зернистостью цитоплазмы. Эпителий крипт с умеренной митотической активностью. Гистоархитектоника ворсин нарушена: ворсины утолщены, в строме дистрофически измененные миоциты. Покрывающий призматический эпителий с неразличимыми границами клеток, кариопикноз, кариорексис.

Рисунок 99 — Срез 12-перстной кишки 2 опытной курицы.Ув. 200

В третьем образце (рис. 100) гладкие миоциты стенки были с исчезновением базофилии ядер и оксифильной зернистостью цитоплазмы. Крипты деформированы, эпителий с умеренно выраженными пролиферативными изменениями. Ворсины деструированы, представлены бесструкрурными массами с включением групп клеток призматического эпителия, гладких миоцитов и лейкоцитов.

Рисунок 100 — Срез 12-перстной кишки 3 опытной курицы. Ув. 100

Наряду с гистологическим анализом двенадцатиперстной кишки была проведена оценка её морфометрических показателей (табл.39)

Таблица 39 — Морфометрические показатели 12-перстной кишки кур-несушек, М±m (n=3)

Установлено, что разница в толщине мышечной стенки 12-перстной кишки и глубине крипт между опытной и контрольной группами была незначительной, составив соответственно 2,59 и 4,08%, в сторону увеличения у опытных несушек. Включение фитобиотических добавок в рацион кур способствовало достоверному повышению высоты ворсинок по отношению к контролю на 29,12 % (Р≤0,01), что свидетельствует об увеличении всасывающей площади слизистой тонкой кишки и согласуется с данными балансового опыта, демонстрирующего повышение переваримости жира, использования азота, кальция и фосфора.

Толстая кишка (слепые отростки) контрольных кур

В первом срезе (рис.101) отмечены группы адипоцитов в подслизистой. Крипты неглубокие. В подслизистой, большое количество лимфоцитов, в том числе единичные среди эпителиоцитов.

Рисунок 101 — Срез толстой кишки 1 контрольной курицы. Ув.100

Второй контрольный образец представлен на рисунках 102 и 103. Наблюдали группы адипоцитов в подслизистой. Крипты неглубокие. В подслизистой большое количество лимфоцитов, в том числе среди эпителиоцитов. Ворсины деструированы, в просвете кишки клеточный детрит.

Рисунок 102 — Срез толстой кишки 2 контрольной курицы. Ув.100

Рисунок 103 — Срез толстой кишки 2 контрольной курицы. Ув. 200

В третьем образце (рис. 104) подслизистая отечна с большим количеством адипоцитов и толстостенными запустевшими сосудами. На отдельных участках неравномерно выраженная мононуклеарная инфильтрация с преобладанием лимфоцитов, на отдельных участках с формированием скоплений лимфоидных клеток. Под собственной пластинкой слизистой оболочки визуализируются скопления лимфоидных клеток, формирующих подобие солитарных фолликулов.

Рисунок 104- Срез толстой кишки 3 контрольной курицы. Ув. 100

Толстая кишка (слепые отростки) опытных кур

В первом образце (рис. 105) гистоархитектоника органа была сохранена, в подслизистой наблюдались скопления адипоцитов. Между криптами отмечена неравномерно выраженная мононуклеарная инфильтрация, единичные лимфоциты среди эпителиоцитов крипт.

Рисунок 105 — Срез толстой кишки 1 опытной курицы.Ув. 200

Во втором образце, представленном на рисунке 106, крипты в подслизистой распределены неравномерно, различной высоты, между криптами немногочисленные лимфоциты.

Рисунок 106 — Срез толстой кишки 2 опытной курицы.Ув. 100

В третьем образце на рисунке 107 собственная пластинка слизистой оболочки представлена рыхлой соединительной тканью с большим количеством клеток лимфоидного ряда. Под ней мелкие скопления адипоцитов и лимфоидные скопления по типу солитарных фолликулов.

Рисунок 107 — Срез толстой кишки 3 опытной курицы.Ув. 200

Селезенка контрольных кур

На рисунке 108 видно, что в первом срезе капсула представлена соединительной тканью. Деление на красную и белую пульпу выражено не четко. Определяются средние и мелкие лимфоидные фолликулы, со слабо выраженными герминативными центрами. Красная пульпа состоит из ретикулярной ткани, которая содержит клеточные элементы: клетки крови, плазмоциты и макрофаги.

Рисунок 108 — Срез селезенки 1 контрольной курицы. Ув. 100

На втором срезе (рис. 109) фолликулы преимущественно мелкие со слабо выраженным герминативным центром. Отдельные альвеолы с периваскулярным отеком, плазматическим пропитыванием стенки.

Рисунок 109 — Срез селезенки 2 контрольной курицы. Ув. 100

На третьем образце (рис. 110) отмечено, что граница между белой и красной пульпой неразличима. Фолликулы представлены хаотичными скоплениями лимфоцитов, герминативные центры не выражены. Вокруг сосудов выраженный отек.

Рисунок 110- Срез селезенки 3 контрольной курицы. Ув. 200

Селезенка опытных кур

В образце номер один на рисунке 111 визуализируются немногочисленные крупные лимфоидные фолликулы со слабо выраженным герминативным центром, артериологиалиноз.

Рисунок 111 — Срез селезенки 1 опытной курицы. Ув. 100

Во втором срезе (рис. 112) граница между красной и белой пульпой слабо различима, фолликулы преимущественно мелкие со слабо выраженным герминативным центром. Выраженный периваскулярный отек.

Рисунок 112- Срез селезенки 2 опытной курицы. Ув. 200

В третьем образце, представленном на рисунке 113, фолликулы мелкие, распределены неравномерно. Отдельные сосуды с резко утолщенными стенками, вакуолизированным эндотелием, полнокровны.

Рисунок 113 — Срез селезенки 3 опытной курицы. Ув. 200

Тимус контрольных кур

Первый образец (рис.114) представлен мелкими дольками среди жировой ткани. Мозговая зона узкая. Корковая зона содержит многочисленные мелкие тельца Гассаля (незавершенность процесса инволюции).

Рисунок 114 — Срез тимуса 1 контрольной курицы. Ув. 200

Во втором образце (рис. 115) материал представлен хаотично расположенными пучками зрелой соединительной ткани с очаговым отеком и кровоизлияниями, между которыми определяются поля адипоцитов.

Рисунок 115 — Срез тимуса 2 контрольной курицы. Ув. 200

На рисунке 116 в третьем образце видно, что группы адипоцитов, разделены широкими прослойками зрелой соединительной ткани.

Рисунок 116 — Срез тимуса 3 контрольной курицы. Ув. 200

Тимус опытных кур

На первом и втором срезе образцов тимуса (рис. 117) представлена преимущественно жировая ткань, соединительная ткань с выраженным отеком, пучки поперечно-полосатых мышц.

Рисунок 117 — Срез тимуса 1 и 2 опытных кур. Ув. 100

Образец номер три (рис. 118 и 119) представлен мелкими дольками среди жировой ткани. Мозговая зона относительно узкая. Корковая зона содержит немногочисленные тельца Гассаля, сосуды полнокровные.

Рисунок 118 — Срез тимуса 3 опытной курицы. Ув. 100

Рисунок 119- Срез тимуса 3 опытной курицы. Ув. 200

Фабрициева сумка контрольных кур

У первого контрольного образца (рис.120) мышечная оболочка со значительным отеком стромы, миоциты с дистрофическими изменениями. Просвет бурсы выстлан многорядным цилиндрическим эпителием с ресничками на апикальной поверхности без признаков повреждения. Под эпителиальным слоем в толще слизистой оболочки среди отечной стромы определяются немногочисленные лимфоциты, плазмоциты. Лимфоидные фолликулы не определяются.

Рисунок 120 — Срез фабрициевой сумки 1 контрольной курицы. Ув.100

У второго контрольного образца (рис. 121, 122) в стенке среди пучков миоцитов отмечены группы адипоцитов. Складки различной высоты, просвет выстлан многорядным цилиндрическим эпителием с ресничками на апикальной поверхности. Под выстилающим эпителием в отечной строме единичные и в группах крупные клетки с округлым крупным базофильным ядром с равномерной хромностью и тонкостенные запустевшие капилляры.

Рисунок 121 — Срез фабрициевой сумки 2 контрольной курицы. Ув. 100

Рисунок 122 — Срез фабрициевой сумки 2 контрольной курицы. Ув. 200

В третьем контрольном образце мышечная стенка несколько утолщена, среди пучков миоцитов группы адипоцитов (рис. 123). Складки, выступающие в просвет, низкие, покрыты высоким псевдомногорядным призматическим эпителием. Под эпителиальным слоем богатая лимфоцитами строма, фолликулы не визуализируются.

Рисунок 123 — Срез фабрициевой сумки 3 контрольной курицы. Ув.100

Фабрициева сумка опытных кур

В первом образце, представленном на рисунках 124 и 125 видно, что мышечная оболочка со значительными дистрофическими и некробиотическими изменениями клеток, среди пучков мышечных клеток, группы адипоцитов и полости, стенки которых представлены плотной соединительной тканью, выстилка представлена слоем низких кубических клеток, содержимое: гомогенные слабобазофильные массы. Так же в строме присутствуют мелкие гнезда округлых клеток с крупным базофильным ядром.

Рисунок 124 — Срез фабрициевой сумки 1 опытной курицы. Ув. 100

Рисунок 125 — Срез фабрициевой сумки 1 опытной курицы. Ув. 200

Во втором образце мышечная оболочка представлена хаотически переплетающимися пучками гладкомышечных клеток, отдельные пучки с признаками гипертрофии. Лимфоидная ткань истощена, состоит преимущественно из редко расположенных больших лимфоцитов и отдельных плазматических клеток, а также большого количества макрофагов и гранулоцитов (рис.126).

Рисунок 126 — Срез фабрициевой сумки 2 опытной курицы. Ув.100

В третьем образце (рис. 127, 128, 129, 130) гистологическая структура органа сохранена. Гладкие миоциты формируют хорошо различимые разнонаправленные слои. Просвет бурсы выстлан многорядным цилиндрическим эпителием без признаков повреждения. Непосредственно под эпителиальным слоем в толще слизистой оболочки определяются немногочисленные лимфоидные фолликулы преимущественно крупного и среднего размера, имеющие округлую, овоидную или трапециевидную форму, формирующие 1-2 ряда. Зоны в фолликулах неразличимы. В отдельных фолликулах наблюдаются редкие очаги деструкции.

Рисунок 127 — Срез фабрициевой сумки 3 опытной курицы. Ув. 200

Рисунок 128 — Срез фабрициевой сумки 3 опытной курицы. Ув.200

Рисунок 129 — Срез фабрициевой сумки 3 опытной курицы. Ув. 200

Рисунок 130 — Срез фабрициевой сумки 3 опытной курицы. Ув. 200

Сравнительный анализ гистологических изменений в органах птицы в возрасте 24-х недель свидетельствует о том, что в печени кур контрольной и опытной групп отмечены участки неравномерного кровенаполнения, расширения и полнокровия синусоидных капилляров, однако, наиболее выраженные признаки нарушения кровообращения в виде паренхиматозных кровоизлияний наблюдались в контрольной группе, что может говорить о протективном действии используемых в рационе птиц кормовых добавок на сосуды, с уменьшением их ломкости. Кроме того, в обеих экспериментальных группах в печени кур-несушек отмечены умеренно выраженные дистрофические процессы, представляющие собой появление крупных эозинофильных включений и неравномерную окраску в цитоплазме.

Экзокринная часть поджелудочной железы была одинаково выражена во всех исследуемых группах и представлена ациноцитами с хорошо визуализируемой эозинофильной зернистостью и узкими протоками, выстланными кубическим эпителием. Кальцинаты и другие патологические включения в просветах протоков железы не определялись. Эндокринная часть поджелудочной железы, представленная островками Лангерганса, слабее была выражена у птиц опытной группы, что косвенно может свидетельствовать о развитии гипергликемического синдрома.

При анализе кишечника кур в обеих подопытных группах были выявлены катаральные воспалительные процессы в 12-ти перстной кишке на стадии серозного и слизистого катара, не переходящие в гнойный катар, с сохранением функции пристеночного пищеварения. Лимфоидный аппарат толстого кишечника в виде мелких фолликулов без светлых центров был представлен у птиц и контрольной, и опытной групп, при этом в большинстве случаев в подслизистой определялась диффузная неравномерная инфильтрация собственной пластинки слизистой.

Лимфоидные органы В-системы иммунитета птиц – селезенка, лимфоидные фолликулы кишечника, фабрициева бурса и Т-системы иммунитета — тимус, претерпели некоторые инволютивные процессы в обеих подопытных группах. Так, в селезенке наблюдались выраженные изменения с нарушением дифференциации красной и белой пульпы, уменьшением числа фолликулов, слабым развитием герминативных центров, при этом в единичных образцах контрольной группы герминативные центры не были выражены. Поскольку герминативные центры — это основное место пролиферации В лимфобластов и дифференцирующихся антителообразующих плазматических клеток, то птицы контрольной группы могут характеризоваться угнетением гуморального иммунитета и повышенным риском реинфицирования. Тимус сохранил функциональную активность только в единичных образцах и был представлен несколькими мелкими дольками с признаками инволюции, в большинстве же исследуемых образцов данный орган был полностью замещен жировой и соединительной тканью. Фабрициева бурса птиц также характеризовалась инволютивными проявлениями: нет четкой границы коркового и мозгового слоя, отмечается отек соединительной ткани, присутствуют кистозные полости, тем не менее, в опытной группе были сохранены мелкие лимфоидно-подобные скопления, демонстрирующие признаки хорошего гуморального иммунитета птиц в этом возрасте.

Таким образом, по совокупности проанализированных гистологических изменений можно констатировать о благоприятном воздействии изучаемых фитобиотических кормовых добавок Активо и Активо Ликвид на функции органов пищеварения и иммуногенеза кур-несушек в данный период технологического цикла.

4.2.14 Экономическая эффективность использования фитобиотических добавок в рационе кур

В таблице 40 представлены результаты экономической эффективности использования фитобиотических добавок по данным научно-хозяйственного опыта.

Обобщая результаты зоотехнического учета и анализа экономической эффективности исследовательской работы, можно сделать вывод о том, что применение кормовых добавок Активо и Активо Ликвид в условиях индустриальных методов птицеводства способствует повышению адаптационных возможностей птицы, нормализации общего обмена в организме, тем самым улучшает производственные показатели содержания птицы и позволяет получить дополнительную прибыль и повысить рентабельность.

Таблица 40 — Экономическая эффективность применения кормовых добавок Активо и Активо Ликвид в кормлении кур-несушек (научно-хозяйственный опыт)

Несмотря на то, что интенсивность яйцекладки у кур опытной группы за 18-28 недель жизни была ниже, чем в контроле на 0,94 %, выход стандартного яйца на протяжении всего эксперимента был выше на 0,52 %, при меньшем расходе корма – на 2,06%. Кроме того, сохранность поголовья птиц, получавших фитодобавки, возросла на 0,26%. В результате дополнительная прибыль в опытной группе составила 599 рублей, а рентабельность превысила контрольное значение — на 0,19%.

Таким образом, экономический эффект, полученный от кратковременного и периодичного применения испытуемых фитопрепаратов на курах-несушках по предлагаемой схеме, в анализируемых учетный период, свидетельствует о целесообразности их использования в условиях промышленных птицефабрик.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

На основании проведенных исследований на мясной птице сделаны следующие выводы:

1. Применение кормовых добавок ГербаСтор и ПроСтор, включающих синбиотики и фитобиотики (1 и 2 опытные группы), а также микрокапсулированной фитобиотической добавки Активо (3 опытная группа) дополнительно к основному рациону, не содержащему кормовых антибиотиков, оказало положительное влияние на зоотехнические показатели цыплят-бройлеров. Так, живая масса бройлеров 1, 2 и 3 опытных групп в конце откорма превосходила контроль соответственно на 2,0; 1,8 и 2,9%, а среднесуточный прирост живой массы в среднем за период выращивания был выше по сравнению с контролем на 2,1; 1,8 и 3,0%. Затраты корма в контрольной и 3 опытной группах составили 1,76 кг на 1 кг прироста живой массы цыплят-бройлеров, при этом в 1 и 2 опытных группах отмечено снижение затрат корма по сравнению с контролем на 0,02 и 0,05 кг, или на 1,14 и 2,8 %. Максимальная сохранность поголовья (100%) наблюдалась в 3 опытной группе, превышая значение всех остальных подопытных групп птицы на 2,3%. Европейский индекс продуктивности во всех подопытных группах был на достаточно высоком уровне, при этом 1, 2 и 3 опытные группы опережали контрольный уровень (381 ед) на 11, 17 и 21 единицу.
2. Использование новых кормовых компонентов сопровождалось повышением в составе тушек бройлеров 1, 2 и 3 опытных групп количества мяса на 2,5; 0,8 и 5,4% и меньшим значением массы костей, соответственно на 15,3; 2,6 и 13,9%. Результаты обвалки отдельных частей тушки опытных птиц свидетельствовали об увеличении массы наиболее ценных частей (грудка, голень и бедро) и снижении массы наименее ценных частей (каркас). Убойный выход потрошеной тушки в 1, 2 и 3 опытных группах был незначительно ниже контроля на 0,8; 2,1 и 0,3% соответственно, что связано с увеличением массы внутренних органов.
3. Ввод экспериментальных кормовых добавок в рацион цыплят-бройлеров не оказал отрицательного влияния на развитие внутренних органов птиц. При этом под влиянием скармливания ГербаСтора отмечалось достоверное возрастание в конце откорма массы мышечного желудка бройлеров. Включение ГербаСтора и ПроСтора в комбикорм сопровождалось достоверным увеличением в конце технологического цикла длины кишечника и повышением относительной массы этого органа у птиц. Использование ПроСтора способствовало достоверному повышению массы центрального органа иммуногенеза цыплят – тимуса, а также характеризовалось тенденцией повышения массы фабрициевой бурсы. Отмеченные положительные изменения в повышении массы центральных органов иммунитета цыплят, с учетом проведенной их гистологической оценкой, свидетельствующей о выраженной активизации процессов иммуногенеза, говорят о профилактирующем акцидентальную инволюцию действии данного препарата, позволяющего повысить массу органов за счет сохранения лимфоцитов корковой зоны.
4. Химический анализ мышечной ткани цыплят-бройлеров показал, что при включении в состав рациона цыплят-бройлеров комплексных препаратов на основе синбиотиков и фитобиотиков (ГербаСтора и ПроСтора) наблюдалась тенденция повышения количества жира в грудных мышцах бройлеров и снижение содержания белка в ножных мышцах. При использовании фитобиотической микрокапсулированной добавки (Активо) отмечено достоверное снижение, по сравнению с контролем, количества сухого вещества и белка в грудных мышцах на 1,0 и 1,1% (Р≤0,05) и тенденция увеличения белка и жира в ножных мышцах.
5. Данные о переваримости питательных веществ комбикорма цыплятами-бройлерами свидетельствуют об эффективности ввода в состав рациона анализируемых кормовых добавок. Во всех опытных группах установлено повышение переваримости жира на 6,7-11,0%, клетчатки – на 2,1-8,0% и безазотистых экстрактивных веществ – на 1,0-2,2%. Помимо этого, в 3 опытной группе также отмечено повышение переваримости сырого протеина на 1,6%. Результаты балансового опыта подтверждают более высокий уровень живой массы птицы, получавшей экспериментальные кормовые компоненты, по сравнению с контрольными аналогами.
6. Количество обменной энергии в организме цыплят, получавших на фоне основного рациона, свободного от кормовых антибиотиков, новые кормовые факторы, повысилось в 1 и 2 опытных группах на 3,1 и 4,3 %, при этом использование обменной энергии от валовой энергии корма было больше аналогичного показателя контрольной группы на 2,2 и 1,5%, соответственно. В 3 опытной группе количество обменной энергии было меньше, чем в контроле на 3,1%, но при этом использование энергии в данной группе было выше контрольного уровня на 2,1%, в связи с меньшим выделением энергии с помётом.
7. Включение в рацион цыплят-бройлеров 1 и 2 опытных групп исследуемых кормовых добавок способствовало увеличению использования азота птицей на 1,3 и 1,0%. Наилучшее использование данного элемента наблюдалось в 3 опытной группе, превысившее показатель контроля на 2,6%. Использование кальция и фосфора было самым высоким в 1 и 3 опытных группах: кальция на 8,51 и 20,3%, фосфора на 14,75 и 10,75% соответственно по отношению к контролю. Скармливание экспериментальных кормовых добавок не отразилось на химическом составе большеберцовой кости цыплят.
8. При введении комплексных препаратов на основе синбиотиков и фитобиотиков, а также фитобиотической микрокапсулированной добавки дополнительно к основному рациону цыплят-бройлеров, анализируемые морфологические показатели крови птиц не выходили за пределы физиологических норм, что свидетельствует об отсутствии отрицательного влияния добавок на организм птицы. При этом установлена тенденция повышения гемоглобина у птиц всех опытных групп, что свидетельствует об активизации окислительно-восстановительных процессов в организме под действием изучаемых кормовых средств. У бройлеров всех опытных групп (достоверно у птиц 2 опытной группы) отмечено снижение уровня агранулоцитов (лимфоцитов и моноцитов) и повышение гранулоцитов (псевдоэозинофилов и эозинофилов).
9. Проведенное биохимическое исследование крови позволило установить, что применение экспериментальных кормовых добавок при выращивании цыплят-бройлеров дополнительно к основному рациону не оказывает отрицательного влияния на обменные процессы в организме птиц. При этом приводит к улучшению усвоения белкового азота в организме, о чем свидетельствует снижение мочевой кислоты в сыворотке крови цыплят 1, 2 и 3 опытных групп на 26,45; 33,66 и 19,51% и подтверждается повышением использования азота корма (по результатам балансового опыта) и увеличением прироста живой массы. Кроме того, использование исследуемых кормовых средств сопровождается активизацией липидного обмена в организме цыплят, что характеризуется тенденцией снижения количества триглицеридов в сыворотке крови у птиц 1 и 2 опытных групп на 32,1 и 21,43 % и достоверным снижением у цыплят 3 опытной группы на 42,86%, (Р≤0,05), а также способствует снижению активности трансаминаз во 2 и 3 опытных группах, демонстрируя более высокую устойчивость внутренних органов, в частности печени и сердца, к неблагоприятным экзогенным и эндогенным воздействиям.
10. Бактерицидная активность лейкоцитов у цыплят 1 и 3 опытной группы была достоверно выше, чем у контрольных аналогов на 11,08 и 14,38, что говорит о стимулирующем влиянии применяемых препаратов Гербастор и Активо на неспецифическую резистентность организма цыплят-бройлеров, свидетельствуя о более высокой иммунологической реактивности.
11. Проведенное исследование микрофлоры слепых отростков кишечника цыплят-бройлеров свидетельствовало об отсутствии во всех образцах экспериментальных групп патогенных микроорганизмов и бактерий. Из потенциально-патогенной флоры установлено: наличие во всех группах одинакового количества протей (Proteus spp) — Proteus mirabilis; присутствие Staphylococcus Saprophyticus — при меньшем их количестве в образцах опытных групп; наличие Trichosporon asahii — с минимальным проявлением в образцах 3 опытной группы. В отношении нормальной флоры слепых отростков можно констатировать, что включение комплексных добавок на основе синбиотиков и фитобиотиков и фитобиотической добавки не повлияло на количественное содержание бифидобактерий и кишечной палочки (номофлор), при этом сопровождалось незначительным снижением количества лактобактерий в единичных образцах при включении ПроСтора и Активо, а также выраженным наличием энтерококков при использовании ГербаСтора на фоне их отсутствия в образцах контрольной и 2 опытной группы и единичным присутствием в 3 опытной группе.
12. Анализ процессов, зарегистрированных на препаратах гистологических срезов печени, поджелудочной железы, двенадцатиперстной кишки, слепой кишки, селезенки, тимуса и фабрициевой бурсы от 37 дневных цыплят-бройлеров контрольной и трех опытных групп показал благополучие подопытного поголовья по инфекционным и паразитарным заболеваниям, высокие показатели по клеточному и гуморальному иммунитету. Что касается обменных процессов, то наилучшие показатели были зарегистрированы во 2 опытной группе птиц, близкие к ним были показатели в 3 опытной группе. В 1 опытной группе наблюдались некоторые патологические процессы в печени в виде некроза и полиморфноклеточной инфильтрации, как очаговой, так и диффузной, на фоне зернистой дистрофии, характерной для гепатоза и гепатита, те же процессы отмечены и в контрольной группе цыплят-бройлеров. Секреторная активность поджелудочной железы была наиболее выраженной у представителей 2 опытной группы. Во всех группах птицы выявлены катаральные воспалительные процессы в кишечнике на стадии серозного и слизистого катара не переходящие в гнойный катар с сохранением функции пристеночного пищеварения. Лимфоидные органы В-системы иммунитета птиц – селезенка, лимфоидные фолликулы кишечника, фабрициева бурса, и Т-системы иммунитета — тимус, к 37 дню выращивания, то есть к концу технологического периода, претерпели некоторые инволютивные процессы, но находились на высоком функциональном уровне, при этом наилучшие результаты показали представители 2 опытной группы.
13. По данным научно-хозяйственного эксперимента установлено, что рентабельность производства мяса бройлеров в 1 и 2 опытных группах, при использовании кормовых добавок ГербаСтор и ПроСтор, превысила контрольный уровень на 2,3 и 2,0 %. Наибольшее превосходство по этому показателю над контрольным значением — на 4,5%, было получено в 3 опытной группе, получавшей дополнительно к основному рациону кормовой препарат Активо.
14. Применение кормовых добавок ГербаСтор и ПроСтор, включающих синбиотики и фитобиотики, и микрокапсулированной фитобиотической кормовой добавки Активо в технологии выращивания цыплят-бройлеров, исключающей использование кормовых антибиотиков, характеризуется выраженным биологическим и экономическим эффектом.

На основании проведенных исследований на яичной птице сделаны следующие выводы:

1. Включение исследуемых фитобиотических кормовых добавок Активо и Активо Ликвид в рацион кур-несушек не оказало отрицательного влияния на живую массу и однородность птицы, способствовало повышению сохранности поголовья кур на 0,26 %.
2. Сравнительный анализ состояния внутренних органов и гребней кур показал, что птицы обеих подопытных групп имели нормальное развитие и были физиологически готовы к полноценной яйцекладке. При этом, включение экспериментальных фитодобавок способствовало лучшему развитию печени и слепых отростков, о чем свидетельствует их достоверное превосходство по массе над контролем на 12,53 и 27,59% (Р≤0,05) в пределах нормативных значений. У опытных кур отмечена тенденция большей массы пищевода – на 19,8 % и более высоких значений длины кишечника и длины яйцевода – на 1,65 и 4,27%.
3. Оценка яичной продуктивности кур показала, что птица опытной группы на один день позже снесла первое яйцо, однако, на пик продуктивности она вышла на 17 дней раньше и он был выше контроля на 0,10 %. Количество яиц на среднюю и начальную несушку в опытной группе было ниже, чем в контроле на 0,93 и 0,45 % соответственно, что объясняется менее интенсивным разносом птицы. Расход корма на 1 голову в опытной группе был ниже, по сравнению с контрольным уровнем, на 0,42 %.
4. Морфологический анализ яиц показал, что яйца, снесенные курами опытной группы, отличались большей массой: в возрасте 24-х недель на 5,26 % (Р≤0,01), в 26-недельном возрасте – на 3,32 %, при этом прочность скорлупы превосходила контроль на 0,72 и 1,73 % в те же периоды проверки, что способствовало снижению количества яиц с поврежденной скорлупой (бой и насечка) на 0,05%.
5. По результатам биохимического анализа яиц установлено, что в желтке яиц опытных кур наблюдалось большее содержание каротиноидов и витамина В₂ в 24-недельном возрасте на 46,93 % (Р≤0,001) и 2,55 % соответственно, по сравнению с контролем.
6. Применение фитодобавок в технологии кормления птиц способствовало повышению переваримости сухого вещества, сырого жира и сырой клетчатки у особей опытной группы по сравнению с контролем на 2,30; 13,03 и 17,38 % соответственно.
7. Уровень обменной энергии в организме кур-несушек, получавших Активо и Активо Ликвид, был выше, чем у контрольных аналогов на 0,37 %.
8. Коэффициенты использования азота, кальция и фосфора у кур-несушек опытной группы превышали контрольное значение на 2,00; 10,13 и 0,06 %.
9. Показатели химического состава большеберцовой кости кур-несушек в 24-недельном возрасте показали, что содержание золы, кальция и фосфора в опытной группе было выше, по сравнению с контролем, на 0,18; 2,40 и 1,59 % соответственно.
10. Полученные данные морфологического анализа крови показали, что дополнительное включение в рацион кур-несушек фитобиотических добавок Активо и Активо Ликвид не оказало отрицательного влияния на организм птицы, способствуя при этом активизации окислительно-восстановительных процессов, о чем свидетельствует увеличение количества эритроцитов и гемоглобина – на 1,2 и 5,34%, и повышению защитных функций, естественной резистентности организма, что подтверждается умеренным возрастанием количества лейкоцитов – на 15,42%, достоверным повышением базофилов – на 1,8% (P≤0,05) и снижением скорости оседания эритроцитов – на 41,2% (Р≤0,05).
11. Фитобиотические добавки Активо и Активо Ликвид обладают стимулирующим действием на обменные процессы в организме кур-несушек. Об этом свидетельствует повышение интенсивности белкового обмена, выражающееся в возрастании уровня общего белка и количества альбуминов на 7,07 и 5,30 % (Р≤0,05) и снижении количества мочевой кислоты на 10,91 %. А также формирование катаболической направленности углеводного обмена, характеризующегося достоверным снижением уровня глюкозы в крови на 13,60 % (Р≤0,01), что вероятно обусловлено возрастанием энергетических потребностей организма птиц, в связи с более ранним их выходом, по сравнению с контрольными аналогами, на пик продуктивности и удержанием его на более высоком уровне.
12. Микробиологические исследования толстого отдела кишечника демонстрировали: отсутствие у кур обеих групп патогенных микроорганизмов и бактерий; меньшее содержание у опытных птиц условно-патогенной микрофлоры в виде стафилококков и грибковой флоры Candida sp.; снижение количества бифидобактерий и повышение содержания лактобактерий у представителей опытной группы, по сравнению с контролем; отсутствие в опытных образцах — E. coli гемолитических, а в контрольных образцах — лактострептококков и E.coli лактозонегативных.
13. По совокупности проанализированных гистологических изменений можно констатировать о благоприятном воздействии изучаемых фитобиотических кормовых добавок Активо и Активо Ликвид на состояние органов пищеварения и иммуногенеза кур-несушек в данный период технологического цикла. Это подтверждается менее выраженными патологическими изменениями в исследуемых органах, а, следовательно, усилением и сохранением их функциональной деятельности, что в свою очередь обусловило повышение жизнеспособности организма кур.
14. Использование Активо и Активо Ликвид в технологии кормления промышленной птицы яичного кросса по предлагаемой схеме является экономически целесообразным, позволяя повысить уровень рентабельности производства яиц в анализируемый учетный период (18-28 недель) на 0,19 %.

Предложение производству

На основании результатов проведенных исследований на мясной птице рекомендуем включать в комбикорм для цыплят-бройлеров с 5-го дня выращивания и до конца периода откорма:

— кормовую добавку на основе синбиотиков и фитобиотиков – ГербаСтор в количестве 0,5 г/кг комбикорма;

— кормовую добавку на основе синбиотиков и фитобиотиков – ПроСтор в количестве 0,5 г/кг комбикорма;

— фитобиотическую микрокапсулированную кормовую добавку Активо в количестве 0,15 г/кг комбикорма.

На основании результатов проведенных исследований на яичной птице рекомендуем включать в рацион промышленных кур-несушек фитобиотическую микрокапсулированную добавку Активо в количестве — 100 г/т комбикорма с 16-й по 21-ю недели жизни, в течение 42-х дней и выпаивать Активо Ликвид в количестве 500 мл/1000 л воды с 21-го недельного возраста, в течение 5 дней и с 24-х недельного возраста, в течение 5 дней.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

1. Фисинин В.И. Мировое и российское птицеводство: реалии и вызовы будущего: монография. – М.: Хлебпродинформ, 2019. – 470 с.
2. Трухачев В.И., Епимахова Е.Э., Злыднев Н.З. Обозначены векторы развития птицеводства // Птицеводство. — 2019. — № 2. — С.12-14.
3. Зыков С.А. Современные тенденции развития птицеводства // Эффективное животноводство. – 2019. — № 4. – С.51-54.
4. Буяров А.В. Состояние и приоритетные направления развития птицепродуктового подкомплекса в различных регионах России // Мировое и российское птицеводство: состояние, динамика развития, инновационные перспективы: материалы XX Международной конференции. — Сергиев Посад, 2020. — С.703-706.
5. Мельник В.А. Микроклимат и продуктивность птицы // Животноводство России. — 2014. — № 5. — С.13-15.
6. Фисинин В.И. Стратегические тренды развития мирового и отечественного птицеводства: состояние, вызовы, перспективы Мировые и российские тренды развития птицеводства: реалии и вызовы будущего: материалы XIX Международной конференции / Российское отделение Всемирной научной ассоциации по птицеводству (ВНАП); НП «Научный центр по птицеводству. – Сергиев Посад, 2018. – С. 9-48.
7. Сурай П.Ф., Фисинин В.И. Современные методы борьбы со стрессами в птицеводстве // Сельскохозяйственная биология. – 2012. — № 4. – С.3-13.
8. Рядчиков В.Г. Основы питания и кормления сельскохозяйственных животных: учебник. — Краснодар: Кубанский государственный аграрный университет, 2014. — 616 с.
9. Фисинин В.И., Егоров И.А., Драганов И.Ф. Кормление сельскохозяйственной птицы: учебник. — М.: ГЕОТАР-Медиа, 2011. — 344 с.
10. Хазиахметов Ф. С. Рациональное кормление животных: учебное пособие. — Санкт-Петербург: Лань, 2019. — 364 с.
11. Семенова Е.Ф., Веденеева А.С., Жужжалова Т.П. Скрининг антимикробной активности жидких экстрактов стевии Ребо (Stevia rebaudiana Bertoni) // Вестник Воронежского госуниверситета. Серия «Химия. Биология. Фармация». — 2010. — № 1. — С. 121-126.
12. Околелова Т. М., Мансуров Р.Ш., Папазян Т.Т., Петросян А.Б., Шабаев И.С. Препарат «Актиген» при выращивании бройлеров // Птицеводство. — 2012. — № 6. — С. 31–32.
13. Манукян В.А., Джавадов Э.Д., Дмитриева М.Е., Лаптев Г.Ю., Никонов И.Н., Новикова Н.И., Ильина Л.А. Применение ферментативного пробиотика в кормлении цыплят-бройлеров // Птица и птицепродукты. — 2013. — № 5. — С. 22-26.
14. Гуо С. С., Ма К., Гуо И.М. Влияние препарата «Актиген» на продуктивность цыплят-бройлеров, их иммунный ответ и микрофлору подвздошной кишки // Птица и птицепродукты. — 2013. — № 2. — С. 47–48.
15. Лобанок А. Г., Сапунова Л.И., Шарейко Н.А., Долженкова Е.А. Дрожжи как основа биологически активных кормовых добавок про- и пребиотического действия // Весці Нацыянальнай акадэміі навук Беларусі.Серыя біялагічных навук. — 2014. — № 1. — С. 17–22.
16. Отченашко В. У каждого подкислителя свои особенности // Животноводство России. — 2014. — № 11. — С.31-33.
17. Коптев В. Ю., Шкиль Н.А., Леонова М.А., Онищенко И.С., Балыбина Н.Ю., Бычков А.Л. Влияние кормового средства, содержащего маннано-лигосахариды, на уровень бактерионосительства микроорганизмов рода Salmonella и прирост живой массы сельскохозяйственной птицы // Достижения науки и техники АПК. – 2015. — Т. 29. — № 1. — С. 46–48.
18. Alagawany M., El-Hack M. A., Farag M. R., Tiwari R., Dhama K. Biological effects and modes of action of carvacrol in animal and poultry pro-duction and health-a review //Advances in Animal and Veterinary Sciences. — 2015.- Vol. 3.- №. 2s. — PP. 73-84.
19. Жученко Е.В., Семенова Е.Ф., Маркелова Н.Н., Шпичка А.И., Князькова А.А. Влияние эфирных масел на микроорганизмы различной таксономической принадлежности в сравнении с современными антибиотиками. Сообщение III. Действие масел лаванды, розового дерева, эвкалипта, пихты на некоторой грамотрицательной бактерии // Известия высших учебных заведений. Приволжский регион. Естественные науки. — 2015. — № 1 (9). — С. 30-41.
20. Атландерова К.Н. Растительные экстракты как альтернатива антибиотикам в кормлении сельскохозяйственных животных //Актуальные проблемы животноводства в условиях импортозамещения. — 2018. — С. 17-21.
21. Беляева С.Н., Концевая С.Ю., Коваленко А.М. Повышение неспецифических факторов иммунитета птиц // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. — 2019. — № 1. — С. 143-145.
22. Кишняйкина Е.А. Продуктивный и физиологический эффект биологически активных веществ в системах выращивания цыплят-бройлеров: дис. … канд. с.-х. наук: 06.02.10 / Е.А. Кишняйкина. — Новосибирск, 2019. — 145 с.
23. Лаптев Г.Ю., Ильина Л.А., Йылдырым Е.А., Филлипова В.А., Дубровин А.В., Новикова О.Б., Кочиш И.И. Фитобиотик ИНТЕБИО® на защите иммунитета птицы // Птицеводство. – 2019. — № 7-8. – С.25-30.
24. Мурленков Н.В. Экономический эффект от пробиотических культур штамма Bacillus в бройлерном птицеводстве // Сб. материалов Международной научно-практической конференции. — Омск, 2019. — С. 157-160.
25. Овчинников А.А., Овчинникова Л.Ю., Коновалов Д.А. Иммунный статус организма мясных кур при использовании пробиотиков в рационе // Птицеводство. – 2019. — № 5. – С.43-47.
26. Сурай П.Ф., Фисинин В.И., Кочиш И.И. От регуляции витагенов в оптимизации иммунного ответа: новые подходы к иммуннорегуляции в птицеводстве // Мировое и российское птицеводство: состояние, динамика развития, инновационные перспективы: материалы XX Международной конференции. — Сергиев Посад, 2020. — С.56-67.
27. Бохан П.Д., Карпенко Л.Ю., Бахта А.Н. Сравнительная оценка влияния на гематологический статус у цыплят-бройлеров применения симбиотиков и антибиотиков // Мировое и российское птицеводство: состояние, динамика развития, инновационные перспективы: материалы XX Международной конференции. Сергиев Посад, 2020. — С.173-175.
28. Goossens H., Ferech M., Vander Stichele R., Elseviers M. Outpatient antibiotic use in Europe and association with resistance: a cross-national database study (англ.) // The Lancet: journal. — Elsevier, 2005. — Vol. 365, no. 9459. — P. 579—587.
29. Ao, T. Exogenous enzymes and organic acids in the nutrition of broiler chicks: effects on growth performance and in vitro and in vivo digestion [Электронный ресурс] / Tuoying Ao // University of Kentucky Doctoral Dissertations, 2005. – 241 p. – URL: https://uknowledge. uky.edu/ gradschool _diss/241 (дата обращения: 30.11.2020).
30. Wright G. D. Antibiotic resistance in the environment: a link to the clinic? (англ.) // Current Opinion in Microbiology: journal. — Elsevier, 2010. — October (vol. 13, no. 5). — P. 589—594.
31. D’Costa, Vanessa; King, Christine; Kalan, Lindsay; Morar, Mariya; Sung, Wilson; Schwarz, Carsten; Froese, Duane; Zazula, Grant; Calmels, Fabrice; Debruyne, Regis; Golding, G. Brian; Poinar, Hendrik N.; Wright, Gerard D. Antibiotic resistance is ancient (англ.) // Nature. — 2011. — September (vol. 477, no. 7365). — P. 457—461.
32. Bodkin H. Brexit Britain should lead the way by banning mass antibiotic use in agriculture, says top doctors //The Telegraph. -2016.6.6. Clarke P. Farmers told to cut antibiotic use by one-fifth/Clarke P.//Farmers Weekly. — 2016. URL: https://www.telegraph.co.uk/(дата обращения 30.11.2020).
33. Фисинин В. И., Егоров И. А., Лаптев Г. Ю., Ленкова Т. Н., Никонов И. Н., Ильина Л. А., Манукян В. А., Грозина А.А., Егорова Т.А., Новикова Н.И., Йылдырым Е.А. Получение продукции птицеводства без антибиотиков с использованием перспективных программ кормления на основе пробиотических препаратов // Вопросы питания. — 2017. — № 6. — С.114-124.
34. Канардов П. Антибиотики в животноводстве. Запретить нельзя разрешить// Ценовик. — 2017. — № 9. — С.22.
35. Васильева О.А., Нуфер А.И., Шацких Е.В. Альтернативные пути замены кормовых антибиотиков // Эффективное животноводство. — 2019. — № 4. — С.13-15.
36. Шацких Е.В., Галиев Д.М., Нуфер А.И. Мясная продуктивность цыплят-бройлеров при замене кормовых антибиотиков в рационе на ростостимулирующие кормовые добавки. // Птица и птицепродукты. — 2019. — № 6. — С. 26-29.
37. Джанарсланов Р. Бройлер без антибиотиков-тренд будущего. URL: https://www.agroinvestor.ru/column/rizvan-dzhanarslanov/30096-broyler-bez-antibiotikov-trend-budushchego (дата обращения 29.04.2020).
38. Lillehoj, H., Liu, Y., Calsamiglia, S. et al. Phytochemicals as an alternative to antibiotics to stimulate growth and improve host health. URL: https://veterinaryresearch.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13567-018-0562-6#article-info (дата обращения 22.11.2019).
39. Мамкин А.Ю. Философия о глобальных проблемах современности. URL:https://www.sites.google.com/site/2015mamkin/home/ogse-01-osnovy-filosofii/20 (дата обращения 22.04.2020).
40. Омельченко Н.А., Пышманцева Н.А. Учены рекомендуют: взамен антибиотиков // Земля и жизнь. Российская аграрная газета, 2009. — №7 (12) URL: https://xn--80abhgo0bdpo5a.xn--p1ai/svinovodstvo/ bacell-monosporin-prolam-01 (дата обращения 29.04.2020).
41. Швыдков А. Н., Ланцева Н.Н., Рябуха Л.А. Физиологическое обоснование использования пробиотиков, симбиотиков и природных минералов в бройлерном птицеводстве Западной Сибири: монография. — Новосибирск: НГАУ, 2015. — 149 с. URL: https://e.lanbook.com/book/71646 (дата обращения: 25.11.2020).
42. Буяров В.С., Червонова И.В., Ярован Н.И., Учасов Д.С. Пробиотики и пребиотики в промышленном свиноводстве и птицеводстве: монография // Орловский государственный аграрный университет. — 2014. — С. 164-166.
43. Соколенко Г.Г., Лазарев С.В., Миньченко С.В. Пробиотики в рациональном кормлении животных // Технологии пищевой и перерабатывающей промышленности АПК — продукты здорового питания. — 2015. — № 1. — С. 72-78.
44. Шесточенко А. Профилактика инфекционных заболеваний молодняка. — М.: Колос, 1983. — 207 с.
45. Хорошевский М.А., Афанасьева А.И. Пробиотики в животноводстве // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. — 2003. — № 2 (10). — С. 290-292.
46. Шарипова А.Ф., Хазиев Д.Д. Влияние пробиотической добавки «Ветоспорин-Актив» на эффективность выращивания цыплят-бройлеров // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. — 2015. — Т. 221. — № 1. — С. 253-258.
47. Орлова Т.Н., Дорофеев Р.В. Пробиотики — перспектива животноводства / // Аграрная наука — сельскому хозяйству: сб. материалов XII Международной научно-практической конференции. Кн. 3. — Барнаул: Алтайский государственный аграрный университет, 2017. — С. 177-180.
48. Пышманцева Н.А., Чиков А.Е., Осепчук Д.В., Ковехова Н.П. Об эффективности максимально раннего применения пробиотиков у цыплят яичных пород // Проблемы биологии продуктивных животных. — Боровск. — 2011. — № 1. — С. 93-99.
49. Hung A.T., Lin S.Y., Yang T.Y., Chou C.K., Liu H.C., Lu J.J., Wang B., Chen S.Y., Lien T.F. Effects of Bacillus coagulans ATCC 7050 on growth performance, intestinal morphology, and microflora composition in broiler chickens // Animal production science — 2012. — V. 52 (9). — P. 874-879.
50. Hashemzadeh F., Rahimi S., Torshizi M.A., Masoudi A.A Effects of probiotics and antibiotic supplementation on serum biochemistry and intestinal microflora in broiler chicks / // Agriculture and crop sciences. — 2013. — №. 5 (20). — P. 2394-2398.
51. Темираев Р.Б., Гаппоева В., Гагкоева Н. Пробиотики и ферментные препараты в рационах цыплят // Птицеводство. — 2009. — № 4. — С. 20-21.
52. Темираев Р.Б., Гаппоева В.С., Олисаев С.В. Влияние пробиотика и ферментного препарата на продуктивность кур-несушек // Известия Горского государственного аграрного университета. — Владикавказ. — 2011. — Т. 48. — Ч. 1. — С. 111-114.
53. Салеева И.П., Иванов А.В., Павленко И.В. и др. Новые пробиотические комплексы (препараты) и их применение при выращивании бройлеров // Птицеводство. — № 12. — 2014. — С.29-33.
54. Сипайлова О.Ю., Нестеров Д.В., Шейда Е.В., Лебедев С.В. Иммуномодулирующие свойства кормовых добавок на основе Bacilus subtilis // Вестник мясного скотоводства. — 2014. — № 3 (86). — 2014. — С. 94-98.
55. Петраков Е.С., Овчарова А.Н. Переваримость корма у цыплят-бройлеров под влиянием пробиотических лактобацилл // Современное состояние животноводства: проблемы и пути их использования: материалы научно-практической конференции. — Саратов, 2018. — С. 143-144.
56. Степанова А.М., Неустроев М.П. Разработка и применение препарата из штаммов Bacillus subtilis в птицеводстве: монография. — Новосибирск, 2019. — 84 с.
57. Орлова Т.Н. Эффективность применения пробиотического препарата «Пропионовый» в рационах цыплят-бройлеров: автореф. дис. канд. с.-х. наук 06.02.08. — Барнаул, 2020. — 22 с.
58. Фисинин В.И., Егоров И.А., Лаптев Г.Ю. и др. Получение продукции птицеводства без антибиотиков с использованием перспективных программ кормления на основе пробиотических штаммов // Вопросы питания. — 2017. — Т. 89. — № 6. — С. 114 -124.
59. Маркин Ю., Нестеров Н. Разумная альтернатива антибиотикам пробиотики в рационах для птицы // Животноводство России. — 2018. -№ 2. — С. 8-11.
60. Морозова Е.С., Мурленков Н.В., Шуметов В.Г. Оптимизация дозировки пробиотика «olin» в рационе кормления цыплят-бройлеров по критериям качества полуфабриката // Международный студенческий научный вестник. — 2017. — № 1. — С. 30.
61. Червонова И.В. Эффективность применения спорообразующего пробиотика в технологии выращивания цыплят-бройлеров // Инновации в АПК: проблемы и перспективы. — 2017. — № 1. — С. 136-141.
62. Данилова А.А., Ратошный А.Н. Пробиотики в кормлении цыплят-бройлеров // Научное обеспечение агропромышленного комплекса. — 2018. — С. 288-291.
63. Здоровый кишечник – залог эффективности современного птицеводства // Птица и птицепродукты. – 2019. — № 3. – С.32-33.
64. Манукян В., Ленкова Т., Егоров И. Ферментативный пробиотик в кормлении бройлеров // Животноводство России. — 2018. — № 6. — С. 11-12.
65. Царук Л.Л. Пробиотик Лактисан в кормлении цыплят-бройлеров // Сельское хозяйство — проблемы и перспективы. – Гродно, 2019. — С. 266-273.
66. Гурциева М.С., Калоев Б.С. Применение ферментативного пробиотика в кормлении цыплят-бройлеров // Вестник научных трудов молодых учёных, аспирантов, магистрантов и студентов ФГБОУ ВО «Горский государственный аграрный университет». — 2018. — С. 250-252.
67. Курманаева В., Бушов А. Биопрепараты в рационах цыплят-бройлеров кросса «Смена-7″// Птицеводство. — 2012. — № 1. — С. 31-33.
68. Гиндуллин, А.И., Тремасов М.Я., Белецкий С.О. Пробиотики на основе Lactobacterium и Bacillus при Т- 2 токсикозе цыплят // Птица и птицепродукты. — 2014. — № 3. — С. 44-46.
69. Овчарова А.Н., Петраков Е.С. Физиологические показатели и продуктивность цыплят- бройлеров при использовании пробиотического препарата на основе бацилл // Проблемы биологии продуктивных животных. — 2018. — № 1. — С. 94-101.
70. Степанова А.М., Неустроев М.П. Разработка и применение препарата из штаммов Bacillus subtilis в птицеводстве: монография. — Новосибирск, 2019. — 84 с.
71. Хитрый Ф.Н., Прохоров О.Н. Применение пробиотика «Бацелл-М» при кормлении цыплят-бройлеров в условиях напольного содержания // Агропромышленному комплексу — новые идеи и решения: материалы XIX внутривузовской научно-практической конференции. — Кемерово: Кузбасская государственная сельскохозяйственная академия, 2020. — С. 143-146.
72. Шендеров Б.А. Пробиотики, пребиотики и синбиотики. Общие и избранные разделы проблемы // Пищевые ингредиенты. Сырье и добавки. — 2005. — № 2. — С. 23-26.
73. Windisch W., Schedle К., Plitzner C., Kroismayr A. Use of phytogenic products as feed additives for swine and poultry // J. anim. sci. — 2008. — Vol. 86. — E140-E148 (DOI: 10.2527/jas.2007-0459).
74. Collins D.M., Gibson G.R. Probiotics, prebiotics and synbiot-ics: Approaches for modulating the microbial ecology of the gut // American Journal of Clinical Nutrition. — 1999. — Vol. 69. — PP. 1052S-1057S.
75. Delaquis P.J., Stanich K., Girard B., Mazza G. Antimicrobial activity of individual and mixed fractions of dill, cilantro, coriander and eucalyptus essential oils // International Journal of Food Microbiology. — 2002. — 74. — РР. 101-109
76. Huyghebaert G., Ducatelle R. R., Immerseel F. An update on alternatives to antimicrobial growth promoters for broilers // Veterinary Journal. — 2001. — Vol. 187. — PP. 182-188.
77. Chen W.L., Liang J.B., Jahromi M.F., Abdullah N., Ho Y.W., Tu-farelli V. Enzyme treatment enhances release of prebiotic oligosaccharides from palm kernel expeller // BioResources. — 2015. — Vol. 10. — PP. 196-209.
78. Mountzouris K.C., Tsirtsikos P., Kalamara E., Nitsch S., Schatzmayr G., Fegeros K. Evaluation of the efficacy of a probiotic containing Lactobacillus, Bifidobacterium, Enterococcus and Pediococcus strains in promoting broiler performance and modulating cecal microflora composition and metabolic activities // Poultry Science. — 2007. — Vol. 86. — PP. 309-317.
79. Осепчук Д.В., Скворцова Л.Н., Пышманцева Н.А.и др. Пребиотик в кормлении цыплят-бройлеров // Сборник научных трудов Северо-Кавказского научно-исследовательского института животноводства. — 2013. — № 1. — С. 133-136.
80. Кочиш И.И., Мясникова О.В., Мартынов В.В., Смоленский В.И. Микрофлора кишечника кур и экспрессия связанных с иммунитетом генов под влиянием пробиотической и пребиотической кормовых добавок // Сельскохозяйственная биология. — 2020. — № 2. — С. 315-327.
81. Буряков Н.П., Бурякова М.А., Миронов М.М. Показатели обмена веществ и продуктивности цыплят-бройлеров при использовании в кормлении пребиотика «Сель Ист» // Российский ветеринарный журнал. — 2015. — № 1. — С.13-15.
82. Шацких Е.В., Нуфер А.И., Галиев Д.М. Эффективность выращивания цыплят-бройлеров при использовании в рационе полисахаридов клеточной стенки дрожжей взамен кормовых антибиотиков // Мировое и российское птицеводство: состояние, динамика развития, инновационные перспективы: материалы XX Международной конференции. Сергиев Посад, 2020. — С.368-371.
83. Кузьменко П.М. Синбиотик «Синвет» ‒ препарат нового поколения для повышения продуктивности цыплят-бройлеров // Актуальные проблемы интенсивного развития животноводства. – 2014. — № 2. – С. 46-48.
84. Юрина Н.А, Омельченко Н.А., Осепчук Д.В. Результаты производственной проверки изучения синбиотической кормовой добавки в рационах для мясных цыплят // Сборник научных трудов Краснодарского научного центра по зоотехнии и ветеринарии. – 2016. — № 5. – С. 87-88.
85. Буяров В.С., Метасова С.Ю. Эффективность применения синбиотика «ПроСтор» в птицеводстве // Ученые записки Казанского университета. Серия Естественные науки. – 2019. – С. 408-421.
86. Чиков А.Е., Юрина Н.А., Омельченко Н.А. Применение многофункциональной кормовой добавки в мясном птицеводстве // Сборник научных трудов Краснодарского научного центра по зоотехнии и ветеринарии. – 2014. — № 5. – С.7-10.
87. Осепчук Д.В., Юрина Н.А., Омельченко Н.А. Изучение синбиотической кормовой добавки в рационах для мясных цыплят // Сельскохозяйственный журнал. – 2016. — № 3. – С.125-127.
88. Фисинин В.И., Ушаков А.С., Дускаев Г.К., Казачкова Н.М., Нуржанов Б.С., и др. Изменение иммунологических и продуктивных показателей у цыплят-бройлеров под влиянием биологически активных веществ из экстракта коры дуба // Сельскохозяйственная биология. — 2018. — Т. 53. — № 2. — С. 385-392.
89. Козырев С.Г., Гусова Б.Г., Уртаева А.А., Сеидов И.С., Джагаев А.А. Использование фитобиотиков при выращивании бройлеров // Достижения науки и техники АПК. – 2018. – Т.32. № 7. – С.56-58.
90. Ахмедханова Р.Р., Алиева С.М., Гитинов М.М. Целесообразность применения водорослей в птицеводстве // Научный фактор интенсификации и повышения конкурентоспособности отраслей АПК: матер. Междунар. науч.-практ. конф., посвященной 80-летию факультета биотехнологии Дагестанского государственного аграрного университета имени М.М. Джамбулатова (Махачкала, 17-18 мая 2017 г.). — Махачкала, 2017. — С. 21-25.
91. Буяров В.С., Червонова И.В., Меднова В.В., Ильичева И.Н. Эффективность применения фитобиотиков в птицеводстве (обзор) // Вестник аграрной науки. – 2020. — № 3. – С.44-60.
92. Singh, Jaswinder, A. P. S. Sethi, S.S. Sikka Effect of Cinnamon (Cinnamomum cassia) Powder as a Phytobiotic Growth Promoter in Commercial Broiler Chickens // Animal nutrition and feed technology. — 2014. — Vol. 14. — Issue 3. — PP. 471-479 (DOI: 10.5958/0974-181X.2014.01349.3).
93. Ткаченко К.Г., Казаринова Н.В., Музыченко Л.М., Шургая А.М., Павлова О.В., Сафонова Н.Г. Санационные свойства эфирных масел некоторых видов растений // Растительные ресурсы. — 1999. — Т. 35, вып. 3. — С. 11-24.
94. Семенова Е.Ф., Веденеева А.С., Жужжалова Т.П. Скрининг антимикробной активности жидких экстрактов стевии Ребо (Stevia rebaudiana Bertoni) // Вестник Воронежского госуниверситета. Серия «Химия. Биология. Фармация». — 2010. — № 1. — С. 121-126.
95. Жученко Е.В., Семенова Е.Ф., Маркелова Н.Н., Шпичка А.И., Князькова А.А. Влияние эфирных масел на микроорганизмы различной таксономической принадлежности в сравнении с современными антибиотиками. Сообщение III. Действие масел лаванды, розового дерева, эвкалипта, пихты, на некоторой грамотрицательной бактерии // Известия высших учебных заведений. Приволжский регион. Естественные науки. – 2015. — № 1 (9). — С. 30-41.
96. Основы ветеринарной санитарии: учебное пособие / Н. В. Сахно, В. С. Буяров, О. В. Тимохин, Ю. А. Ватников. — Санкт-Петербург: Лань, 2017. — 172 с. — ISBN 978-5-8114-2407-8. — Текст: электронный // Лань: электронно-библиотечная система. — URL: https://e.lanbook.com/ book/ 91284 (дата обращения: 25.11.2020). — Режим доступа: для авториз. пользователей.
97. Багно О.А., Прохоров О.Н., Шевченко С.А. и др. Фитобиотики в кормлении сельскохозяйственных животных // Сельскохозяйственная биология. — 2018. — № 4. — С. 687-697.
98. Шмакова С.В., Ланцева Н.Н. Перспектива использования фитобиотика в рационах цыплят-бройлеров // Основы и перспективы органических биотехнологий. — 2020. — № 1. — С. 48-51.
99. Ланцева Н.Н., Мартыщенко А.Е., Швыдков А.Н. Влияние функциональных свойств пробиотиков и фитобиотиков на показатели продуктивности цыплят-бройлеров // Фундаментальные исследования. 2015. — № 2. – С. 1417-1423.
100. Лапкина Е.З., Тирранен Л.С. Использование травяной добавки на основе растений крапивы двудомной (Urtica dioica L.) и звездчатки средней (Stellaria media L.) в кормлении японских перепелов // Вестник КрасГАУ. — 2017. — № 2(125). — С.39-44.
101. Кишняйкина Е.А., Жучаев К.В. Влияние экстракта чабреца на продуктивные качества и сохранность цыплят-бройлеров кросса ISA F-15 // Вестник НГАУ. – 218. — № 4(49). – С.74-80.
102. Сахно О.Н., Буяров В.С. Эффективность промышленного выращивания цыплят-бройлеров с применением препаратов «Алекс» и «Эмицидин» // Аграрный вестник Верхневолжья. – 2018. — № 3. – С. 114-123.
103. Игнатович Л.С. Влияние применения компонентных кормовых добавок, изготовленных с применением травяной муки из тысячелистника обыкновенного, на продуктивность кур-несушек, качество производимой продукции (яиц) и конверсию корма // Дальневосточный аграрный вестник. — 2017. -№ 2(42). — С. 75-81.
104. Шацких Е.В., Нуфер А.И. Продуктивные качества цыплят-бройлеров при использовании в рационе фитобиотической кормовой добавки // Птица и Птицепродукты. – 2020. — № 5. – С.39-41.
105. Пат. 2477614 Российская Федерация, МПК51, А23К 1/16. Cпособ получения комплексной биологически активной кормовой добавки для сельскохозяйственных животных, птицы и рыбы с пробиотиками и лекарственными травами / В.Г. Правдин, Л.З. Кравцова, Н.А. Ушакова; заявитель и патентообладатель Общество с ограниченной ответственностью «Научно-технический центр биологических технологий в сельском хозяйстве» (RU). — № 2011128157/13, заявл. 11.07.2011; опуб. 20.03.2013, Бюл., № 8. – 10 с.
106. Справочник по выращиванию бройлеров ROSS, 2018. – 140 c. Режим доступа: https://ru.aviagen.com/assets/Tech_Center/BB_ Foreign_ Language _Docs/RUS_TechDocs/Ross-BroilerHandbook2018-RU.pdf (дата обращения: 30.11.2020).
107. Методика проведения научных и производственных исследований по кормлению сельскохозяйственной птицы. Молекулярно-генетические методы определения микрофлоры кишечника /И.А. Егоров, В.А. Манукян, Т.Н. Ленкова и др. – Сергиев Посад, 2013. – 51 с.
108. Engels C., Schieber A., Gänzle M.G. Inhibitory spectra and modes of antimicrobial action of gallotannins from mango kernels (Mangifera indica L.). Appl. Environ. Microb., 2011, 77(7): 2215-2223 (doi: 10.1128/AEM.02521-10).
109. Растопшина Л.В. Способы повышения продуктивности цыплят-бройлеров / Л.В. Растопшина // Сибирская наука — проблемы и перспективы технологии производства и переработки продукции животноводства. Сб. научных трудов I региональной юбилейной научно-практической конференции, посвященной 70-летию биолого-технологического (зооинженерного) факультета ФГБОУ ВПО АГАУ. – Барнаул, 2013. – С. 123-127.
110. Пышкина И.В. Оценка мясной продуктивности цыплят — бройлеров кросса в условиях ОАО Птицефабрика «Васильевская» Пензенской области / И.В. Пышкина // Сборник научный статей Инновационные идеи молодых исследователей для агропромышленного комплекса России. – Пенза, 2015. – С. 184-185.
111. Марьина О.Н. Продуктивность цыплят-бройлеров в зависимости от используемой кормовой программы / О.Н. Марьина // Сборник научных статей по материалам Всероссийской научно- практической интернет-конференции. – Ставрополь, 2016. – С. 92-101.
112. Столяров В.П., Сотникова Т.А. Продуктивность цыплят-бройлеров при разных уровнях обменной энергии в комбикорме //ИЦРОН. Новые тенденции развития сельскохозяйственных наук. Секция 19. Частная зоотехния. 2017. Режим доступа: https://izron.ru/articles/novye-tendentsii-razvitiya-selskokhozyaystvennykh-nauk-sbornik-nauchnykh-trudov-po-itogam-mezhdunaro/sektsiya-19-chastnaya-zootekhniya-tekhnologiya-proizvodstva-produktov-zhivotnovodstva-spetsialnost-0/produktivnost-tsyplyat-broylerov-pri-raznykh-urovnyakh-obmennoy-energii-v-kombikorme/ (дата обращения: 01.10.2020).
113. Торшков А.А. Изменение биохимических показателей крови бройлеров при использовании арабиногалактана // Фундаментальные исследования. – 2011. – № 9-3. – С. 583-587.
114. Голиков А.Н., Базанова Н.У., Кожебеков З.К. [и др.]. Физиология сельскохозяйственных животных. — М.: Агропромиздат, 1991. – 432 с.
115. Казарян Р.В., Лукьяненко М.В., Бородихин А.С., Семененко М.П., Мирошниченко П.В. Исследование биохимических показателей сыворотки крови цыплят-бройлеров, выращенных с применением комплексной кормовой добавки // Новые технологии. — 2018. — № 4. — С. 209-215.
116. Практикум по иммунологии / Под ред. И.А. Кондратьевой, В.Д. Самуилова. — М.: Изд-во МГУ, 2001. — 224 с.
117. Зайчик А.Ш., Чурилов Л.П. Механизмы развития болезней и синдромов. — СПб.: ЭЛБИ-СПб., 2002. — 507 с.
118. Конопатов Ю.В., Макеева Е.Е. Основы иммунитета и кормление сельскохозяйственной птицы. — СПб: Библиотечка практика, 2002. -120 с.
119. Болотников И.А. Гематология птиц. — Л.: Наука. Ленингр. отд-ние, 1980. — 116 с.
120. Шендеров Б.А. Медицинская микробная экология и функциональное питание // Микрофлора человека и животных и ее функции. – Т.1. – М.: ГРАНТЬ, 1998. – 288 с.
121. Бахарева О.П., Саражакова И.М. Состав микрофлоры слепых отростков кишечника цыплят в возрасте от 1 до 63 суток // Вестник КрасГАУ. — 2009. — № 3. – С.129-135.
122. Повозников Н.Г., Пустовая Н.В. Продуктивность и биохимический состав крови кур. 2013. — С. 206-219. Режим доступа: https://cyberleninka.ru /article/n/produktivnost-i-biohimicheskiy-sostav-krovi-kur/viewer (дата обращения 30.11.2020).

Реферат

Отчет 288 стр., 61 рисунок, 50 таблиц

Ключевые слова: молочное скотоводство, высокопродуктивные генетические ресурсы животных, крупный рогатый скот, экстерьерно-конституциональный статус, учет молочной продуктивности, качество молока.

Целью исследований: разработка инновационной технологии направленного интенсивного выращивания ремонтного молодняка, что позволит проводить раннее осеменение телок в 14-15 месяцев с последующим вводом в стадо в возрасте 24-26-месячном возрасте, что будет способствовать повышению эффективности производства молока и улучшению параметров качества молока-сырья до уровня мировых стандартов.

Задачи исследований:

1. Разработка инновационного подхода при подборе родительских пар в молочном скотоводстве, предусматривающего использование быков-производителей с препотентными способностями по улучшению желательных экстерьерно-конституциональных и технологических признаков, направленных на консолидацию стада по хозяйственно-полезным признакам.
2. Разработка методологии направленного выращивания ремонтных телок, предусматривающей формирование желательных фенотипических и хозяйственно-полезных признаков и пригодных для раннего осеменения в 14-15-месячном возрасте.

Объект исследований:в соответствии с Техническим заданием, работы выполнялись по результатам собственных зоотехнических исследований, обработки зооветеринарной документации ведущих племенных хозяйств по разведению молочного скота голштинской и черно-пестрой пород, относящихся к основным молочным породам Юга России:

— ООО «Агрофирма «Село Ворошилова» (новое название — ООО «Агрофирма Село им. Г.В.Кайшева») Предгорного муниципального района, Ставропольского края: 2748 голов голштинской породы, в том числе 1138 коров, средняя молочная продуктивность коров составляет 9653 кг молока от коровы за год, жир 3,85%, белок 3,26%;

— СПК колхоз-племзавод «Казьминский» Кочубеевского района Ставропольского края: 2283 голов черно-пестрой породы, в том числе 850 коров, средняя молочная продуктивность коров составляет 8050 кг молока от коровы за год, жир 3,86%, белок 3,10%.

Введение

В связи с реализацией в 2019 году подпрограммы «Социально-экономического развития Ставропольского края на 2016-2025 годы», в с. Калиновское Александровского района Ставропольского края был реализован проект «Модернизация животноводческого комплекса молочного направления на 1700 коров». Общая стоимость реализации проекта составила порядка 1 млрд. руб., инвестиционная фаза проекта завершена в июле 2019 года. Во вновь организованном ООО «Агроальянс Инвест» создано высокоэффективное предприятие по производству молока, в селекционно-племенном разведении используется высокопродуктивный импортный скот джерсейской породы. При разработке инновационной технологии направленного интенсивного выращивания ремонтного молодняка также представлены результаты выращивания ремонтного молодняка джерсейской породы на основе применения современных технологических производственных решений по управлению молочным стадом.

Молочное скотоводство относится к одной из базовых подотраслей сельского хозяйства, продукция которого обеспечивает национальную продовольственную безопасность. Из перечня основных видов продуктов питания, молочное сырье остается дефицитным, что не позволяет в необходимой мере обеспечить молоком и молочной продукцией население большинства регионов России. По данным Национального союза производителей молока СОЮЗМОЛОКО (Всероссийский справочник Молочная отрасль 2020) [8], объем внутреннего рынка товарного молока в России в 2019 году составил 22,5 млн. т., что в пересчете на среднедушевой показатель обозначает потребление 236-237 кг/чел./год. С учетом рекомендаций Минздрава РФ, где указана среднедушевая норма потребления молока и молочных продуктов на 1 человека — 325 кг [22], дефицит молока в России, таким образом составляет почти 100 кг на 1 человека в год или 30,7% от потребности. То есть, уровень обеспеченности населения РФ молоком и молочной продукцией находится на уровне 70%.

В соответствии с Доктриной продовольственной безопасности Российской Федерации (2020) [5], до 2030 года должно быть обеспечено производство молока на внутреннем рынке России не менее 90% от потребности, однако, как показано выше, этот критериальный показатель не выполнен, что свидетельствует о неэффективности разработанных и реализованных мероприятий по обеспечению продовольственной безопасности страны. В новой Доктрине продовольственной безопасности Российской Федерации (2020), указывается на необходимость достижения самообеспеченности страны за счет развития племенного животноводства, «в том числе за счет внедрения конкурентоспособных отечественных технологий, основанных на новейших достижениях науки» [5].

Одной из причин недостаточно эффективного развития отрасли молочного скотоводства является отсутствие современных инновационных технологий, позволяющих обеспечить высокую сохранность здоровья молочного скота в соотношении с реализацией генетически обусловленного потенциала молочной продуктивности животных, которая в ведущих молочных стадах России и Северного Кавказа превышает 8-10 тыс. кг молока на 1 корову в год[6].

В природных условиях, биологически обусловленная молочная продуктивность коровы должна покрывать лишь потребности теленка для его полноценного развития. Как показывает практика, этот порог составляет не более 1,5-2 тыс. кг молока, при этом у коров в достаточной степени происходит восполнение всех потребностей в питательных веществах, в том числе и при обычном пастбищном содержании животных. Такие молочные стада были характерны для отрасли в ХХ веке, когда основную массу молочного скота представляли низкопродуктивные животные черно-пестрой и красной степной пород и их помесей. При интенсификации производства молока за счет применения высокопродуктивных голштинизированных генотипов возникли проблемы, связанные с недостатками в системе кормления и содержания животных, в том числе и ремонтного молодняка.

Дисбалансы в системе кормления ремонтных телок в период 2-4-месячного возраста, обусловленные физиологически обусловленными проблемами при формировании сложного 4-камерного желудка, как правило, приводили к нарушению ритмичности роста и развития молодняка, что в свою очередь, снижало эффективность использования генетически обусловленного потенциала молочной продуктивности животных.Вследствие этого, дальнейшая интенсификация отрасли молочного скотоводства возможна при условии разработки инновационной технологии направленного интенсивного выращивания ремонтного молодняка, что позволит проводить раннее осеменение телок в 14-15 месяцев с последующим вводом в стадо в возрасте 24-26-месячном возрасте, что будет способствовать повышению эффективности производства молока и улучшению параметров качества молока [4, 6, 7].

1.Методические основы проведения работ по сбору учетных данных для характеристики высокопродуктивных генетических ресурсов в молочном скотоводстве региона

Основные глобальные тенденции в развитии животноводства и молочного скотоводства в мире и регионах.Животноводство, как и растениеводство, является важной отраслью сельского хозяйства, которая обеспечивает население планеты такими основными продуктами питания, как мясо, молоко, животный жир. Эта отрасль является сырьевой основой для пищевой перерабатывающей отрасли, куда поставляется мясо и молоко, для легкой промышленности, куда поставляются – кожа, шерсть.

Домашние, а в последствие и сельскохозяйственные животные издавна сопровождают человека и использовались им в качестве тягловой силы – это крупный рогатый скот, лошади. Продукция животноводства поставляет сырье для получения натуральных лекарственных средств – это сыворотки молока и крови, гормоны. Зачастую, в современных сельскохозяйственных предприятиях животноводство, как и растениеводство, представлены одновременно. Продукция растениеводства (сено, силос, зеленая масса) и зерновые отходы используются в качестве корма для животных, а отходы животноводства, в виде натурального или переработанного органического удобрения (переработка навоза в биогазовых установках) эффективно повышают плодородие почвы.

Отрасль животноводства, как и подотрасль молочное скотоводство, в XXI веке переживает стремительные изменения. По данным ФАО ООН (Продовольственная и сельскохозяйственная организации ООН), в наиболее динамично развивающихся странах бурно растущий спрос на продукты питания животного происхождения приводит к значительному увеличению поголовья скота благодаря применению важных технологических инноваций и структурным изменениям в секторе. Удовлетворение такого подъема в спросе идет главным образом за счет коммерческого животноводства и связанной с ним продовольственной цепи.  В то же время миллионы жителей аграрных районов продолжают содержать домашний скот в традиционных животноводческих системах, которые позволяют им сохранить средства к существованию и обеспечить продовольственную безопасность домохозяйства [17].

На долю животноводства приходится около 40% совокупной величины объема производства в сельском хозяйстве по стоимости; животноводство обеспечивает средствами к существованию почти 1,3 млрд. населения. Сектор животноводства – одно из наиболее стремительно развивающихся направлений в экономике сельского хозяйства. С ростом и преобразованиями в секторе открываются возможности для сельскохозяйственного развития, сокращения нищеты и укрепления продовольственной безопасности, однако стремительные темпы изменений создают опасность маргинализации мелких хозяйств; для обеспечения устойчивости необходимы меры в отношении системных рисков, влияющих на природные ресурсы и здоровье человека.

Во многих развивающихся странах содержание домашнего скота представляет собой многофункциональный вид деятельности.  Помимо своей прямой роли – обеспечения продовольствием и получения дохода – домашний скот является ценным активом, который служит для накопления богатства, выступает в качестве залога при займах и важнейшей гарантии выживания во времена кризиса.

Животноводство является крупнейшим в мире потребителем земельных ресурсов: земли для выпаса и угодья под кормовыми культурами составляют почти 80 % всех сельскохозяйственных земель. Кормовые культуры выращиваются на одной трети всех пахотных угодий, а общая площадь земли под пастбищами соответствует почти 26% свободной ото льда земной поверхности.

На современном этапе формирования глобальных продовольственных ресурсов, как важнейшего условия обеспечения глобальной продовольственной безопасности, отмечены следующие тенденции развития мирового продовольственного рынка:

— преобразование структуры и качественных характеристик производимого товара;

— повышение технологического уровня производственных процессов в сырьевых и перерабатывающих отраслях;

— изменение приоритета затрат в ресурсном секторе;

— изменение нормативно-технологической и организационной структур рынка;

— появление на международных рынках принципиально разных направлений: генетически модифицированных и органических продуктов, производство которых обуславливает развитие различных технологий;

— изменения географических направлений и объемов экспорта и импорта некоторых продовольственных продуктов;

— повышение экологических требований к производственным процессам;

— увеличение влияния потребительских настроений на формирование торговой и ценовой политики государств и транснациональных компаний.

Анализируя современное состояние мирового агропромышленного комплекса, следует отметить, что в 2015 г. на сельское хозяйство приходилось 10% всемирного ВВП, или 7,8 трлн. долларов США.

Инвестиции в агротехнологии составляют всего 3,5% от размеров рынка сельского хозяйства, или 4,6 млрд. долл., что почти в два раза больше, чем в 2014 г. Модернизация оборудования и научно-технический прогресс в аграрной сфере, рост числа предприятий сферы услуг (торговля, транспорт, общественное питание) являются факторами, увеличивающими долю АПК в мировом ВВП[17, 20].

Проблемы обеспечения продовольственной безопасности в контексте глобального партнерства в XXI веке приобретают особое значение. Поскольку глобальная продовольственная безопасность оказывается со-зависимой от обеспечения национальной безопасности каждого конкретного государства. При этом национальная продовольственная безопасность является фактором сохранения целостности и суверенитета государства, важнейшей составляющей демографической политики и необходимым условием для реализации стратегических национальных приоритетов, повышения качества жизни граждан и гарантирования высоких стандартов жизнеобеспечения.

Таблица 1 — Динамика численности населения, мирового производства и спроса на молочные продукты, млн. т

Современные исследования показывают, что ситуация в мировой продовольственной сфере характеризуется повышением напряженности вследствие усиления влияния следующих факторов:

— сохранение достаточно высокого уровня цен на продукты питания, в результате чего около 2 млрд. беднейшего населения планеты тратят от 50 до 70% своих доходов на еду;

— ускорение неудовлетворенного роста спроса на продукты питания в динамично развивающихся регионах Азии;

— увеличение площадей под посев технических культур, предназначенных для производства биотоплива, что означает сокращение посевов продовольственных культур.

Существующая напряженная ситуация не дает оснований прогнозировать высокие темпы прироста продовольственных и сырьевых ресурсов в мире, несмотря на ускорение технологического прогресса в последние десятилетия и появление инновационных современных сельскохозяйственных технологий.

В таких сложных условиях продовольственная безопасность любого государства может быть гарантирована, в основном, за счет динамичного развитии собственного производства сельскохозяйственного сырья и продовольствия, обеспечения устойчивости развития сельских территорий и искоренении бедности как социального явления.

При этом необходимо отметить, что для обеспечения мировой продовольственной безопасности необходимо преодолеть ряд угроз:

— макроэкономические угрозы, связанные с сохранением кризисной ситуации и ее последствиями для мировой экономики в целом;

— технологические угрозы, вызванные огромной дифференциацией между странами по уровню материально-технической базы и технологической оснащенности сельского хозяйства в основных регионах – продуцентах продовольствия;

— социальные угрозы, определяющиеся в значительной мере нарастанием социальной напряженности в государствах, испытывающих дефицит продовольствия;

— политические угрозы, вызываемые усилением давления на политику государств в зависимости от складывающейся ситуации на продовольственном рынке;

— природные и агроэкологические угрозы, возникающие из-за деградации качественного состояния сельскохозяйственных угодий.

Кроме того, серьезным вызовом для обеспечения продовольственной безопасности окажут изменение климата, что скажется на доходах производителей в развивающихся странах, и растущий дефицит пресной воды. Глобальная продовольственная безопасность в условиях климатических изменений (рис. 1) подвергнется угрозе из-за негативного влияния климатического фактора [24].

Рис. 1. Изменение реального дохода в сельском хозяйстве к 2030 г. в связи с потеплением климата, %

1 – мир в целом; 2 – Европа и Центральная Азия; 3 – Восточная Азия и Океания; 4 – Латинская Америка и Карибские острова; 5 – Северная Африка/Ближний Восток; 6 – Африка южнее Сахары; 7 – Южная Азия

Особенно выделяются такие регионы, как Африка и Южная Азия, в которых сокращение реальных доходов, относительно снижения этого показателя в целом по миру, может быть выше в 4–10 раз. Проведение мониторинга продовольственной безопасности необходимо для оценки и предотвращения существующих и прогнозируемых рисков и угроз. При этом, необходимо обращать внимание на такие показатели, как уровень продовольственной независимости, уровень переходящих запасов, физическая и экономическая доступность продовольствия и его качество.

Процесс обеспечения как глобальной, так и региональной, а также национальной безопасности каждой отдельно взятой страны формируется под влиянием баланса между двумя наиболее важными направлениями экономической политики: либерализации экономических отношений и поддержки национальных товаропроизводителей.

В условиях агроклиматических, техногенных и политических рисков государству необходимо обеспечивать прежде всего, достаточный уровень национальной продовольственной независимости. Для этого необходимо осваивать новые технологии производства и оказывать государственную поддержку сельскохозяйственным товаропроизводителям.

Дифференциация уровней поддержки различных государств крайне велика, что в определенной мере отражает как объективные различия в условиях сельскохозяйственного производства, так и финансовые возможности каждой из стран (рис. 2).

Рис. 2. Уровень государственной поддержки сельского хозяйства в различных странах, % к стоимости реализованной продукции в 2005–2014 гг.

Так, если в Новой Зеландии уровень государственной поддержки производителей составляет от стоимости реализованной продукции менее 1%, в Австралии – 4%, в России – 11%, то в Европейском союзе – около 23%, в Японии – 47%, а в Норвегии – 61%.

Уровень поддержки сельского хозяйства стал одним из наиболее серьезных противоречий в государствах – членах ВТО, внутри которой группа развивающихся стран в целях продвижения продукции национальных сельскохозяйственных товаропроизводителей настаивает на кардинальном сокращении уровня их поддержки в развитых странах (в 1,5–2 раза).

Это противоречие имеет двойственный характер. С одной стороны, развивающиеся страны требуют уменьшения поддержки сельхозпроизводителей определенных культур в развитых странах, поскольку стремятся выйти на их рынки со своей продукцией и за счет этого сократить сельскую безработицу и поддержать национальное сельское хозяйство. С другой стороны, снижение поддержки в развитых странах приведет к сокращению производства и запасов продовольственных ресурсов на мировом рынке, что, в свою очередь, будет провоцировать повышение цен на них. Совершенно очевидно, что по истечении семнадцати лет существования соглашения о сельском хозяйстве в рамках ВТО для создания бесконфликтной системы регулирования поддержки сельхозпроизводителей в государствах, находящихся в различных природно-климатических условиях, следовало бы рассмотреть возможность перехода на нормативную базу установления уровней такой поддержки.

Состояние мирового продовольственного рынка во многом определяется существенными колебаниями цен на основные виды сельскохозяйственной продукции и продовольствие в целом. В связи с этим, на наш взгляд, целесообразно расширить исследования в области функционирования продовольственного рынка, формирования цен и поддержки сельского хозяйства как на национальном, так и на мировом уровне. В настоящее время общепризнаны преимущества повышения уровня обеспечения продовольственной безопасности в формате коллективной продовольственной безопасности. Примером такого отношения является осуществление единой аграрной политики в Европейском союзе.

Особенности участия в обеспечении коллективной продовольственной безопасности международных организаций демонстрируют нам ФАО, Всемирный банк, МВФ, ВТО и ОЭСР, а также международные и региональные форумы – Азиатско-Тихоокеанское экономическое сообщество (АТЭС) и БРИКС. Что касается глобальных тенденций последнего времени, то они заключаются в переходе от прямых поставок продовольственной помощи к развитию агропродовольственных систем в государствах, испытывающих дефицит продовольствия.

В условиях современной международной финансово-экономической ситуации особую значимость приобретает партнерство стран БРИКС (Бразилия, Россия, Индия, Китай, ЮАР). Согласно экспертным оценкам, в ближайшие несколько лет именно экономикам этих стран предстоит обеспечить позитивное воздействие на динамику развития мирового продовольственного рынка.

Для решения проблемы повышения продовольственной безопасности в рамках глобального партнерства, на наш взгляд, в перечень основных положений для заключительного документа настоящей встречи можно было бы предложить:

– углубление координации мирового сообщества в области продовольственной безопасности на базе профильных институтов ООН;

– обеспечение роста продуктивности сельскохозяйственных угодий в странах с дефицитом продовольствия, включая программы инновационного развития, мелиоративного строительства и переподготовки кадров;

По данным Всемирного Банка, в настоящее время в мире почти 1 миллиард человек по-прежнему живет менее, чем на 1,25 долл. США в день, при этом в течение последних 25 лет показатели крайней бедности в мире снизились почти на две трети. Поэтому глобальная задача – покончить с крайней бедностью в мире к 2030 году является трудновыполнимой, хотя и вполне возможной[19, 21, 24].

Структура животноводства и основные тенденции в производстве продукции животноводства в странах ЕАЭС.Евразийский экономический союз объединяет такие государства, как Армения, Беларусь, Казахстан, Кыргызстан и Россию, с суммарным населением 183,8 млн человек, с общей площадью более 20 млн квадратных километров, что составляет около 14% от площади все земной суши.

Таблица 2 — Удельный вес земель сельскохозяйственного назначения в общей земельной площади (в процентах, на начало года)

Удельный вес земель сельскохозяйственного назначения в общей земельной площади государств ЕАЭС в период 2013-2017 гг. увеличился на 3,2%, что свидетельствует о возрастании роли сельскохозяйственного производства и своевременном проведении рекреационных работ по восстановлению плодородия пашни (табл. 2).

Тенденции в динамике объема производства продукции сельского хозяйства в государствах ЕАЭС в период 2011-2018 гг. имеют разнонаправленный характер в разных странах (табл. 3), с общей тенденцией снижения в пределах 6,05-22,5%, что может объясняться инфляционными процессами вследствие девальвации национальных валют в указанном периоде. Причем, наименьшее снижение отмечено в республике Беларусь (6,05%), экспорт сельскохозяйственной продукции которой в значительной степени ориентирован на страны ЕАЭС, в том числе в Россию – 44-46%.

Таблица 3 — Объем производства продукции сельского хозяйства

(в текущих ценах; миллионов долларов США¹)

1. Показатель рассчитан по курсам валют национальных (центральных) банков государств – членов ЕАЭС за год: по Беларуси – по средневзвешенному курсу белорусского рубля к доллару США, по Армении, Казахстану, Кыргызстану и России – по средним курсам национальных валют к доллару США.
2. Данные рассчитаны в соответствии с новой «Методикой расчета валового выпуска продукции (услуг) сельского, лесного и рыбного хозяйства», утвержденной 9 ноября 2015 года №175.
3. Сельское хозяйство, лесное хозяйство и рыболовство.
4. Пересчитанные данные с учетом итогов Всероссийской сельскохозяйственной переписи 2016 года

В странах ЕАЭС наблюдаются разнонаправленные тенденции по динамике поголовья сельскохозяйственных животных (табл. 4). Поголовье крупного рогатого скота, в целом по евразийскому союзу снизилось на 1,8%, причем это снижение обусловлено снижением поголовья в РФ на 8,4%, поскольку во всех остальных странах наблюдается рост поголовья крупного рогатого скота в пределах 3,3-17,6%.Динамика поголовья коров имеет аналогичную тенденцию, в целом по ЕАЭС снижение составило 1,01%, причем снижение поголовья коров наблюдалось в РФ и в Армении в пределах 2,1-10,1%, а в остальных государствах прирост поголовья коров составил 1,5-18,2%.

Рис. 3. Распределение объема производства продукции сельского хозяйства по государствам – членам ЕАЭС (в процентах к итогу – 2018 г.)

Таблица 4 — Поголовье скота в государствах-странах ЕАЭС

(в хозяйствах всех категорий, на начало года, тысяч голов)

Анализ динамики поголовья сельскохозяйственных животных совпадает с основными выводами, сделанными в Докладе Евразийской экономической комиссии «Показатели достижения целей в области устойчивого развития в регионе евразийского экономического союза» (2017), где указано, что в рамках ЕАЭС реализуется согласованная и скоординированная агропромышленная политика, целью которой является эффективная реализация ресурсного потенциала государств – членов Союза для оптимизации объемов производства конкурентоспособной сельскохозяйственной продукции и продовольствия, удовлетворения потребностей общего аграрного рынка, а также наращивания экспорта сельскохозяйственной продукции и продовольствия.

ЕАЭС осуществляет международное сотрудничество с правительствами третьих государств, региональными интеграционными объединениями и международными организациями в целях развития торгово-экономического сотрудничества государств-членов с третьими странами, диверсификации и инновационного развития их экономик, повышения объемов и улучшения структуры торговли и инвестиций. Взаимодействие осуществляется в разных форматах: от меморандумов о взаимопонимании до соглашений о создании зоны свободной торговли. С 2012 г. государства-члены участвуют в зоне свободной торговли СНГ.

Производство мяса, или скота и птицы на убой по государствам ЕАЭС в период 2011-2018 гг имеет устойчивую тенденцию к росту как в целом по организации: 27,0%, так и по отдельным государствам: 14,0-33,3%.

Динамика производства молока имеет разнонаправленные тенденции, так если в целом по ЕАЭС наблюдается увеличение на 1,3% валового производства молока, причем, такая же тенденция сохраняется и по Армении, Беларуси, Казахстану и Кыргызстану, где этот показатель составил 7,2-14,6%, то по России было отмечено снижение валового производства молока на 3,2% [21, 24].

Таблица 5 — Производство продукции животноводства в государствах-странах ЕАЭС

(в хозяйствах всех категорий)

Анализ производства мяса на душу населения (рис. 3) показывает, что с учетом медицинских норм (72 кг на человека в год – Приказ Минздрава РФ №614 от 19.08.2016), только в России и Беларуси можно констатировать, что производство может удовлетворить потребности населения. По остальным государствам, Армении, Казахстану, Кыргызстану – этот показатель не выполняется, что свидетельствует о необходимость увеличивать собственное производство мяса в этих странах.

Анализ уровня производства молока на душу населения по государствам ЕАЭС (рис. 4) показывает, что только в республике Беларусь наблюдается соответствие этого показателя медицинским нормам (325 кг на человека в год), что подчеркивает острую необходимость развивать молочное скотоводства в Армении, Казахстане, Кыргызстане и в России.

Рис. 3. Производство скота и птицы на душу населения по государствам – членам ЕАЭС (в процентах к итогу – 2018 г.)

Рис. 4. Производство молока на душу населения по государствам – членам ЕАЭС (в процентах к итогу – 2018 г.)

Рис. 5. Потребление молока на душу населения по некоторым развитым государствам мира, кг на 1 человека в год

Причем, с учетом товарности молока в этих странах в пределах 50-70%, то есть молока, которое поступает на перерабатывающие предприятия, реальное потребление молока в этих государствах на душу населения может быть еще ниже. Анализ уровня потребления молока на душу населения, по данным IFCN (2015) показывает (рис. 6), что крупнейшие страны мира, Китай и Индия, испытывают дефицит в покрытии потребности населения по потреблению молока, причем, этот же источник показывает потребление молока на душу населения в РФ на уровне 140 кг (2015 г), что подчеркивает необходимость развития национального молочного скотоводства.

Анализ характера развития торговых взаимоотношений государств ЕАЭС (рис. 6) показывает, что только у республики Беларусь около половины всего товарооборота приходится на страны евразийского союза, у России этот показатель наименьший среди стран ЕАЭС и составляет 8,3%, что подчеркивает хорошо развитые векторы внешней торговли [[21] .

Рис. 6. Распределение общих объемов внешней торговли товарами по направлениям торговли в 2018 году государствами ЕАЭС, (в % к итогу)

В рамках выполнения научно-исследовательских проектов, особо значимых для АПК России в 2015-2017 гг. по направлению обеспечения импортозамещения в животноводстве (генетический материал), в Ставропольском государственном аграрном университете была разработана региональная модель формирования и управления высокопродуктивными генетическими ресурсами животноводства (на примере Ставропольского края) предусматривающая создание центра управления высокопродуктивными генетическими ресурсами животноводства со структурой: контроль-ассистентская и эксперт-бонитерская службы, референс-лаборатория по оценке качества молока и лаборатория генетического контроля [10].

Рис. 7. Доение коров в доильном зале «Карусель»

Рис. 8. Система группового содержания коров в условиях промышленной технологии производства молока

Таблица 6 — Параметры качества молока с учетом системы доения коров

Проведение анализов качества индивидуальных проб сырого молока в Лаборатории селекционного контроля качества молока ФГБОУ ВО Ставропольский ГАУ, номер госрегистрации №262704801000 (табл. 6) позволило установить влияние системы доения коров при промышленном производстве молока в племенных хозяйствах Ставропольского края. Результаты исследования показали, что молоко наилучшего качества, т.е. с наименьшим содержанием соматических клеток, было получено при доении коров голштинской породы в специализированном доильном зале – 256 тыс. кл/см³. При линейной системе доения, также в условиях промышленной технологии производства молока, было получено молоко с несколько более высокими параметрами по содержанию соматических клеток, хотя в целом, эти показатели соответствовали нормативным требованиям.

Инновационная система управления молочным стадом была разработана с учетом рекомендаций Международного комитета регистрации животных (ICAR) и была апробирована на национальном и международном уровнях. Внедрение этой методологии в национальном молочном скотоводстве позволит, по предварительным оценкам, сформировать весомый экспортный потенциал при условии выхода на международный рынок торговли генетическими ресурсами (табл. 7), который может составлять 14,6 млрд. руб. или 225 млн $.

В существующих условиях, РФ является крупнейшим импортером зарубежных генетических ресурсов, что приносит прибыль транснациональным компаниям США и Европы по продаже генетических ресурсов. Для выхода на международный рынок торговли генетическими ресурсами необходимо внедрить в национальном молочном скотоводстве систему управления молочным стадом, с учетом рекомендаций ICAR и получить подтверждение достоверности проведения учетных данных путем получения соответствующих Сертификатов ICAR (всего – 17 видов сертификатов качества).

Таблица 7 — Экспортный потенциал молочного скотоводства РФ при выходе на международный рынок торговли генетическими ресурсами

Опыт прибалтийских республик – Литвы, Латвии и Эстонии показывает, что внедрение рекомендаций ICARи получение сертификатов качества происходит, при условии активной работы по внедрению инновационной системы, на протяжении 10-15 лет. При этом, по итогам выполнения работ, в этих странах были достигнуты впечатляющие успехи по развитию молочного скотоводства, и до 2015 года, эти страны с успехом поставляли высококачественное молоко на рынок РФ, при том, что продуктивность молочных стад в этих странах увеличилась на 25-28%.

Развитие современного молочного скотоводствав ведущих индустриально развитых странах основывается на применении различных национальных систем управления высокопродуктивными генетическими ресурсами молочного скота, которые обобщены рекомендациями Международного комитета регистрации животных (ICAR). Основные элементы современной системы управления стадом включают в себя уникальную идентификацию животных, унифицированный учет продуктивных и молочных качеств животных, проведение регулярной индивидуальной оценки качества молока у коров, проведение ДНК-мониторинга на предмет оценки распространения генетических аномалий, проведение оценку экстерьерно-конституциональных особенностей строения телосложения у коров, обязательную практику проведения определенных технологических операций при производстве молока[7].

По результатам выполнения указанного комплекса работ формируется достоверная информационная база учетных данных о продуктивности животных. Полученные результатыиспользуются для разработки оптимальной селекционно-технологической модели развития племенного молочного стада, внедрение разработанной системы управления молочным стадом позволяет достичь желательных параметров молочной продуктивности и высокого качества молока-сырья.

Практика ведения молочного скотоводства в индустриально развитых и аграрных странах показывает, что внедрение апробированных рекомендаций по оптимизации селекционно-технологических элементов при промышленном производстве молока будет способствовать созданию высокопродуктивного стада молочного стада,повышать культуру производства и улучшать параметры качества молока, а также способствовать обеспечению стабильного производства молока [6, 10].

Рис. 9. Увеличение молочной продуктивности коров в странах Прибалтики, после вступления в ICAR

Международный комитет регистрации животных регулярно публикует результаты национальной оценки молочной продуктивности в государствах-членах ICAR. Проведение анализа динамики молочной продуктивности коров стран-членов на протяжение периода их членства показывает убедительные позитивные результаты.

Например, за период 2001-2017 гг. у государств Австрия, Бельгия, Дания, Канада, Чехия и Эстония увеличение молочной продуктивности, в среднем на 1 корову составило 21,43-43,75%. Так, если в 2001 году годовой удой на 1 молочную корову в этих странах составлял 5152 – 7200 кг молока, то в 2017 г. этот показатель уже находился в пределах 6865-9800 кг молока (рис. 9).

С учетом национальных особенностей, учет продуктивности молочных коров проводится методами АТ(независимый учет, проводится специалистами регионального центра отдельно в утреннее или вечернее доение) и В (учет проводится в непосредственно хозяйстве, например, в автоматическом режиме согласно соответствующего программного обеспечения). Стоимость годового учета молочной продуктивности коров в разных странах варьирует и может оцениваться как в денежном выражении ( евро, доллар) или ы литрах молока. Например, в Австрии по методу АТ стоимость учета составляет на 1 корову в год около 40 евро, методом АТ охвачено около половины подконтрольного поголовья коров, в Бельгии стоимость учета по методу А4 и А6 – 118-134 литра молока, в Канаде стоимость учета по методу А4 составляет 52,8 канадских доллара, в по методу В стоимость гораздо меньше – в пределах 20,9 канадских доллара.

В Чехии стоимость годового учета на 1 корову по методу А4 составляет 49 евро, а по методу АТ – 43 евро. В Дании стоимость годового учета молочной продуктивности 1 коровы по методу А4 составляет 65 евро.

Принципы оплаты за проведение учета носят национальный характернапример, если в Аргентине учет по методам А4, А6 и АТ полностью (100%) оплачивает производитель, то в Бельгии учет по методам А4 и А6 в пределах 70% оплачивает производитель молока; в Канаде учет методу А4 и А6 в размере 88% оплачивается производителем; в Чехии учет молочной продуктивности коров по методу А4 в размере 88% и по методу АТ в размере 100% оплачивается производителем. В Дании учет молочной продуктивности коров по методам А4 и В полностью в 100% размере оплачивает производитель молока [7].

Таким образом, результаты мониторинга состояния независимого учета молочной продуктивности и порядка их оплаты в странах-членах ICAR показывают, в на национальном уровне применяются рычаги стимулирования повышения прозрачности и достоверности результатов учетных данных, что позитивно влияет на развитие молочного скотоводства, увеличение молочной продуктивности и качества молокау коров.

Для выхода на международный рынок торговли генетическими ресурсами, в соответствии с методологией ICAR, необходимо подтвердить достоверность получения учетных данных, что сопровождается выдачей сертификатов качества, которые дают право на проведение торговли генетическими материалами, носят национальный характер и поэтому не могут быть выданы отдельному региону, области или сельскохозяйственному предприятию. При этом, как правило, практикуется проведение аудиторских проверок на протяжении трех лет для подтверждения права участника международной торговли, причем существует жесткая международная конкуренция на рынке генетических ресурсов.

Таблица 8 – Длительность лактации у крупного рогатого скота в некоторых странах-членах ICAR(2017 г.)

Рис. 9. Длительность лактации у основных молочных пород крупного рогатого скота некоторых стран-членов ICAR

Таблица 9 – Длительность лактации у основных молочных пород крупного рогатого скота некоторых стран-членов ICAR

2017-2018 гг.

Вследствие этого, внедрение рекомендаций ICAR возможно только на национальном уровне, причем на основе изменения государственного законодательства, и в первую очередь, с целью обеспечения безопасности и повышения качества продукции животноводства молочного сырья.

Для укрепления имиджа РФ как страны с высокой культурой ведения животноводства необходимо проводитьвнедрение рекомендаций международных организаций ICAR иInterbull в практику отечественного животноводства, что будет способствовать повышению достоверности учета, увеличению индивидуальных продуктивных качеств животных и валового производства молока.

Результаты оценки параметров молочной продуктивности в некоторых государствах-членах ICAR показывают, что при достаточно высоких показателях надоев на 1 корову, в среднем 6861-10106 кг молока и, соответственно, различном уровне менеджмента молочного стада, наблюдается также и варьирование длительности лактации, в среднем на 1 корову, дни лактации составляют 298-369.

При этом, следует отметить высокий уровень менеджмента молочного стада в Канаде, где при продолжительности лактационного периода в 305 дней, уровень молочной продуктивности отмечен, как наиболее высокий показатель среди рассматриваемых государств – 10528 кг молока на 1 корову в год. Анализ результатов учета параметров молочной продуктивности некоторых стран-членов ICAR показывает (рис. 9, табл. 9), что среди основных молочных пород крупного рогатого скота встречаются такие породы, как Айрширская, Швицкая, Гернси, Голштинская, Джерсейская, Пинцгау, Монбельярдская, Симментальская, Шортгорнская, Тирольская[7]. Наибольшая молочная продуктивность отмечена у коров голштинской породы, а наименьшая – у коров джерсейской и тирольской пород.

Продолжительность лактационного периода, в среднем по странам варьирует в интервале 294-387 дней, причем наибольшая продолжительность лактации, как правило, у коров голштинской породы.

В то же время, в Канаде все молочные породы имеют стандартную продолжительность лактационного периода – 305 дней, что подчеркивает высокий уровень ведения животноводства в этой стране.

Показатели качества молока у коров основных молочных пород разных стран-членов ICAR варьирует, что связано с различными условиями кормления и содержания животных, при этом, можно отметить, что наибольший показатель жира и белка в молоке отмечен у коров джерсейской породы, соответственно, 5,1% и 3,85%. Наименьшие параметры жира и белка отмечены у коров голштинской породы, что компенсируется высокими показателями надоев молока.

Рис. 10. Выход молочного жира за период стандартной лактации (305 дн.) у коров основных молочных пород Канады

Анализ выхода молочного жира у основных молочных пород крупного рогатого скота Канады (рис. 10) показывает, что несмотря на наибольшую концентрацию молочного жира в молоке у коров джерсейской породы, с учетом надоя молока, наибольший выход отмечен у коров голштинской породы – 426 кг, что на 13-39% больше по отношению к аналогичному показателю у коров других молочных пород. Наименьшие показатели выхода молочного жира отмечены у крупного рогатого скота пород Гернси и Шортгорн.

Анализ выхода молочного белка у основных молочных пород крупного рогатого скота Канады (рис. 11) показывает, что аналогично с предыдущим графиком, наибольший выход белка за период стандартной лактации (305 дней) отмечен у коров голштинской породы, у которых этот показатель

Рис. 11. Выход молочного белка за период стандартной лактации (305 дн.) у коров основных молочных пород Канады

составил 348 кг, что на 10,92-37,01% больше по сравнению с другими молочными породами.

Известно, что молочная продуктивность коров регулируется множеством генов и является полигенным признаком, поскольку формирование лактации осуществляется при воздействии целого комплекса различных генов. Практикой установлено, что на параметры молочной продуктивности оказывают влияние и условия кормления и содержания, которые называются также паратипическими факторами.Проведение анализа о влиянии продолжительности лактации на показатели хозяйственно-полезных признаков у новотельных коров, а также по итогам 1 лактации позволяет выделить наиболее перспективных особей, а также провести выбраковку низкопродуктивных животных.

Как показывает практика проведения селекционно-племенной работы, коровы или телки, которые оплодотворились в первую или вторую охоты, чаще всего имеют укороченную лактацию. Причина такого факта имеет объяснение в анализе гормональной регуляции процесса размножения у млекопитающих.

Таблица 10 – Параметры молочной продуктивности первотелок черно-пестрой породы ленинградского типа с различным периодом лактации

Во время имплантации яйцеклетки и беременности, прогестерон уменьшает иммунную реакцию коровы, чтобы позволить организму принять эмбрион.Прогестерон стабильно оказывает статическое воздействие на сократительную функцию гладкой мускулатуры матки и ингибирует лактацию во время беременности. Поэтому, одним из гормональных сигналов для начала процесса выработки молока после растела является падение уровня прогестерона.Таким образом,часто от коров, оплодотворенных в первую или вторую охоты, недополучают молоко, поскольку они рано запускаются и не успевают полностью реализовать свой генетический потенциал молочной продуктивности. Удлиненная лактация также нежелательна с точки зрения организации воспроизводства стада, поскольку у таких коров будет более длительным межотельный период, и соответственно, будет недополучен теленок.

Анализ результатов изучения показателей молочной продуктивности у первотелок черно-пестрой породы ленинградского типа (201 голова), принадлежащих ЗАО племзавод «Ленинский путь» Волосовского района Ленинградской области показал, что 47 первотелок, или 23% от всего поголовья имели укороченную лактацию, что, соответственно, объясняет их более низкие, по сравнению с другими группами, параметры молочной продуктивности. У основной части животных (111 голов, или 55%) продолжительность лактации составила 301-350 дней. У первотелок, которые имели продолжительность лактации 351-401 дней и более, что составляло 22% поголовья, показатели молочной продуктивности на протяжении 305 дней лактации были максимальными, в тоже время, длительная лактация, снижает экономические показатели их использования.

Анализ динамики массовой доли жира и белка в молоке показал, что они незначительно изменялись с увеличением длительности лактации. Соответственно, изменялся выход молочного жира и белка, а также коэффициент молочности изменялись пропорционально изменению надоя.

Для эффективного производства молока, на основании проведенных исследований, авторами сделан вывод о необходимости поддержания оптимальной по продолжительности лактация у первотелок. Поскольку как укороченная так и удлиненная лактация имеет свои негативные последствия, отображающиеся в показателях воспроизводства стада и уровне производства молока. При продуктивности коров 8,0-9,0 тыс. кг молока за период стандартной лактации (305 дн.), рекомендовано поддерживать продолжительность лактации не более 350-360 дней. В тоже время, при уровне суточныхнадоев молока у коров в пределах 60-80 кг, необходимо разрабатывать индивидуальный подход к таким животным [11].

Рис. 12. Молочная продуктивность первотелок черно-пестрой породы ленинградского типа с учетом длительности лактации

1.1 Методика учета надоев молока у подконтрольного поголовья молочных коров

В Ставропольском государственном аграрном университете, по результатам собственных исследований в рамках выполнения научно-исследовательской работы по мониторингу качества сырого молока в племенных хозяйствах разработана Методика проведения учета уровня молочной продуктивности крупного рогатого скота с учетом требований Международного комитета регистрации животных (ICAR), которая предусматривает проведение учета молочной продуктивности крупного рогатого скота с участием специалистов контроль-ассистентской службы в составе Лаборатории селекционного контроля качества молока.

Работы выполняются на основании Приказа Минсельхоза России №25 от 1 февраля 2011 г. «Правила ведения учета в племенном скотоводстве молочного и молочно-мясного направлений продуктивности» [3] и с учетом рекомендаций ICAR (InternationalCommitteeforAnimalRecording, 2014) [7].

При проведении контрольного доения учитываются следующие показатели: дата проведения контрольного доения, являющаяся датой составления соответствующего акта; кличка; идентификационный номер животного; разовый удой за доение; качество молока. При определении интенсивности молокоотдачи учитываются следующие показатели: дата определения интенсивности молокоотдачи, являющаяся датой составления соответствующего акта; кличка, идентификационный номер животного; номер текущей лактации; разовый удой за доение; затраты времени на выдаивание аппаратом за доение; марка аппарата машинного доения.

Учет уровня продуктивности и качества молока за лактацию или определенный период лактации каждой коровы, производится путем обобщения результатов проводимых контрольных доек в установленном порядке, согласно Порядку и условиям проведения бонитировки племенного крупного рогатого скота молочного и молочно-мясного направлений продуктивности.

Контрольная дойка проводится одновременно у всех животных, содержащихся в одном помещении, за исключением сухостойных коров и новотельных коров до вечера 6 дня после отела.

Молочная продуктивность за лактацию не рассчитывается при следующих условиях:

— пропуск трех контрольных доек в течении лактационного периода;

— первая контрольная дойка проводилась позднее 35 дней после отела;

— между двумя смежными контрольными доениями прошло более 35 суток.

Для определения количества надоенного молока от коровы используются технические средства — молокомеры, а также электронные автоматические приборы. Все технические средства подвергаются в установленном порядке контролю на точность показаний организациями Госстандарта России не реже одного раза в год. Количество молока определяется с точностью до 0,1 кг. Удой за контрольный период рассчитывается с точностью до 1 кг.

Уровень содержания жира, белка, соматических клеток, а при необходимости и других компонентов в молоке подконтрольных коров, определяется путем исследования специально отобранных проб молока согласно действующим нормативам и методикам в лаборатории.

Для отбора пробы молока используются мерные стаканчики и стаканчики для транспортировки проб молока, имеющие номера.

Отбор пробы молока и ее консервация проводится в следующем порядке:

— перед началом контрольной дойки в мерные стаканчики (их готовят и номеруют по числу коров) добавляют консервирующее вещество, допущенное к использованию действующими нормативами, плотно закрывают крышками и устанавливают в специальный штатив, который в свою очередь маркируется кодом субъекта племенного животноводства и кодом транспортного ящика;

— после окончания дойки коровы измеряется разовый удой, и часть его при тщательном перемешивании переливается и специальную емкость;

— проба отбирается пропорционально каждому надою в течение контрольной дойки с помощью выше указанных технических средств.

Для консервации используется дихромат калия 0,5-1, на 1 л. или специализированные консерванты широкого спектра действия Microtabc. Анализаторы должны быть откалиброваны с учетом влияния используемого консерванта.Интерференция консерванта на влияет на соматические клетки, и минимальна для инфракрасных анализаторов. Одна таблетка консерванта Microtabc весит около 18мг. и содержит 8мг бронопола и 0,3 мг натамицина с нейтральным наполнителем. Одна таблетка используется для образца объемом 20-40 мл.

При учете молочной продуктивности используются автоматические счетчики молока трех типов:Waikato,DeLaval MM6 и УЗМ-1А, из которых первые две модели утверждены ICAR.

Порядок учета надоя и отбора проб счетчиком УЗМ-1А

Индивидуальный счетчик молока УЗМ-1A предназначен для измерения количества молока на доильных установках при зоотехническом контроле удоя коров и отбора проб молока для определения его качества при температуре окружающего воздуха от +5° до +40°C.

Подключить устройство к доильному аппарату и молокопровод согласно эксплуатационной документации доильной установки.

По окончании доения каждой коровы молоко из камеры II необходимо удалить. Для этого открыть клапан 14 (рис.13). Определить количество молока.

Показания устройства отсчитываются по рискам шкалы мензуры, напротив которых находится уровень молока (без учета пены). Шкале мензуры градуирована в килограммах. Одно деление шкалы мензуры соответствует 100 г молока, прошедшего через устройство.

Поддерживая устройство рукой, рывком вынуть мензуру из гнезда, установить пустую и приступить к доению следующей коровы.

Для взятия проб молока при контроле его качества оператор машинного доения мензуру передает специалисту регионального центра.

Рис. 13. Общий вид и разрез УЗМ-1А.

I – приемная камера; II – отмерная камера; Б – суженное отверстие; В – трубка отсоса воздуха; Г – канавка; Д – трубка отвода молока; Ж – отверстие и седло поплавка; И – патрубок выхода молока; К – отверстие пуска воздуха; Л — калиброванное отверстие; Р – патрубок входа молока; Т – трубка ввода молока в мензуру;

1 – дуга или скоба (условно повернут на 60°); 2 – клапан; 3 – вкладыш; 4 – колпачок; 5 — колпачок; 6 – разделитель; 7 – прокладка; 8 – пробка; 9 – фиксатор; 10 –колпачок; 11 – скоба; 12 – мензура; 13 – колпак; 14 – клапан; 15 – камера; 16 – прокладка; 17 – фильтр; 18 – корпус; 19 – угольник

Лаборанту перед взятием проб следует выполнить следующее:

-перемешать молоко в цензуре при помощи пипетки, поднимая ее верх и опуская вниз не менее трех раз;

-взять пробу молока пипеткой, погружая пипетку в молоко с такой скоростью, чтобы уровень молока в пипетки и в мензуре все время был одинаков;

-вылить оставшееся после взятия пробы молоко в приготовленную заранее емкость.

Ручную и циркуляционную промывку устройства производить согласно иструкции.

После промывки устройство готово к использованию.

Порядок учета надоя и отбора проб счетчиком DeLaval MM6

	Счетчик DeLaval MM6 (рис.14) представляет собой прибор для измерения надоя молока. Помимо количественного измерения надоя он позволяет получить репрезентативную пробу для последующего анализа. Отбираемая проба характеризуется пропорциональностью состава. Диапазон измерений: 0 — 37 кг.
Рис. 14. Счетчик молока DeLaval MM6

Точность: согласно стандарту ICAR (± 200 г в диапазоне до 10 кг, ± 2 % свыше 10 кг). Расход: 0 — 12 л/мин (стандарт ICAR). Проба для анализа: приблизительно 15 г/кг.Подключение шлангов производится согласно инструкции по эксплуатации.

Счётчик должен размещаться как можно ближе к молокопроводу.

Шланги от коллектора доильной установки к счётчику и от счётчика к молокопроводу должны иметь минимальную длину во избежание ошибок в измерениях, обусловленных прогибом.

Счётчик комплектуется либо крюком для подвешивания, либо креплением для установки в доильном зале.

При учете молока и отборе проб для анализа необходимо подвесить счётчик над трубопроводом. Убедится, что счётчик находится в положении, максимально близком к вертикальному.

Если MM6 предполагается использовать вместе с устройством автоматического снятия подвесной части доильной установки, счётчик следует подсоединить на участке между датчиком потока и молокопроводом.

1. Во время дойки клапан должен находиться в положении MILK. По окончании каждой дойки отключите вакуум от коллектора и снимите коллектор.

2. Записать надой молока (убедитесь, что отсчёт ведётся по нижней границе мениска, т.е. пена в верхней части не учитывается).

3. Для отбора пробы перевести клапан в положение STIR/SAMPLE. Контролируемый допуск воздуха позволит равномерно перемешивать пробу. Если сборный резервуар наполнен молоком менее чем наполовину, перемешивайте содержимое в течение 5 секунд. Если резервуар наполнен более чем наполовину — в течение 10 секунд.

4. Под клапан поместить ёмкость для отбора пробы и надавливая ёмкостью или большим пальцем на стержень для впуска воздуха вверх, пока не будет отобран необходимый объём.

5. Для удаления остатков молока из резервуара переводим клапан в положение WASH/EMPTY. Надавливаем на стержень для впуска воздуха вверх, чтобы опустошить резервуар. Прочищаем клапан, снова надавив на стержень и убедившись, что всё молоко из полости клапана удалено.

6. Для промывки счётчика MM6 необходимо, чтобы клапан находился в положении WASH/EMPTY.

7. Заранее готовим счётчик к следующей дойке, всегда возвращая клапан в положение MILK.\

Порядок учета надоя и отбора проб счетчиком Waikato

Молокомер Waikato — устройство для определения надоя и отбор проб для анализа, которое подключается к длинному молочному шлангу между каждой единицей доения и молочным трубопроводом.

Молокомер сохраняет известную пропорцию надоя в калиброванной колбе, из которой может быть прочитан совокупный надой коров, или колба может быть удалена для взвешивания.С каждым тактом доильного аппарата струя молока и воздуха проходит через прибор. Эта смесь вращается спиралевидными лопастям и равномерно распределяется перед тем, как попасть в саму измерительную часть прибора. В измерительную колбу поступает проба порциями по 2,5%.

Рис. 15. Молокомер Waikato

При учете надоя следует сделать следующие манипуляции:

1. Установить Прибор согласно инструкции по эксплуатации;

2. Закрыть кран колбы, повернув в горизонтальное положение. Убедиться, что он надежно закрыт;

3. Доильный стакан присоединить к доильному аппарату и доить как обычно.

4. Прочитать уровень молока на колбе, с учетом измерения в кг.

5. Открыть кран колбы и опорожнить колбу.

6. При необходимости повторить измерение.

Результаты учета при проведении контрольной дойки в ручном режиме фиксируются в журнале и вносятся в базу данных, при снятии показателей в доильном зале (метод В) – передаются в режиме он-лайн в базу данных.

Характеристика лактации у коров. Под термином «лактация» (от лат. Lactatio) – подразумевается процесс образования, накопления и выведения молока из молочных желез у коровы. Лактационным периодом называется период времени от отела до запуска коров, длительность лактационного периода у коров может составлять от 240 до 305 дней и выше. При этом, стандартным периодом лактации у коров принято считать 305 дней. При продлении лактационного периода после 305 дней, такую лактацию называют удлиненной, если же лактационный период длится менее 305 дней, то лактация считается укороченной. Однако, для стандартизации учета молочной продуктивности коров лактация должна быть не менее 240 дней.

В соответствии с Порядком условий проведения бонитировки племенного крупного рогатого скота молочного и мясного направлений продуктивности, утвержденных Приказом Минсельхоза РФ от 28 октября 2010 г. N 379, оценка коров по молочной продуктивности проводится по удою (кг), содержанию жира и белка в молоке (%) за весь период лактации; 305 дней лактации; за укороченную законченную лактацию, продолжительностью не менее 240 дней.

Изображение в графическом виде лактационной кривой позволяет наглядно показать характер распределения надоенного молока по отдельным периодам лактации (рис. 16). Лактационная кривая строится по результатам проведения контрольных доений, как правило, ежедекадно. В товарных хозяйствах допускается проведение контрольных доений 1 раз в месяц. На реализацию генетически обусловленного потенциала молочной продуктивности оказывает влияние тип нервной системы у животных, физиологическое состояние коров, а также условия кормления и содержания животных.

Рис. 16. Основные типы лактации у коров

По характеру лактационной кривой коров, условно, тип лактации разделяют на 4 основных вида: I тип — высокая устойчивая лактация; II – тип – высокая неустойчивая лактация; III тип – неустойчивая быстро ниспадающая лактация; IV – низкая устойчивая лактация.

Для коров I типа характерно достижение в первые два месяца после растела максимальной молочной продуктивности, которая сохраняется на протяжении лактационного периода. Животные этого типа характеризуются хорошими воспроизводительными качествами.

Для коров IIтипа характерным является проявлениевысокой молочной продуктивности, которая вследствие некоторых технологических причин может снизиться, однако животное может восстановить молокообразование, хотя и до более низкого уровня. Животные этого типа могут проявлять высокие воспроизводительные качества.

Для коров III типа характерна высокая и быстро ниспадающая лактация — после достижения максимального надоя, суточный надой быстро снижается, что и обуславливает невысокую общая молочную продуктивность.

Для коров IV типа характерна устойчивая низкая молочная продуктивность.

По характеру распределения годового надоя, в первые 100 дней лактации от коров обычно получают 40-45% молока, в следующие 100 дней лактации — 30-35% и последующие 100 дней — 20-25% от всего удоя. Вследствие этого, необходимо создавать наиболее благоприятные условия кормления и содержания для коров в особенно первые 100 дней после отела. Организация раздоя позволяет получать максимальную продуктивность животных и достичь генетически обусловленного потенциала молочной продуктивности животных по типу лактации I.

Перспективные направления проведения научно-исследовательских работ должны быть направлены на оптимизацию селекционно-племенной работы, организацию направленного подбора родительских пар, формирования консолидированных по технологическим и экстерьерно-конституциональным признакам стад высокопродуктивного молочного скота с преобладающим I типом лактации, что позволит достичь реализации генетически обусловленной молочной продуктивности у животных [6, 10, 32].

1.2.Методика проведения линейной оценки экстерьерных особенностей высокопродуктивного молочного скота

В Российской Федерации сформировано два основных направления реализации генетического потенциала продуктивных качеств крупного рогатого скота – молочного и мясного. При этом, изначально все основные породы крупного рогатого скота формировались для получения, в основном, именно молока и мяса, также немаловажным было использование этих животных в качестве рабочего скота, тягловой силы.

Однако в последнее время, основным предназначением животных является возможность получения от них высококачественных продуктов животноводства – молока-сырья, говядины, кожного сырья, субпродуктов. Основными молочными породами крупного рогатого скота являются: черно-пестрая, симментальская, красная степная, красно-пестрая, голштинская, айрширская, ярославская, холмогорская, бестужевская, красная горбатовская и ряд других. При создании этих пород, на практике чаще всего применялось сочетание методов народной селекции с плановой селекционно-племенной работой, направленной на улучшение исходных животных по желательным хозяйственно-полезным признакам. Зачастую, отбор родительских пар проводился из лучших особей с использованием вводного скрещивания улучшающих пород. В дальнейшем практиковалось разведение полученных помесей, сочетающих желательные признаки.

Планомерное проведение селекционно-племенной работы, направленной на совершенствование местных пород скота приобрело более организованный характер в начале ХХ века, когда в стране необходимо было увеличивать производство продуктов питания. В свою очередь, была обоснована необходимость увеличения поголовья молочного скота для обеспечения цельномолочной продукцией возрастающее городское население.

В период 50-60-х годов ХХ века в СССР из-за рубежа стали вплановом порядке завозить быков-производителей симментальской и голштинской пород. При этом выяснилось, что отечественныегенотипы молочного скотазначительно уступает импортному по конверсии корма и эффективности производства продукции животноводства. Одной из причин явилось то, что в большинстве отечественных хозяйств кормопроизводство не обеспечивало потребности животноводства в кормах высокого качества, условия содержания животных также не способствовали реализации генетически обусловленного потенциала продуктивности, не восполнялись этологические потребности животных. Также и сам уровень ведения селекционно-племенной работы уступал методологии управления стадом, разработанным в рамках доктрин Международного комитета регистрации животных (ICAR)[10].

В результате неудачных экспериментов по необдуманному завозу импортного высокопродуктивного поголовья в условия молочных ферм с традиционной и устаревшей системой кормления и содержания животных, выяснилось, что созданные отечественные генотипы молочного скота так и не смогли составить конкуренцию зарубежным голштинской и симментальской породам. И сегодня импортные генотипы оказались гораздо более востребованы на российском рынке, как специализированные генотипы для производства молока или комбинированные для одновременного производства молока и мяса.

Локальные и аборигенные породы молочного скота не смогли выдержать конкуренцию с высокопродуктивным зарубежным поголовьем, несмотря на усилия по их сохранению. Причина заключается в развертывании системы крупномасштабной селекции, для которой местные породы не представляли собой значимости, хотя и были более пригодными в ареала своего разведения. Первоначальное значение приобреталоуровень продуктивных качеств и направление продуктивности животных, а также размер их популяции. Таким образом, одной из проблем развития отечественного молочного скотоводстваявляется отсутствии соответствующего уровня менеджмента молочного стада и специалистов, способных адекватно управлять молочным стадом в соответствии с существующим генетическим потенциалом. Поэтому сегодня, при планировании инвестиционных проектов по развитию молочного скотоводства ставка делается, преимущественно на зарубежные генотипы молочного скота, хотя это не лучшим образом сказывается на развитии отечественной генетики.

Причем, проблема сохранения локальных аборигенных и местных пород стоит не менее остро и в других странах, в том числе и с развитым молочным скотоводством. Недостатком мероприятий по улучшению генетических качеств локальных пород за счет прилития кровности более продуктивных зарубежных генотипов является потеря ценных аллелей генов, которые изначально были характерными именно для местных животных, например высокий уровень жира и белка в молоке, продуктивное долголетие, устойчивость к инфекционным заболеваниям. В последнее время появилось большое количество исследований, направленных ни изучение технологических и генетических аспектов, которые оказывают влияние на продуктивные качества и качества продукции животноводства, а также оказывают влияние на показатели жизнеспособности и здоровья животных. Несмотря на то, что эти разработки носят преимущественно прикладной научно-исследовательский характер, уже сейчас видны тенденции в отечественном молочном скотоводстве по повышению внимания к параметрам продуктивного долголетия и воспроизводства стада.

Современный молочный бизнес, который начинает диктовать свои предпочтения в направлении проведения селекционно-племенной работы, ориентируется, прежде всего на экономическую целесообразность работы предприятия по производству молока. В какой-то степени, утрачивается четкая грань между уровнем ведения работы с племенным молочным скотом с уровнем ведения учета производственных показателей в компьютерных программах по управлению стадом Dairy comp, Dairy plan,который поставляются в молочные хозяйства с доильными залами компаний ДеЛаваль, Геа и других. Возникают диспропорции и конфликты в сочетании отечественных и зарубежных программных продуктов по управлению молочным стадом, что негативно влияет на развитие национального молочного скотоводства.

Важная работа по совершенствованию отечественных молочных пород проводится в ВИЖ им. Л. К. Эрнста, где для улучшения ярославской, холмогорской, бестужевской, красной горбатовской, суксунской, костромской, калмыцкой и якутской пород, практикуется использование лучших генотипов путем скрещивания маточного поголовья с быками-производителями зарубежных голштинской породы, а также других пород.

При планировании таких исследований, обращается также внимание на сохранении ценных генов, которые присущи исходным отечественным породам, например, устойчивости к заболеваниям и низким температурам, повышенного содержания жира и белка в молоке, хороших фертильных качеств: ген диацилглицерол-О-ацилтрансферазы 1, казеиновые и альбуминовые фракции, рецептор гена гормона роста.

Задачей популяционной генетики является изучение происхождения российских местных пород скота в мировом аспекте генетического разнообразия. В тоже время, объективным фактом является то, что по валовому производству молока у голштинского скота нет конкурентов среди других пород во всем мире. При этом, отечественные генотипы крупного рогатого скота проигрывают зарубежным – высокоценные животные слишком немногочисленны, либо имеют невысокую продуктивность, либо поглощены (более 75% кровности) другими зарубежными породами (теми же голштинами, а также швицкой, джерсейской, айрширской и др.). Вследствие этого одной из основных проблем российского животноводства заключается в отсутствии устойчивой рентабельности, поскольку у племенных заводов и репродукторов отсутствует возможность участвовать в мировом рынке торговле генетическими ресурсами и соответственно, принимать участие в проведении крупномасштабной селекции для получения собственного племенного материала.

Одним из распространенных заблуждений является мнение о неэффективности отечественных молочных генотипов. Складывается представление, что для современных молочно-товарных ферм и молочных комплексов необходимо закупать импортные генотипы крупного рогатого скота, что позволяет получить значительно лучшие результаты, чем использование отечественных генотипов. При этом, мало кто обращает внимание, что отечественные генотипы содержатся в гораздо худших условиях устарелых ферм и эксплуатируется зачастую с использованием не всегда исправного оборудования. При этом, необходимо учитывать, реализация генетического потенциала продуктивных качеств животных происходит через обеспечение полноценных условий кормления и содержания, позволяющих достичь полного удовлетворения физиологических и этологических потребностей животных, а в условияхустарелых ферм и технологий с этим справиться невозможно.Поэтому отечественные генотипы молочного скота зачастую бывают не хуже импортных, важно лишь правильно понимать потребности животных.

Вопрос не должен ставиться так – определить, какие генотипы лучше, отечественные или импортные, такая постановка вопроса должна остаться в прошлом. Не следует также ставить задачу вытеснения импортных генотипов молочного скота отечественными – необходимо определить, какие генотипы молочного скота позволяют решить конкретные производственные задачи – выход молочного жира и белка, получение приплода и другой продукции животноводства. И уже после осознания поставленной задачи, необходимо создавать молочное стадо с подбором конкретных генов и генных комплексов, позволяющих обеспечивать необходимые производственные объемы продукции. Безусловно, следует ориентироваться на организацию экономически конкурентоспособного производства.

Необходимо построить современную модель развития отечественных генетических ресурсов в молочном скотоводстве. Причем эта модель должна учитывать реальные бизнес-интересы всех участников национального молочного рынка. Необходимо возродить отечественную промышленную отрасль по созданию механизмов и устройств для современных молочных комплексов, хотя на этом этапе нельзя отказываться и от поставки зарубежных доильных залов, которые будут конкурировать с отечественными изделиями. При этом, отечественные механизмы и устройства не должны уступать зарубежным образцам в производительности труда и качестве получаемой продукции. Ошибкой прошлых лет было создание средств механизации и технологических линий без учета этологических потребностей животных, результатом стали многочисленные нарушения в технологии производства продукции животноводства, ориентированной прежде всего на соблюдение технологической дисциплины, а не на восполнение потребностей животных.В современных условиях, наиболее конкурентоспособными будут именно те предприятия, у которых в системе машина-животное не будет диссонанса, при этом и понятие «машина» должно быть заменено на «искусственный интеллект», поэтому в новой «умной» системе «искусственный интеллект-животное» уже должны быть полностью учтены многочисленные физиолого-биохимические, этологические и зоопсихологические потребности животного. В этой связи, вопрос о значимости отечественных и аборигенных пород приобретает совершенно другое значение, поскольку основополагающими для любого биологического производства, а именно таковым является молочная ферма, являются вопросы воспроизводства стада. А именно воспроизводство у отечественных, локальных и аборигенных пород является как раз более выигрышным параметром, по сравнению с зарубежными генотипами. Поэтому, одной из тенденций развития современного животноводства является усиление внимания отечественных и зарубежных бизнес-структур к сохранению локальных пород скота, характеризующихся выдающимися адаптационными качествами к конкретным условиям кормления и содержания.

Одним из путей создания высокопродуктивных и одновременно, адаптированных молочных стад является использование современныхгенетических методов и трансплантацииэмбрионов. Использование этих технологийпозволяетувеличить скорость селекции животных и достигнуть высокой эффективности отбора. При этом, материнская особь облегчает новорожденному приплоду адаптацию к конкретным условиям кормления и содержания. Благодаря применению генетических методов появляется возможность использования многочисленных маркеров, равномерно распределенныхв геноме животного. Применение отбора лучших животных происходит в первые месяцыих жизни или сразу же после их рождения. Благодаря применению метода трансплантации эмбрионов, одна высокопродуктивная короваможет дать не менее 40-50 эмбрионов в год, которые могут вырасти в полноценных коров-дочерей.

В качестве примера можно изучить опыт реализация подходов геномной селекции в пилотных проектах в Московской и Ленинградской областях, гдеблагодаря усилиям коллективов научно-исследовательских институтов ВИЖ им. Л. К. Эрнста и ФГБНУ ВНИИГРЖ была создана референтная или эталонная группа быков-производителей (около 800 голов) голштинской и черно-пестрой пород для популяций молочного скота в этих регионах. Указанные методы планируется применить для оценки племенной ценности животных симментальской породы в Центральном Черноземье. Целью работ ученых является внедрение методов генотипирования высокопродуктивных животных в практику селекционно-племенной работы и создание референтной популяции животных в стадах Центральной России.Полученные результаты позволят отказаться от импорта генетических ресурсов в молочном скотоводстве и создатьнациональную систему воспроизводства высокопродуктивных генетических ресурсов[5, 9, 10].Оценка экстерьера молочного скота дает возможность определить продуктивный и селекционный потенциал, как отдельных животных, так и всего стада в целом. Поскольку экстерьер как признак фенотипа животных, тесно связан проявлением с хозяйственно полезных признаков у скота, поэтому проводя отбор животных по экстерьеру, селекционер учитывает также и показатели их молочной продуктивности. Проведение оценки линейных параметров телосложения животных включает в себя оценку таких признаков, как типичность и соответствие породе, выраженность молочных форм, наличие пороков и недостатков.

Рис. 17 — Стати молочной коровы: 1 — затылочный гребень; 2 — лоб; 3 — морда; 4 — нижняя челюсть; 5 — шея; 6 — загривок; 7 — подгрудок; 8 — грудинка (челышко); 9 -холка; 10 — лопатка; 11 — плечелопаточное сочленение; 12 — локоть; 13 — подплечье; 14 — запястье; 15 — пясть; 16 — бабка (путо); 17 — спина; 18 — поясница; 19 — щуп; 20 молочные колодцы; 21 — молочные вены; 22 — вымя; 23 — маклоки; 24 — крестец; 25 — седалищные бугры; 26 — бедро; 27 — коленная чашка; 28 — скакательный сустав; 29 — кисть хвоста; 30 — голень

Обращается также внимание и на конкретные измерения отдельных частей тела животного, анатомически связанных между собой, которые называются стати тела. Например, у крупного рогатого скота – порядка 30 статей тела. Оценка экстерьера чаще всего является составной частью комплексной оценки животного – бонитировки.

Методика проведения линейной оценки экстерьерных особенностей высокопродуктивного молочного скота

Важное значение при оценке быков-производителей имеет тип телосложения их дочерей, ориентированный на выносливость и высокую продуктивность, что играет важную роль для эффективного производства и продукции молочного скотоводства. Результаты оценки коров и быков по типу телосложения используют при отборе и подборе животных.

В Российской Федерации оценку быков по типу телосложения дочерей проводят в соответствии с «Правилами оценки телосложения дочерей быков производителей молочно-мясных пород» (1996) [1-3]. Каждый из признаков, включенный в линейную систему оценки, имеет самостоятельное значение и оценивается изолированно от других по линейной шкале от 1 до 9. Средний балл 5. Числа 1 и 9 баллов означают экстремальные отклонения признака.

Оценка проводится визуально, но в случае сомнения животные могут быть измерены. К признакам линейной оценки экстерьера относятся:

1. Рост

Измеряется мерной палкой в см. в наивысшей точке крестцовой кости.

2. Глубина туловища

Оценивается глубина средней части туловища в области последнего ребра.

1                                  5                               9

3. Крепость телосложения

Оценивается передняя часть туловища — вид спереди. Обращается внимание на ширину грудной кости.

1                                      5                                    9

4. Молочные формы

Оценивается открытость и плоскость ребра, расстояние между ребрами и их наклон, худощавость бедер и длина шеи.

                  1                    5                   9

1. Длина крестца

Измеряется расстояние от крайнего переднего выступа подвздошной кости (маклока) до крайнего заднего внутреннего выступа седалищного бугра.

1                     5                    9

1 = очень короткий (менее 44 см)   3 = короткий (~48 см)

5 = средний (~53 см)                7 = длинный (~58 см)

9 = очень длинный (63 см и более)

6. Положение таза

Определяется наклон предполагаемой линии между маклаками и седалищными буграми.

          1                     5                    9

1= сильно приподнятый (седалищные бугры выше маклаков на 4 см и более)

3 = прямой (седалищные бугры расположены на уровне маклаков)

5 = седалищные бугры расположены ниже маклаков на 4 см

7 = свислый (седалищные бугры низке маклаков на 8 см)

9 = сильно свислый (седалищные бугры расположены ниже маклаков на 12 см и более)

7. Ширина таза

Оценивается ширина в наружных выступах седалищных бугров.

          1                     5                    9

1 = очень узкий (менее 32 см) 3 = узкий (~34 см)

5 = средний (~37 см) 7 = широкий (~40см)

9 = очень широкий (более 43 см)

8. Обмускуленность

Определяется по степени развития мускулатуры в области крестца и бедер.

            1                   5                    9

1 = очень слабая      3 = слабая 5 = средняя

7 = сильная            9 = очень сильная

9. Постановка задних ног (вид сбоку)

Определяется угол изгиба задней конечности в области скакательного сустава.

           1                    5                    9

1 = слишком прямая (слоновая)     3 = прямая постановка

5 = средний изгиб 7 = изогнуты

9 = сильно изогнуты (саблистая)

10. Угол копыта

Определяется углом, образованным передней стенкой копыта задней конечности относительно плоскости пола. В случае, если копыто длинное, то угол измеряется в верхней его части. При наличии различий в постановке копыт, оцениваются оба копыта, и принимается к оценке средний угол.

           1                    5                    9

1 = плоское копыто (менее 35°)      7 = тупой угол (~51°)

3= острый угол (~39°)              9 = торцовое копыто (более 56°)

5 = средний угол (~45°)

11. Прикрепление передних долей вымени

Определяется угол соединения области живота с передними долями вымени.

           1                    5                    9

1 = очень слабое       3 = слабое             5 = среднее

7 = плотное 9 = очень плотное

12. Длина передних долей вымени

Измеряется расстояние по горизонтали от точки соединения вымени с туловищем до боковой борозды вымени.

         1                   5                    9

1 = очень короткие (менее 13 см)    3 = короткие (~16см)

5 = средние (~20 см) 7 = длинные (~24 см)

9 = очень длинные (более 27 см)

13. Высота прикрепления задних долей вымени

Измеряется расстояние между нижним краем вульвы и верхней линией секреторной части вымени.

          1                     5                     9

1 = очень низкое (более 35 см)      3 = низкое (~31 см)

5 = среднее (~26 см) 7 = высокое (~21 см)

9 = очень высокое (менее 16 см)

14. Ширина задних долей вымени

Измеряется расстояние по горизонтали между точками прикрепления вымени к телу.

1                    5                    9

1 = очень узкое (менее 7 см)      3 = узкое (~10 см)

5 = cpeднee (~16cм) 7 = шupoкoe (~18 cм)

9 = очень широкое (более 21 см)

15. Борозда вымени

Оценивается глубина борозды вымени, образуемая центральной поддерживающей связкой. Точкой измерения является глубина борозды между задними четвертями вымени.

1                     5                     9

1 = очень мелкая (менее 0,5 см)     3 = мелкая (~2.0 см)

5 = средняя (~3,5 cм) 7 = глубокая (~5,0см)

9 = очень глубокая (более 6,5 см)

16. Положение дна вымени

Определяется расстояние между предполагаемой линией на уровне скакательного сустава и нижней точкой дна вымени.

          1                    5                    9

1 = очень низкое (ниже скакательного сустава на 7 см и более)

3 = низкое (ниже скакательного сустава на 1 см)

5 = среднее (выше скакательного сустава на 5 см)

7 = высокое (выше скакательного сустава на 11 см)

9 = очень высокое (выше скакательного сустава на 17 см и более)

17. Расположение передних сосков

Оценивается расстояние между кончиками передних сосков.

          1                    5                    9

1 = очень широкое (30 см и более)     3 = широкое (~25 см)

5 = среднее (~19 см) 7 = узкое (~13 cм)

9 = очень узкое (менее 9 см)

18. Длина сосков

Измеряется наиболее длинный сосок.

              1                                     5                                   9

1 = очень короткие (менее 3 см)     3 = короткие (~4 cм)

5 = средние (~6 см) 7 = длинные (~5 см)

 9 = очень длинные (10 см и более)

Вопросы, касающиеся разработки новыхПравил оценки телосложения дочерей быков-производителей молочно-мясных пород, безусловно, актуальны и требуют дополнительных методических разработок, учитывающих фактическое состояние отечественных популяций молочного скота. В процессе широкого обсуждения вопросов линейной оценки крупного рогатого скота с целью унификации методов и правил учета особенностей экстерьера молочного скота в составе Рабочей группы по совершенствованию нормативной правовой базы в области племенного животноводства (утвержденной Распоряжением Министра сельского хозяйства РФ от 15.08.2019 г. №45-р, далее – Рабочая группа) нами были сделаны предложения, вошедшие в проект нового документа Порядок и условия проведения бонитировки проведения бонитировки крупного рогатого скота молочного и молочно-мясного направлений продуктивности в виде дополнений в разделы по характеристике экстерьера молочного скота.

Учет недостатков экстерьера коров

В дополнение к указанным выше признакам, включенным в линейную систему оценки типа, учитывают другие особенности экстерьера, влияющие на состояние здоровья, производство молока и мяса.

Эти характеристики даются для более полной оценки экстерьера. Они не имеют цифрового выражения. В случае наличия в экстерьере коровы каких-либо недостатков, в карточке оценки экстерьера при слабом их выражении в квадратике с названием ставится знак [V], [VV].

Оценка коров по комплексу признаков экстерьера (система б) и классификация типа телосложения

      Наряду с линейным описанием признаков, осуществляется комплексная оценка статей экстерьера и телосложения коров по 100-балльной шкале. Наивысшим баллом (100) оценивается животное идеального сложения (модельное животное). Оценка конкретных коров проводится путем сопоставления с моделью.

Осмотр и оценку коров проводят на площадках с твердым покрытием. Животных осматривают на расстоянии и вблизи, в состоянии покоя и движения. Осмотр проводят по направлению от головы к хвосту.

Общая оценка коровы устанавливается по комплексу признаков, характеризующих объем туловища, выраженность молочных признаков, качество ног, вымени и общий вид животного по следующей формуле:

ОЦ = ОТх0,10 + МТхО,15 + НхО,15 + ВхО,40 + ОВхО,20,

где  ОЦ — общая оценка; ОТ — объем туловища; МТ — выраженность молочных признаков; Н — ноги; В — вымя; OB — общий вид.

По каждой группе признаков устанавливается балл от 1 до 100.

Классификация коров по типу телосложения

*Устанавливается группой бонитеров.

Ведение первичной документации

 Во время оценки на каждую корову заполняется карточка оценки экстерьера, содержащая основные сведения о животном, результаты линейного описания и оценки по комплексу признаков с указанием недостатков экстерьера.

Органы управления племенным животноводством в регионе или уполномоченная ими организация после обработки данных направляют в организации по их запросам следующие данные:

— результаты сравнения коров данного стада со средними показателями по породе в регионе;

— результаты сравнения оценки коров за последнюю классификацию с предыдущими по данному стаду.

  Построение графического экстерьерного профиля при оценке быков по потомству

Головной информационно-селекционный центр в животноводстве (Всероссийской научно-исследовательский институт племенного дела Минсельхозпрода России — ВНИИплем) проводит статистическую обработку полученных из регионов материалов с установлением средних параметров балльной оценки по каждому признаку, находит среднее квадратическое отклонение (δ), а при необходимости и другие генетико-статистические величины. Весь массив данных анализируется по принадлежности коров к определенному генотипу и по дочерям конкретных проверяемых быков. Результаты оценки быка по типу телосложения дочерей изображаются в виде графического экстерьерного профиля.

При построении графического профиля осевая линия, являющаяся нулевой отметкой, соответствует оценке признака на уровне среднего балла по породе. Отклонение признака влево или вправо от осевой линии свидетельствует об усилении той или иной биологической крайности у потомков быка по сравнению со средней коровой данной популяции (например, узкотелость — широкотелость и т.д.).

Отклонение выражается в долях сигмы (δ) и называется «стандартная передающая способность» быка (ПСТ), которая изображается на графике в виде линии. ВНИИплем разрабатывает (апробирует) программные средства для формирования базы данных оценки быков по качеству потомства и обеспечивает ими региональные органы управления племенным животноводством.

Применение результатов линейной оценки экстерьера

Результаты оценки коров и быков по типу телосложения используют при отборе и подборе животных. Отбор коров на племенные цели производится, исходя из соответствия телосложения животного установленной модели породы и требований стандарта для данного стада.

При отборе быков-производителей по результатам линейной оценки обращается внимание на направление и величину отклонения интересующего признака у дочерей быка от уровня сверстниц. В случае, если отклонение признака у дочерей быка изображено на диаграмме в левой стороне аоля, это свидетельствует о снижении у потомков быка величины этого признака, например, роста, крепости телосложения, глубины туловища, длины крестца, ширины таза, длины и плотности прикрепления передних долей вымени, высоты прикрепления и ширины задних долей вымени, длины сосков, ухудшении выраженности молочных признаков, снижении обмускуленности тела и ослаблении центральной поддерживающей связки; в правой стороне- об их увеличении в сравнении со средними данными по породе. Большое отклонение в ту и другую сторону таких признаков, как положение таза, постановка задних ног, угол копыт, положение дна вымени, расположение передних сосков, длина сосков и обмускуленность тела, является нежелательным.

В заключительной информации о быке приводятся сведения о наличии недостатков экстерьера у его дочерей. В случае, если в группе дочерей быка какой-либо недостаток установлен у 10 и более процентов коров, то при подборе животных на это следует обращать внимание.

Пример 1. Согласно экстерьерному профилю быка, изображенному в приложении 3, можно сделать заключение, что бык оценен по типу на 35 дочерях, давал в среднем низкорослое потомство, достаточно крепкого сложения с глубоким туловищем и хорошей обмускуленностью. Дочери быка имеют укороченный, сравнительно узкий и свислый крестец. Постановка задних ног — несколько саблистая. Копыта имеют острый угол. Передние четверти вымени короткие, но плотно прикреплены к брюшной стенке туловища. Дно вымени расположено высоко относительно скакательных суставов, борозда вымени выражена средне. Передние соски длинные, расположены широко. Кроме того, установлено, что около четверти дочерей имеют приподнятый корень хвоста и слабые бабки, а 10,2% коров — мелкую заднюю стенку копыта. Вымя низкого качества и малого объема имеют 19% дочерей, слабо развитые передние доли — 28,5%, наклонное дно вымени — 25,1%, асимметрию долей — 14,3%. Неудовлетворительная форма сосков установлена у 38,1% коров, толстые соски имели 33,3%, передние соски расположены не вертикально у 16,2% дочерей.

Следовательно, данный производитель не может быть использован в стадах для улучшения качества вымени и конечностей. Нельзя использовать этого быка и для увеличения роста животных.

Пример 2. Экстерьерный профиль быка, приведенный в приложении 4, указывает, что второй бык по сравнению с предыдущим предпочтительнее для селекционных целей. Он является улучшателем крепости животных и качества вымени. Дочери этого быка имеют хорошо выраженные молочные формы наряду с удовлетворительной обмускуленностью тела. Они отличаются высокорослостью и превосходят сверстниц по глубине и ширине туловища, имеют длинный, немного свислый крестец. Качество ног -на уровне средних данных по породе. Дно вымени расположено высоко относительно скакательных суставов, передние четверти длинные, хорошо развитые, плотно прикреплены к туловище. Задняя часть вымени широкая, прикреплена высоко. Разделительная борозда достаточно выражена. Длина и расположение сосков удовлетворительные.

Существенному снижению оценки подвергаются животные с наличием пороков: врожденная деформация лицевой части черепа; аномалии в развитии челюстного аппарата (удлинение нижней или верхней челюсти); крыловидность в постановке лопатки, если она сильно выражена; аномалии в постановке хвоста; артрит и скованность задних конечностей; отек вымени, сохраняющийся длительный период; очень низкая живая масса и низкорослость.

ШКАЛА ОЦЕНКИ ЭКСТЕРЬЕРА КОРОВ ПО КОМПЛЕКСУ ПРИЗНАКОВ

• 1. Методика проведения оценки качества индивидуальных проб сырого молока в лаборатории селекционного контроля качества молока

Работа по оценке качества молока от подконтрольных животных выполняется сотрудниками лаборатории селекционного контроля качества молока, утвержденной Приказом Министерства сельского хозяйства РФ №522 от 21.11.2016 г., номер госрегистрации 262704801000, в соответствии действующими нормативными документами РФ и с учетом рекомендаций ICAR[6, 7].

В 2020 году Лаборатория успешно прошла дополнительную аккредитацию согласно ГОСТ ISO/IEC 17025-2019 Общие требования к компетентности испытательных и калибровочных лабораторий (Переиздание), по определению показателей качества и безопасности пищевой продукции, продовольственного сырья, контролю качества молочного сырья, уникальный номер аккредитации в реестре аккредитованных лиц №РОСС RU.0001.21 ПЦ12, Приказ Федеральной службы по аккредитации №ПК-3 от 17 марта 2020 г.

В соответствии с Федеральным законом от 3 августа 1995 г. N 123-ФЗ«О племенном животноводстве», а также в соответствии с Приказом Федеральной службы по аккредитации №ПК-3 от 17 марта 2020 г., в Лаборатории проводятся исследования показателей качества молочного сырья полученного о племенных и товарных коров по показателям: Отбор проб (ГОСТ Р ИСО 707), Пробоподготовка (ГОСТ 26809.1, п.6), Чистота (ГОСТ 8218), Пробоподготовка, Массовая доля жира, Массовая доля белка (ГОСТ 32255,п.8.1.1, п. 8.2, п.9, п.10), Массовая доля жира (ГОСТ 5867, п.2), Массовая доля белка (ГОСТ 25179, п.6.3), Соматические клетки (ГОСТ 23453. п.6, п.7), Плотность (ГОСТ Р 54758).

I. Подготовка проб молока к работе. Транспортировка проб молока в лабораторию осуществляется владельцем животных или транспортом Лаборатории в охлажденных боксах при температуре 5 ± 1 °С. Образцы не должны быть заморожены.К исследованиям допускаются пробы молока, законсервированные дихроматом калия, либо консервантом широкого спектра действия Microtabs.Все поступающие образцы регистрируются в журнале регистрации образцов (таблица 18).

Таблица 18 – Форма журнала регистрации поступающих образцов молока

Объем пробы молока должен быть не менее 90 мл, исходя из следующей потребности для проведения анализов:

— определение титруемой кислотности молока (2 повторности) – 20 мл;

— определения жира и белка на автоматических анализаторах (2 повторности) – 50 мл;

— определение соматических клеток вискозометрическим методом (2 повторности) – 20 мл.

II. Проведение анализов проб молока. Определение необходимых показателей в молоке осуществляется методами соответствующими действующим государственным стандартам (таблица 19), а так же приборами-анализаторами, разрешенными к использованию в установленном порядке.К исследованию на автоматических анализаторах молока не допускаются образцы с титруемой кислотностью свыше 20-24 °T (в зависимости от рекомендаций фирмы-производителя).

Для автоматического определения содержания жира в молоке и молочных продуктах в научных и производственных целях используют фотоэлектрические, ультразвуковые, высокочастотные, кондуктометрические, термоэлектрические и другие методы и средства.

Некоторые методы определения жира относятся к официальным и арбитражным, требования к которым регламентируются нормативными документами:

— рутинные лабораторные методы: кислотный, турбидиметрический и экстракционный

— инструментальный экспресс-метод: инфракрасная спектрометрия.

Таблица 19 – Методы оценки качества сырого молока

Существуют также ультразвуковые экспресс-методы определения жира и белка в молоке с применением приборов «Клевер», «Лактан» российского производства и т.д., однако эти методы могут иметь только лишь ограниченное применение, например в фермерских или личных подсобных хозяйствах для внутренних целей, в виду высокой погрешности измерений свыше 0,1%, трудности пробоподготовки, отсутствия повторяемости результатов измерений, ввиду косвенного метода определения жира в молоке. Эти методы не имеют официального разрешения к применению на территории РФ ввиду отсутствия соответствующих нормативных документов, ГОСТов.

Притом, что для определения белка применение ультразвукового метода в принципе нецелесообразно, ввиду отсутствия постоянной физической основы структуры молока для проведения измерения, белковые глобулы не являются более жестко сформированными структурами в отличие от жировых шариков.

Подобных недостатков лишен экспресс-метод инфракрасной спектрометрии, который позволяет количественно проводить измерения содержания жира в молоке и молочных продуктах при высокой точности измерений и высокой корреляции (98-99%) с рутинными лабораторными методами определения жира и белка в молоке.

Определение титруемой кислотности.ГОСТ 3624-92. Молоко и молочные продукты. Титриметрические методы определения кислотности

В коническую колбу вместимостью 150-200 см³ отмеривают пипеткой 10 см³ молока, 20 см³ воды, 3 капли фенолфталеина, смесь тщательно перемешивают и титруют 0,1 н раствором гидроксида натрия до появления слабо-розового окрашивания, не исчезающего в течение 1 мин, соответствующего эталону окраски. Титрование одной и той же пробы молока проводится не менее двух раз.

Кислотность молока (в °Т) равна количеству (в см³) гидроксида натрия, пошедшего на титрование, умноженному на 10.Расхождение между параллельными определениями должно быть не более 1°Т.

Определение содержания жира и белка в молоке с использованием автоматических анализаторов

Общими этапами проведения данного анализа будут являться:

— подготовка прибора к работе: прогрев, проверка работоспособности прибора (установка нулевой точки);

— подготовка пробы молока к измерению: установление соответствия титруемой кислотности, обеспечение однородности образца и допустимого интервала его температуры, дегазация молока (при необходимости);

— проведение измерений: проводится согласно инструкции по эксплуатации. При этом показания первых проб не учитываются, так как они содержат примесь предыдущих образцов или дистиллированной воды;

— снятие результатов: результаты измерений вносятся в журнал результатов исследований. В случае наличия технической возможности, данные могут автоматически передаваться на ПК и вноситься в регистрационную базу данных;

— обслуживание анализаторов: автоматическая промывка проводится дистиллированной водой не реже 1 раза в час или чаще (по усмотрению оператора), ежедневная промывка проводится специальными моющими средствами (рекомендуемыми изготовителем) не реже 1 раза в день или через каждые 100 проб молока.

Порядок работы на анализаторе молока MilkoScan Mars (FOSS, Дания). Прибор предназначен для проведения измерений на образцах сырого не гомогенизированного и гомогенизированного молока по основным показателям: жир, белок, лактоза, СОМО, точка замерзания, также возможна комплектация дополнительными калибровками для качественного определения наличия фальсифицирующих веществ в молоке. Требуемый объем образца составляет около 8 мл, и он может быть налит в контейнер любого размера, который можно установить на полке образца.

Для начала работы в прибор должны быть установлены реагенты (нулевой раствор и чистящий раствор). Прибор следует прогреть в течение минимум 30 минут, после чего может быть запущена процедура настройки, которая включает в себя следующие операции:

• Выполнение Цикла очистки.

• Выполнение нулевого измерения.

Информацию о рабочем состоянии прибора можно получить по светодиодному индикатору пипетки:

• Белый: Готов к проведению анализа

• Красный: состояние ошибки, невозможно выполнить измерение.

• Оранжевый: Прибор занят выполнением измерения, очистки или настройки нуля.

Чтобы обеспечить наилучшие результаты, необходимо, чтобы образец был гомогенно или полностью перемешан.

Прибор включает встроенный подогреватель для стабилизации температуры образца на 40 °С, что улучшает воспроизводимость измерений. Подогреватель НЕ является смесителем, и это должно быть частью процедуры обработки образца, осуществляемой оператором.

Основные принципы обработки образцов следующие:

• Гомогенизированное молоко не нужно подогревать.

• Сырое молоко необходимо подогревать до 40°С, а затем осторожно перемешивать во избежание скопления в образце воздуха.

• Все образцы сливок необходимо подогревать до 40°С, а затем осторожно перемешивать во избежание скопления в образце воздуха.

Для измерений образцов необходимо выполнить следующие действия:

• Убедиться в отсутствии сообщений об ошибках.

• Выполнить настройку нуля.

• Поместите образец под пипетку.

• Выбрать продукт из «Списка выбора продуктов».

• Нажать кнопку запуска.

• Ввести «Идентификационный номер образца», используя всплывающую клавишную панель.

• Если образец необходим для будущей работы по калибровке, «заблокировать» образец.

• Если образец заблокирован, можно ввести справочные химические данные посредством нажатия в любом месте на области результатов образца для открытия диалогового окна с полями ввода.

Результаты последнего проанализированного образца отображаются на экране. Возможен экспорт результатов всех проанализированных образцов и сохранение их на вставленной карте памяти USB. Файл затем можно открыть на компьютере, и результаты можно рассматривать с помощью электронной таблицы или средства просмотра документов.

Обслуживание. MilkoScan Mars требует использования двух жидких реагентов, залитых в контейнеры, расположенные в отсеке флаконов с реагентами с левой стороны прибора.

Нулевой раствор

Нулевой раствор требуется для того, чтобы поддерживать проточную систему наполненной жидкостью и готовой в любой момент прокачать образец. Раствор также используется для выполнения измерений фона оптической системы, которые затем используются в программном обеспечении для сравнения с образцом молока.

Наполните 5 литровую бутылку, которая поставляется вместе с прибором, деминерализованной водой до индикаторной линии.

Отрежьте угол пакета и вылейте его жидкое содержимое в деминерализованную воду. Заверните крышку и мягко перемешайте содержимое бутылки. Теперь нулевой раствор готов к использованию и наполнению малого внутреннего нулевого флакона прибора.

Осторожно выньте флакон из прибора, вынув сначала верхний датчик уровня жидкости с трубкой реагента в сборе. Крышку с датчиком уровня жидкости можно положить на кронштейн внутри отсека флаконов прибора. Наполните флакон до верха квадратного сечения, установите датчик уровня в сборе обратно на флакон и установите его в переднем положении в боковой части прибора.

Чистящий раствор

Чистящий раствор MSc-Clean требуется для поддержания проточной системы чистой от всех остатков молока – жиров, белков и других органических загрязнений. Это очень важно для выполнения надежного нулевого измерения, описанного выше. Наполните 5 литровую бутылку, которая поставляется вместе с прибором, деминерализованной водой до индикаторной линии.

Отрежьте угол пакета и вылейте его жидкое содержимое в деминерализованную воду. Заверните крышку и потрясите бутылку или установите ее в лабораторную мешалку для растворения частиц порошка. Это может занять до 30 минут. Окончательный раствор имеет красный цвет, чтобы два раствора можно было различить визуально.

Кроме того, прибор нуждается в следующем обслуживании:

В конце каждого рабочего дня:

1. Выполнить цикл очистки, нажав на кнопку «Clean» [Очистка].

2. Очистить наружную поверхность пипетки.

3. Снять пластину образцов и очистить воронку сбора образцов.

4. Очистить область вокруг пипетки, чтобы удалить брызги молока.

5. Слить сливной контейнер.

6. Очистить наружную поверхность прибора (рис. 20).

В дополнение к ежедневным действиям, еженедельно необходимо:

1. Снять проходной фильтр. Промыть его под струей проточной воды из крана. Осмотреть уплотнительные кольца на наличие повреждений и вставить его обратно в прибор. Заменить проходной фильтр, если имеются какие-либо повреждения уплотнительных колец или поверхности фильтра.

2. Осмотреть проточные трубки на наличие скоплений остатков молока и заменить их при необходимости.

Ежегодное профилактическое обслуживание выполняется авторизованным сервисным инженером по меньшей мере 1 раз в год или через максимум 100000 образцов.

Рис. 20. Анализатор молока MilkoScan Mars

Определение содержания соматических клеток с применением вискозиметра «Соматос М». Объем 5 см³ раствора препарата «Мастоприм» и 10 см³ анализируемого сырого молока отбирают пипетками и вносят в сосуд вискозиметра. Анализируемое сырое молоко перед отбором пробы необходимо тщательно перемешать и при необходимости очистить от механических примесей.

Смесь анализируемого сырого молока с раствором препарата «Мастоприм» в сосуде вискозиметра перемешивают в течение (30±10) с в ручном или автоматическом режиме. По окончании перемешивания определяют количество соматических клеток в анализируемом сыром молоке по времени вытекания смеси из капилляра. Продолжительность вытекания определяется вязкостью смеси сырого молока с раствором препарата «Мастоприм», которая коррелирует с исходным содержанием в нем соматических клеток.

Диапазон определения количества соматических клеток при использовании капиллярных вискозиметров составляет от 90 до 1500 тыс. в 1 см³ сырого молока и продолжительность вытекания смеси из капилляра колеблется от 12 до 58 с, что указано в таблице 6.

Таблица 11 – Таблица для расчета количества соматических клеток в молоке

^*Продолжительность вытекания смеси из капилляра вискозиметра диаметром (1,50±0,05) мм.

После проведения анализа смеси для каждой исследуемой пробы сырого молока сосуд прибора следует подготовить для проведения следующего анализа согласно процедуре, описанной в инструкции по применению прибора.

Таблица 12 – Расчет допустимых расхождений измерений

За окончательный результат анализа принимают среднеарифметическое значение результатов двух параллельных определений, допускаемое расхождение между которыми не должно превышать данных таблицы.Предел допускаемой погрешности результатов измерений составляет 10% в интервале доверительной вероятности P= 0,95.

Методика определения соматических клеток с помощью вискозиметрического анализатора EKOMILKSCAN. Анализатор соматических клеток в молоке EKOMILKSCAN предназначен для быстрого и эффективного контроля качества молока, как в лабораторных условиях, так и при получении молока на фермах и поступлении молока на молокоперерабатывающие предприятия. Регулярные проверки молока в хозяйствах ведут к предупреждению, своевременному обнаружению и лечению одного из самых распространенных заболеваний у коров – мастита.

Проведение систематического контроля над уровнем содержания соматических клеток в молоке-сырье на предприятиях по производству молока является гарантией производства высококачественных и экологически чистых молочных продуктов.

Характеристика прибора:

— Легкая конструкция (вес 4, кг) сочетается с удобной прямоугольной формой и не большими габаритами (202х235х298мм).

— Экономичный в расходовании питания, от сети переменного тока, напряжением от 187 до 242В и частотой (50+ 1)Гц или от источника постоянного тока напряжением от 12 до 14,2 В.

— Потребление мощности не более 30W.

— Для анализа требуется малое количество молока 10см³ .

— LCD индикация.

— Наличие режима сохранения данных в энергонезависимую память – до 250 записей с информацией, содержащей номер поставщика, дату и час анализа и результат.

— Встроенные часы реального времени.

— Возможность подключения к компьютеру.

— Возможность подключения к внешнему принтеру.

— Время выхода на рабочий режим <10мин.

— Время одного измерения в среднем 4 мин.

— Время беспрерывной работы не ограничено.

— Диапазон показаний количества соматических клеток в 1мл молока 90-1500 тыс. клеток, время вытекания жидкости 0,1-58сек.

— Относительная погрешность измерения условной вязкости не более +5%.

— Окончательный результат исследования получают путем получения среднего арифметического от двух измерений одного образца пробы молока.

Подготовка к работе.

Горлышко колбы должно доходить до дна отверстия. В противном случае, молочная проба может разлиться в блоке перемешивания проб, что приведет к повреждению анализатора.

Поставить под блоком перемешивания посуду для сбора отработанной смеси. Подать сетевое питание или питание от аккумулятора.

Если при включении анализатора на дисплеи появится сообщение «ВИСКОЗИМЕТР ЕКОМИЛКСКАН и Мойка?», тозначитследует промыть канал после перерыва в работе.

Прибор EKOMILK SCAN устанавливается в вертикальное положение на горизонтальной поверхности. Стеклянная колба устанавливается в отверстие блока перемешивающего пробы до щелчка. Непременно необходимо одеть резиновое кольцо, предназначенное для смягчения вибрации и шума при перемешивании пробы.

	Необходимо убедиться, что вода вытекает ровной струйкой, что говорит о чистоте капиллярного канала.
	Теперь можно нажать кнопку УСТАНОВКА(SETTINGS). На дисплее появится надпись ПОДГОТОВКА ОБРАЗЦА. Анализатор готов к проведению измерения.

Важным условием проведения исследований является наличие свежих образцов молока. Анализировать молоко необходимо в течение 12 часов после доения. Хранить молоко необходимо при температуре от 5 до 10⁰С. Хранение образцов молока при температуре ниже 5⁰С и выше 10⁰С приводит к постепенной гибели молочных лейкоцитов, что снижает точность результата. Кислотность исследуемого молока не должна превышать 20⁰Т.

Молоко нельзя замораживать и нельзя пастеризовать.

Перед анализом необходимо тщательно процедить молочную пробу, как минимум через 4 слоя марли или с использованием фильтра с размером пор от 35 до 150 мкм, что обеспечит физическую чистоту образца. Перед анализом необходимо тщательно перемешать пробу молока.

Подготовка раствора Мастоприма (Екоприма) проводится в соответствии с инструкцией: необходимо растворить 3,5 гр. Мастоприма в 100 мл дистиллированной воды при температуре 30-35⁰С. Раствор полностью будет готов при полном растворении Мастоприма и охлаждении до 20⁰С. Активность раствора сохраняется в течение суток. Необходимо обязательно проверять срок годности Мастоприма и использовать допущенный к применению. Добавление раствора Мастоприма к молоку ведет к изменению его вязкости, существует прямо пропорциональная зависимость между числом соматических клеток и вязкости смеси молока с Мастопримом.

Анализатор молока EKOMILK SCAN измеряет время вытекания молочной смеси через капилляр блока перемешивания пробы и определяет число соматических клеток, соответствующее этому времени вытекания.

Вязкость зависит от температуры анализируемой пробы. Для получения надежных результатов необходимо, чтобы температура молочной пробы и раствора Мастоприма находилась в диапазоне 20+2⁰С. Необходимо соблюдать меры предосторожности при работе с Мастопримом, так как порошок вызывает раздражение слизистой глаз и носоглотки.

Работа с прибором для определения качества молока

		Нажать кнопку УСТАНОВКА (SETTINGS). На дисплеи появится сообщение ПОДГОТОВКА ОБРАЗЦА. Колба наклонится и загорится красный индикатор.

Рис. 21. Работа с прибором

Рис. 22. Индикация прибора

Анализатор автоматически перемешивает смесь, затем измеряет время ее вытекания через капилляр. На индикаторе появится результат: в первой строке – время и значение, соответствующее времени вытекания пробы через капилляр в секундах (рис. 22); Во второй строке – Клетки и значение, соответствующее числу соматических клеток в 1мл молока, разделенному на 1000.

Шприцем необходимо набрать 5мл Мастоприм и вылить в наклонившуюся колбу. Шприцем 10мл набрать подготовленное для исследования молоко (процеженное, подогретое и соответствующей кислотности) и вылить в колбу. Нажать кнопку ОК, чтобы запустить измерение.

Очистка прибора.

После каждой пробы необходимо промывать анализатор. В противном случае возможно засорение капилляра. Дистиллированную воду наливают в колбу для смывания жира со стенок капилляра, тем самым обеспечивая более достоверные показатели следующей пробы.

После завершения исследований всех проб, необходимо снова промыть колбу дистиллированной водой. Продуть капилляр через колбу. Отключить от сети. Снять колбу. Наклонить вперед блок перемешивания пробы и с помощью резиновой груши продуть капилляр обеих сторон. Марлевым тампоном стереть с капилляра (нижней части блока перемешивания пробы) остатки воды и смеси. Оставить прибор в этом положении до следующего включения.

Определение соматических клеток с использованием анализатора соматических клеток в молоке DCC компании DeLaval. Существует косвенный метод определения соматических клеток в молоке сыром, основанный на принципе флуоресцентной микроскопии с использованием счетчика соматических клеток DCC фирмы DeLaval. В настоящее время данный метод не включен ни в один национальный стандарт, поэтому на основании законодательства РФ может использоваться только для проведения внутрипроизводственного контроля, а результаты анализов не могут быть использованы в случае арбитражных споров.

Однако данный метод утвержден ICAR и широко используется молочными хозяйствами в странах как Европы, так и Таможенного союза.

Метод основан на разрушении цитоплазматической мембраны соматических клеток под действием лизогенного буфера. При этом ядра клеток становятся доступными для действия флуоресцентного красителя, в качестве которого используется йодид пропидия. Йодид пропидия связывается с двуспиральной ДНК соматических клеток, и образует флуоресцентное вещество, поглощающее зеленый свет и излучающее красный, идентифицирующее клетки. Система дает изображение клеток, а встроенный в анализатор компьютер с помощью программного обеспечения подсчитывает количество белых точек, что соответствует количеству соматических клеток.

Ход измерений. Аккуратно перемешивают пробу сырого молока во флаконе для проб или стеклянном стакане при помощи стеклянной палочки, не допуская вспенивания. Температура пробы молока должна быть в диапазоне от 10 °С до 40 °С.

Вскрывают пакет с Nucleo-кассетой и вынимают ее для проведения измерений. Nucleo-кассета не должна находиться на свету более 3 мин.

Набирают сырое молоко в Nucleo-кассету, опуская всасывающее устройство кассеты во флакон с пробой сырого молока и нажимая на поршень. Сырое молоко должно дойти до половины дорожки.

Помещают кассету в счетчик так, чтобы всасывающее устройство располагалось слева, после чего закрывают крышку отсека для кассеты.

Проводят измерение в режиме «Run».

Через 1 мин фиксируют результат, отображенный на дисплее прибора.Количество соматических клеток в анализируемом сыром молоке устанавливают по результатам, полученным на дисплее прибора, и выражают в тысячах клеток в 1 см³ (рис. 23).

Рис. 23. Анализатор соматических клеток DCC

Разница между двумя независимыми отдельными результатами определений, полученными с использованием одного и того же прибора применительно к идентичному анализируемому материалу в той же лаборатории, одним и тем же оператором с использованием одной и той же партии кассет в течение короткого периода времени зависит от уровня соматических клеток в молоке и при уровне доверительной вероятности Р=0,95 не должна превышать:12% при содержании до 100 тыс. клеток/см³;

8% при содержании от 100 до 400 тыс. клеток/см³;7% при содержании более 400 тыс. клеток/см³.

Разница между двумя независимыми отдельными результатами определений, полученными с использованием одного и того же метода применительно к идентичному анализируемому материалу в различных лабораториях, различными операторами с использованием различного оборудования, при уровне доверительной вероятности Р=0,95 не должна превышать 15%.

Определение содержания жира в образцах молока согласно ГОСТ Р ИСО 2446-2011

Ход анализа: отмеряют (10,0±0,2) см³ серной кислоты в бутирометр, используя автоматическое дозирующее устройство или безопасную пипетку таким образом, чтобы кислота не попала на горлышко бутирометра или не захватила воздух. Осторожно три-четыре раза переворачивают колбу с приготовленной пробой и немедленно отмеряют требуемый объем молока в бутирометр следующим образом.

Набирают часть пробы молока в пипетку, пока его уровень не станет немного выше линии градуировки, вытирают молоко с наружной стороны пипетки. Удерживая пипетку вертикально, при этом линия градуировки находится на уровне глаз, а кончик пипетки касается внутренней части горлышка наклоненной колбы с пробой, выпускают молоко из пипетки до тех пор, пока верх мениска (не дно мениска, которое плохо видно) не совпадет с линией градуировки.

Вынимают пипетку из колбы с пробой. Затем, удерживая бутирометр в вертикальном положении, а пипетку под углом 45°, причем выпускное отверстие пипетки находится ниже шейки горлышка бутирометра, аккуратно выпускают молоко внутрь бутирометра так, чтобы оно образовало слой на поверхности кислоты, по возможности не смешиваясь с кислотой. После истечения молока выжидают 3 с, касаются кончиком пипетки шейки горлышка и затем вынимают пипетку. Следует принять меры по предотвращению смачивания горлышка бутирометра молоком.

Отмеряют (1,00±0,05) см³ изоамилового спирта в бутирометр, пользуясь автоматическим дозатором или безопасной пипеткой.Не допускается смачивать горлышко бутирометра изоамиловым спиртом и на этой стадии следует избегать смешивания жидкостей в бутирометре.

Надежно закупоривают бутирометр, не нарушая его содержимого. Если используется двухсторонняя пробка, ее вкручивают до тех пор, пока самая широкая часть не достигнет верхнего уровня горлышка. При использовании пробки с замком ее вставляют так, чтобы обод пробки соприкасался с горлышком бутирометра.

Встряхивают и переворачивают бутирометр, находящийся в защитном штативе на случай поломки или ослабления пробки, для тщательного перемешивания его содержимого и полного растворения белка, т.е. пока не останется белых частиц.Немедленно помещают бутирометр в центрифугу, приводят центрифугу в рабочий режим со скоростью, обеспечивающей относительное центробежное ускорение (350±50) g за 2 мин, и затем удерживают эту скорость в течение 4 мин.

Вынимают бутирометр из центрифуги и при необходимости регулируют пробку с тем, чтобы на шкале был столбик жира. Помещают бутирометр вниз пробкой в водяную баню (6.7) температурой (65±2) °Сна период от 3 до 10 мин; уровень воды должен быть выше верха колонки жира.Вынимают бутирометр из водяной бани и тщательно регулируют пробку, чтобы разместить низ столбика жира при минимальном движении колонки по верхнему краю линии градуировки, предпочтительно основной линии градуировки. При использовании твердой резиновой пробки регулировку лучше проводить, слегка извлекая пробку, а не ввинчивая ее глубже в горлышко. При использовании пробки с замком следует вставить ключ и, прилагая достаточное усилие, поднять столбик жира до необходимого уровня.Записывают показание шкалы, совпадающее с нижней частью столбика жира, и затем осторожно, чтобы не сдвинуть столбик, как можно быстрее записывают показание шкалы, совпадающее с самой нижней точкой мениска жира наверху столбика жира. Снимают показания наверху столбика с точностью до половины наименьшего деления. Во время снятия показания бутирометр следует держать вертикально, снимаемое показание должно находиться на уровне глаз. Регистрируют разницу между двумя показаниями.Примечание — Если жир в столбике окажется мутным или в нижней части столбика окажутся частицы черного или белого материала, полученное значение содержания жира является недостоверным.

Если необходимо проверить полученное значение, вновь помещают бутирометр в водяную баню температурой (65±2) °Сна период от 3 до 10 мин, а затем вынимают его и снова снимают показания.

Следует проводить периодические сравнительные определения с помощью метода Гербера, указанного в настоящем стандарте, и контрольного метода, определенного в ИСО 1211.

Выражение результатов. Содержание жира в молоке, выраженное в граммах на 100 см³ молока в соответствии с единицами на шкале молочной пипетки, вычисляют по формуле (11):

(11)

где A — показание в нижней части столбика жира;B — показание в верхней части столбика жира.

Абсолютное расхождение между результатами двух независимых испытаний, полученными за короткий промежуток времени с использованием одного и того же метода на идентичном материале в одной и той же лаборатории одним и тем же оператором на одинаковом оборудовании, не должно превышать значение, соответствующее одному наименьшему делению шкалы бутирометра. При использовании бутирометров с погрешностью шкалы менее 0,01% расхождение между результатами двух определений, полученными как описано выше, не должно превышать значение, соответствующее половине наименьшего деления шкалы.

Определение содержания белка в исследуемых образцах молока согласно ГОСТ 23327-98 (метод Кьельдаля)

Ход анализа: в колбу Кьельдаля или пробирку помещают несколько отрезков стеклянных трубок и 10 г смеси солей.В стаканчик для взвешивания отмеряют 1 см³ продукта, крышку закрывают и взвешивают. Продукт переливают в колбу Кьельдаля или пробирку. Пустой стаканчик с крышкой вновь взвешивают и по разнице между массой стаканчика с молоком и массой пустого стаканчика устанавливают массу взятого продукта.В колбу Кьельдаля или пробирку добавляют 10 см³ серной кислоты и 10 см³ перекиси водорода или 0,5 г перманганата калия.Колбу Кьельдаля или пробирку помещают в гнездо алюминиевого блока на электроплитке. Устанавливают регулятор нагрева плитки в среднее положение.После прекращения бурного вспенивания содержимого колбы или пробирки (приблизительно через 10 мин после начала нагревания) устанавливают регулятор нагрева плитки в положение, соответствующее максимуму. Нагревание продолжают до тех пор, пока жидкость не станет прозрачной и бесцветной или слегка голубоватой.Колбу Кьельдаля или пробирку с полученным минерализатом охлаждают на воздухе до комнатной температуры.Измерение массовой доли общего азота химическим способом с индикацией точки эквивалентности по изменению окраски индикатора проводят в следующей последовательности.В колбу Кьельдаля или пробирку с минерализатом добавляют 20 см³ дистиллированной воды и тщательно перемешивают круговым движением до растворения осадка.Собирают перегонный аппарат (рисунок 24). Включают электроплитку под колбой-парообразователем, открывают зажим на линии отвода пара в канализацию и закрывают зажим на линии подачи пара в колбу Кьельдаля.

1 — плитка электрическая; 2 — колба коническая вместимостью 2000 см³; 3 — воронка делительная; 4 — каплеуловитель; 5 — пробирка кварцевая; 6 — холодильник; 7 — колба коническая вместимостью 250 см³

Рисунок 24 — Прибор для отгонки аммиака

Нагревают воду в колбе-парообразователе до кипения. Колбу Кьельдаля или пробирку присоединяют к перегонному аппарату. В коническую колбу вместимостью 250 см³ отмеривают мерным цилиндром 20 см³ смеси раствора борной кислоты с раствором индикатора.

Устанавливают коническую колбу напоз.7 так, чтобы конец трубки холодильника находился ниже верхнего уровня смеси растворов в колбе. Отмеряют мерным цилиндром 50 см³ раствора гидроокиси натрия и осторожно, не допуская выбросов, переливают его через делительную воронку в колбу Кьельдаля или пробирку. Кран воронки сразу закрывают. Закрывают зажим на линии отвода пара и открывают зажим на линии подачи пара из колбы-парообразователя в колбу Кьельдаля или пробирку.Перегонку ведут до достижения объема конденсата 90-120 см³ (время перегонки — 5-10 мин). Температура воды на выходе из холодильника не должна превышать 25 °С.Содержимое конической колбы с раствором индикатора, борной кислоты и конденсатом титруют раствором соляной кислоты концентрацией 0,2 моль/дм³ до изменения цвета, указанного в таблице. Проводят отсчет объема кислоты, затраченного на титрование содержимого колбы.При измерении массовой доли общего азота химическим способом с автоматическим титрованием последовательно выполняют указания, описанные выше, после чего подключают блок автоматического титрования к потенциометрическому анализатору согласно инструкции, прилагаемой к блоку. Подключают блок и анализатор к сети и прогревают в течение 10 мин.

Таблица 13 — Изменение цвета раствора при титровании индикаторами

Заполняют дозатор блока автоматического титрования раствором соляной кислоты концентрации 0,2 моль/дм³.Настраивают потенциометрический анализатор на диапазон, включающий значение рН=5,4. Настраивают блок автоматического титрования на точку эквивалентности, равную 5.4, и устанавливают на блоке значение рН=10,4, начиная с которого подача соляной кислоты должна вестись по каплям.Устанавливают время выдержки после окончания титрования — 15 с.В химический стакан со смесью конденсата и раствором борной кислоты помещают стержень магнитной мешалки. Включают двигатель мешалки и погружают электроды потенциометрического анализатора и сливную трубку дозатора блока автоматического титрования в содержимое химического стакана.Включают кнопку «Пуск» блока автоматического титрования, а спустя 2-3 с — кнопку «Выдержка». Раствор соляной кислоты при этом начинает поступать из дозатора блока в стакан с конденсатом, нейтрализуя последний.По достижении точки эквивалентности и истечении времени выдержки 15 с процесс нейтрализации автоматически прекращается, а на панели блока автоматического титрования зажигается сигнал «Конец». После этого отключают все кнопки. Фиксируют объем раствора кислоты, затраченного на нейтрализацию.Массовую долю общего азота , %, при химическом способе измерения вычисляют по формуле: где V₁ — объем кислоты, затраченный на титрование, см³; V₂ — объем кислоты, затраченный на титрование при контрольном измерении, см³;

c — концентрация соляной кислоты, ;m — масса навески продукта, г;1,4 — коэффициент пересчета объема кислоты в массовую долю общего азота, .Массовую долю белка Y , %, определяют по формуле:

где 6,38 — масса молочного белка, эквивалентная единице массы общего азота.За окончательный результат измерения принимают среднее арифметическое значение результатов двух параллельных измерений, округленное до второго знака после запятой.Мойка стаканчиков для отбора проб молока производится в промышленной стиральной машинке с использованием жидкого хозяйственного мыла и средства для мойки молочного оборудования, например «Биолайт СТ-2Ф».

Порядок утилизации биологического материала

Утилизация биологического материала осуществляется согласно Ветеринарно-санитарных правил сбора, утилизации и уничтожения биологических отходов (утв. Главным государственным ветеринарным инспектором Российской Федерации 4 декабря 1995 г. № 13-7-2/469).

Сбор биологического материала проводится в химически стойкие контейнеры (емкости) с плотно прилегающей крышкой и направляются для утилизации в биотермической яме.

2.Разработка инновационной технологии, направленной на оптимизацию системы кормления и содержания ремонтных телок, позволяющая проводить осеменение в 14-15 месяцев и снизить затраты на их выращивание при повышении производства молока

2.1.Изучение параметров молочной продуктивности и качество молока (по основным показателям: жир, белок) высокопродуктивной популяции молочного скота в подконтрольных стадах

Технология производства молока оказывает существенное влияние на параметры молочной продуктивности и качества молока-сырья.

Технологические свойства молока характеризуются следующими основными показателями: содержание жира и белка; бактериальная обсеменённость; содержание соматических клеток; наличие ингибиторов; содержание сухих веществ — точка замерзания; термоустойчивость.

Существенное влияние на хранение, переработку и вкусовые качества молока оказывают уровень бактериальной обсеменённости и количество соматических клеток в 1 мл молока. Динамика параметров количества бактерий и соматических клеток в молоке зависит от различных факторов.

Показатель бактериальной обсеменённости молока отображает количество микроорганизмов в 1 мл молока. В молоке могут содержаться бактерии, дрожжи и плесневые грибки. Как правило, в молоке из здорового вымени не содержится бактерий,они попадают в молоко при доении из внешней среды. В данном случае, уровень санитарного состояния доильного зала или коровника, в случае линейного доения, оказывает значительное влияние на степень седиментации микроорганизмов.

При этом, основными источниками попадания микроорганизмов молоко являются:сосковый канал — от 0,01 до 1,0 тыс. микроб. кл.\мл; воздух в помещении — от 0,1 до 15,0 тыс. микроб. кл.\мл; загрязненные соски от 5,0 до 20,0 тыс. микроб. кл.\мл; доильное и холодильное оборудование — от 0,3 до 300,0 тыс. микроб. кл.\мл; доли вымени, пораженные инфекционными возбудителями до 20,0 тыс. микроб. кл.\мл.

Повышенная бактериальная обсеменённость – это результат несоблюдения гигие­нических требований при производстве молока и его хранении. Молоко является превосходной питательной средой для размножения бакте­рий. Охлаждение молока ниже 10°С позволяет значительно замедлить этот процесс, внедрение в 80-х годах прошлого столетия холодильных установок в животноводческих молочных предприятиях способствовало повышению качества молока, в целом. Контроль качества молока необходим для организации полноценного выращивания ремонтного молодняка на выпойке. Нередко, выпаивание сырого молока с повышенным содержанием соматических клеток, а также неблагоприятные условия микроклимат в животноводческом помещении отрицательно влияли на жизнеспособность молодняка в молочном периоде. Внедрение технологии выращивания телят в отдельных домиках, т.н. «холодный» метод выращивания, способствует улучшению иммунитета и повышению энергии роста животных (рис. 25).

Рис 25. Индивидуальный домик для телят в ООО «Агрофирма «Село имени Г.В.Кайшева»

Первые струйки молока, в которых содержится большое количество бактерий, сдаиваются в отдельную посуду (доильную кружку). Это позволяет одновременно контролировать здоровье вымени. Перед доением вымя тщательно обмывают, доильные стаканы надевают и снимают, не допуская засасывания воздуха.

Уровень соматических клеток в молоке определяется концентрацией клеток различных органов и тканей, а также молочными лейкоцитами. В частности, из них состоят ткани молочных проходов, участвующих в секреции молока и выводящие молоко. Затем молоко по молочным проходам выводится из вымени.

В вымени происходит постоянное обновление клеток эпителиальной ткани. Старые клетки отмирают и отторгаются. К этому добавляются клетки, выполняющие защитные функции в организме (лейкоциты). Поэтому соматические клетки постоянно присутствуют в молоке.

Однако, в отличие от бактерий, соматические клетки в выдоенном молоке, не размножа­ются. Количество соматических клеток, выделенное из здорового вымени, колеблется между 10,0 тыс. кл. и 100,0 тыс. кл. в 1 мл.

В соответствии с рекомендациями Международного комитета регистрации животных (ICAR), уровень соматических клеток в молоке здоровых коров не превышает 200,0 тыс. кл./мл. Этот показатель зависит от индивидуальных особенностей животного и его физиологического состояния. В начале и в конце лактации количество соматических клеток несколько выше, чем в другие периоды.

Высокая концентрация соматических клеток является признаком нарушения физиологического процесса секреции молока или заболевания. При количестве соматических клеток свыше 500,0 тыс. кл./мл качественная переработка молока ограничена, т.к. сопровождается пониженным содержанием казеина, молочного сахара, кальция, магния и фосфора и изменением физико-химических свойств молока.

Заболевания вымени существенно снижают уровень молочной продуктивности, что негативно сказывается на экономических показателях молочного скотоводства.Попадание в молоко ингибиторов (антибиотики, моющие сред­ства)может быть объяснено различными причинами. К их числу относится несоблю­дение предписанной концентрации моющих и дезинфицирующих средств, нарушение режима промывки, наличие остатков моющих средств в оборудовании.

Наибольшее количество ингибиторов в молоко попадает после введения лакти­рующим коровам антибиотиков. Использование специальных медикаментов дает возможность определить сроки выведения их из организма.

Антибиотики препятствуют переработке молока, поэтому молочные заводы строго контролируют их наличие. При обнаружении антибиотиков в молоке на поставщика может быть наложен запрет.

Лактирующих коров, проходящих медикаментозное лечение, как правило, доят отдельно. Молоко от них не может быть отправлено на переработку. Профилактическое меро­приятия по предотвращению заболеваний маститом проводят в сухостойный период.

Точка замерзания у нормального молока несколько ниже, чем воды и равна -0,525 °С. Это связано с содержанием в нем различных растворимых веществ. Повышение показателя точки замерзания молока не всегда является следствием простого добавления воды. Часто причина кроется в несоответствии рациона кормления, не­достаточностью содержания в нем минеральных веществ и соли, а также несбалан­сированностью энерго-протеинового соотношения. Разбавление молока водой может происходить из-за технических неисправно­стей в системе промывки доильных установок и холодильного оборудования.

Термоустойчивость молока – это показатель стабильности белка при его нагрева­нии. Основным фактором, влияющим на коагуляцию белка при его нагревании, является окружающая среда, где молоко производится. Она должна быть чистой и по возможности без бактерий. Кроме того, после доения молоко должно быть сразу охлаждено.

Основными причинами коагуляции белка являются:

— добавление молозива в сборное сырое молоко (норма — сдача молока после отела не ранее 6 дня);

— недостаточно или не вовремя охлажденное молоко привело к развитию бактерий.

— pH молока должна составлять 6,68 – 6,70. Если рН молока составляет 6,3, то это значит, что начался процесс закисания (происходит снижение содержания казеина и молока плохо поддается переработке).

— кормовые средства содержат остатки гербицидов или дезинфицирующих средств;

— молоко получено от больных животных и особенно имеющих высокую температуру;

— бактерии образуют энзимы, которые разрушают казеин белка.

Рис. 26. Современный доильный зал «Европараллель» в ООО «Агрофирма Село им. Г.В.Кайшева»

Следует иметь ввиду, что выделение хлопьев при нагревании молока может происходить и по другим причинам. К примеру, всплытие жировых шариков, если их оболочка нарушена в процессе помешивания.

«Алкогольная проба» проводится для определения пригодности молока для промышленной переработки, для этого берется смесь из 2 см³ молока и 2 см³ 68% спирта и перемешивается в чашке Петри. Выделение хлопьев свидетельствует о том, что молоко не поддается переработке.

Контроль за здоровьем вымени у коров необходим в условиях промышленного производства молока. Мастит является наиболее частым заболеванием вымени у коров и представляет собой вос­паление молочной железы, которое возникает в ответ на воздействие неблагоприятных факторов внешней среды (механических, физических, химических, биологических) и чаще всего вызванное инфекцией. Основным показа­телем заболевания, по которому принято диагностировать маститы при производстве молока, является концентрация соматических клеток в 1 мл молока. Увеличение количества соматических клеток — это проявление защитной реакции организма. Для выявления причины заболевания маститом, необходимо провести исследование физиологического состояния животное, выявить неблагоприятные факторы внешней среды и возможных инфекционных возбудителей.

Важным элементом повышения качества молока является внедрение современных технологий доения коров, при сокращении времени и пути доставки молока от доильного оборудования до охладительной емкости наблюдается улучшение важного технологического качества – бактериальной обсемененности, как это происходит в доильных залах (рис. 26).Современные системы мониторинга качества молока, установленные в современных доильных залах «Европараллель», «Елочка» дает возможность определить состояние здоровья вымени по результатам анализа сборного молока, поскольку фиксируется скорость молокоотдачи и электропроводность молока. Для оценки состояния здоровья вымени отдельных коров проводят либо анализ молока в лаборатории селекционного контроля качества молока, либо проверку долей вымени с помощью качественного теста по изменению физико-химических свойств молока (тест с мастидином или другими специальными растворами).

При увеличении содержании соматических клеток в молоке более 200,0 тыс. кл./ мл необходи­мо проводить следующие мероприятия:

— проверить вымя и соски для выявления в них патологических изменений

— провести анализ молока из отдельных четвертей вымени.Проявление маститов у коров способствует не только ухудшению качества молока, но и обуславливает экономический ущерб при производстве молока, так при уровне соматических клеток менее 100,0 тыс. кл./мл потерь молока не происходит, однако при дальнейшем увеличении концентрации соматических клеток наблюдаются следующие потери молока (табл. 7).

Таблица 14 – Влияние уровня соматических клеток на % потерь при производстве молока

Высокая концентрация соматических клеток в молоке должна стать сигналом возможного заболевания коров маститом. При положительной реакции на мастит и для определения возбудителя мастита необходимо отобрать пробы молока из отдельных четвертей вымени и отправить на анализ в микробиологическую лабораторию. По результатам анализа разработать организационные и ветеринарные мероприятия.

Не рекомендуется проводить лечение или выбраковку коров только по результа­там наличия повышенного уровня соматических клеток, поскольку если увеличение соматических клеток носит кратковременный характер, то причиной этому могла быть реакция организма на различные стрессовые факторы – перегруппировка производственных групп, смена рациона кормления, климатические и другие факторы, например передержка коров в накопителе перед доильным залом.

Рис. 27. Накопитель для коров перед доильным залом в ООО «Агрофирма «Село им. Г.В.Кайшева»

Повышенное содержание соматических клеток в молоке может быть обуслов­лено наследственной предрасположенностью, породой, семейством, линией быка-производителя. В настоящее время, методом определения индекса племенной цен­ности по количеству соматических клеток проводится селекционная работа по оценке нас­ледст­венной предрасположенности и ограничению использования нежелательных животных.

Период лактации также влияет на уровень соматических клеток в молоке, обычно этот показатель несколько выше в первые и в последние недели лактации, а также в последние недели стельности. По этой причине повышается вероятность заболевания вымени.

Низко посаженное вымя увеличивает риск повреждения и последующее заражение, ведущее к маститу.У высокопродуктивных животных чаще наблюдают повышение уровня содержа­ния соматических клеток в молоке, так как у них более высокий обмен веществ, а восприимчивость к стрессу, как правило, снижена.

Факторы внешней среды, в данном случае, технология содержания животных,оказывают влияние на увеличение соматических кле­ток в молоке. Влетнее время количество соматических клеток, как правило, выше, чем зимой (повышенная влажность и высокая температура, пастбище, влияние корма).Нарушение процесса доения, недостаточная гигиена вымени, короткий массаж, неправильное надевание доильных стаканов, долгое доение также приводят к увеличению соматических клеток в молоке. Аналогичный эффект вызывают неисправности доильной техники, высокий вакуум, колебания вакуума, уклон вакуум­ного трубопровода.

Нарушение гигиены доения, техники обмывки вымени и доильной установки, общая загрязненность коровника, отсутствие дезинфекции увеличивают риск повы­шенного содержания микроорганизмов и тем самым риск инфекционного заболева­ния, сопровождающегося ростом числа соматических клеток.

В меньшей степени этому способствуют ошибки при строительстве помещения. Повышенный риск повреждения вымени и, соответственно, его зараже­ния — острые решетки, гладкий настил, неправильная привязь, короткое стойло (бокс).

Оптимизация кормления укрепляет иммунную систему животных вследствие улучшения обеспеченности энергией, протеином, витаминами и микроэлементами, что в свою очередь приводит к нормализации обмена веществ и снижению содержа­ния соматических клеток в молоке.

Опасными для здоровья вымени являются инфекционные агенты — стрептококки, стафилококки, колибактерии и пиогенные бактерии (микоплазмы, микобактерии, дрожжи). Наиболее типичными возбудителями заболевания вымени являются стрептококки и стафилококки. Они передаются от вымени к вымени через руки доярок, доильные стаканы и полотенца.

Различают две формы мастита вымени:

Клинический мастит, с ярко выраженными признаками воспаления, характеризуется изменением внешнего вида вымени (покраснение, отеки, болезненность, повышенная температура, измененная секреция).

Субклиническая форма мастита, без выраженных клинических симптомов заболевания вымени, может быть выявлена только путем лабораторных исследова­ний.

Рекомендации по борьбе с маститом. Изучение как клинической, так и субклинической форм мастита является одним из сложных мероприятий. В связи с этим рекомендовано санирование больного стада, которое предусматривает:

— обследование животных на заболевание вымени

— проверку соблюдения технологий содержания, кормления и доения.

Разработка мероприятий в целях терапии должна включать способы лечения, необходимые медикаменты, период действия и выведения антибиотика из организма, нанесение меток на животных, повторных исследований и учета результатов (дата, количество микроорганизмов), устранения выявленных нарушений (мероприятия по гигиене вы­мени, изменения процесса доения, устранение неисправностей доильного оборудо­ва­ния и установок, изменение содержания животных и кормления).

При расчете затрат на санирование стада учитывают:

— стоимость проведения исследований

— стоимость медикаментов для выявления и лечения больных животных

— затраты, связанные с потерями товарного молока (выдержка времени выведе­ния антибиотика из организма)

— необходимость контроля проведения профилактических мероприятия (дезин­фекция сосков, полотенца и т.д.)

— потребность в выбраковке и восстановлении поголовья

— расходы на подготовку плана повышения дохода после санирования стада

— возможность увеличения объема производства молока

— улучшение качества молока и повышение цены реализации за сданное молоко

— снижение затрат на ремонт стада

— снижение затрат на медикаменты

— снижение трудозатрат в процессе работы (отсутствие специального лече­ния).

В современных высокопродуктивных стадах молочного скота, вследствие напряженности обменных процессов, несоответствия полов животноводческих помещений требованиям санитарной гигиены, несбалансированного кормления, проявления различных стрессовых ситуаций технологического характера, стала актуальной проблема поддержания здоровья конечностей. Заболевания конечностей встречаются практически во всех стадах молочного скота, особенно при плохом состоянии покрытия полов и неблагоприятных пастбищных условиях (плохое состояние и обработка щелевых полов, каменистая поверхность перегонов к пастбищам).

Заболевания могут быть как инфекционного, так и неинфекционного характера. Плохое состояние полов влияет на изменение нагрузки на копыта, что приводит к изменению роста костной ткани, трещинам в копытном роге и поражению копыт инфекциями.

Различия плотности копытного рога у различных животных определяются генетически. Клиническая картина выражается в изменении роста копытного рога (клювовидное копытце, туфлеобразное, сжатое, расходящееся копытце, двойная подошва, лимакс), отеках, хромоте, трещинах в копытном роге между роговыми слоями (пустая стенка копыта, двойная подошва), трещинах пальцевого мякиша (межпальцевая щель, распущенное копыто), инфекциями, ведущими к панарицию, межпальцевой гнили, язвам копытной подошвы.

При развитии заболевания копыт молочный скот характеризуется отсутствием аппетита, истощением, снижением продуктивности, нарушением воспроизводительных функций.

Профилактика заключается в систематической обрезке копыт у всего поголовья (1-2 раза в год), коррекции измененных копыт — при индивидуальном лечении животного, дезинфекции помещения, устранении негативных последствий технологии кормления и содержания (качество пола — бетон, щели, перегоны, пастбище). Хорошие результаты для профилактики копытных заболеваний дают ванны для дезинфекции копыт. Для этого применяют в проблемных стадах разрешенные средства, 1-2 раза еженедельно или же при каждом прогоне скота на выгульно-кормовые площадки. Хронически больных животных выбраковывают.

Наибольшую проблему при заболевании конечностей в последнее время представляет некробактериоз в копытной форме у молочных коров, который характеризуется как инфекционная болезнь с гнойно-некротическими поражениями нижних частей конечностей. Первичный занос возбудителя на ферму происходит вместе с больными или инфицированными животными. Затем инфекция приобретает стационарный характер с тенденцией к усилению тяжести патологического процесса.

Профилактика болезни заключается в проведении вакцинации крупного рогатого скота. Однако, только лишь проведение вакцинации не всегда обеспечивает успешную профилактику и ликвидацию болезни. Одним из наиболее эффективных лечебно-профилактических методов при поражениях конечностей некробактериозом являются ножные дезинфицирующие ванны. Для таких ванн чаще всего применяются 5-10 % растворы сульфата цинка, медного купороса или формалина. При этом для повышения результатов обработок целесообразно использовать секционные и комбинированные ванны.

Мероприятия по предупреждению некробактериоза и поддержанию здоровья конечностейвключают комплекс следующих мер:

— контроль уровня обменных процессов в организме животных и обеспечение полноценного кормления на всех стадиях производственного цикла

— подбор родительских пар с учетом влияния генетических факторов на состояние здоровья конечностей у потомства

— периодическая (не менее двух раз в год) обрезка и расчистка копыт у всех животных стада

— мероприятия по повышению устойчивости животных к заболеванию

— улучшение условий содержания и предупреждение травматизма

— профилактические (не менее двух раз в год — перед выгоном животных на пастбище и перед постановкой на стойловое содержание) ножные ванны

— технологические дезинфекции помещений, выгульных площадок (дворов), инвентаря, транспорта и т. д.

— вакцинация в случае реальной угрозы заноса возбудителя болезни в хозяйство (на ферму).

Применять вакцинацию против некробактериоза в благополучных хозяйствах без реальной угрозы заражения животных обычно нет необходимости.

Для оздоровления неблагополучного поголовья и контроля болезни используют комплекс методов и средств, главные из которых:

— изоляция больных и подозреваемых на заболевание животных

— регулярная расчистка копыт, обрезка отросшего копытного рога, удаление пораженных и некротизированных тканей

— вынужденная вакцинация животных с терапевтической целью

— профилактические и лечебные ножные ванны

— лечение больных животных или сдача на убой тяжело больных

— вынужденные текущие и заключительная дезинфекции помещений, выгульных площадок (дворов), инвентаря, транспорта, санация пастбищ

— утилизация трупов, отходов, обеззараживание навоза

— мероприятия по повышению устойчивости животных к заболеванию

— улучшение условий содержания и профилактика травматизма

— действия по охране здоровья людей.

Таблица 15 — Кормовые рационы для коров по фазам лактации в засушливых зонах, кг

Организация правильного кормления коровы обеспечивает высокое качество молока-сырья и заключается в удовлетворении потребности в энергии и протеине за счет специальных кормовых добавок, которые, не подвергаясь сбраживанию в рубце, транзитом поступают в тонкий кишечник, легко усваиваются независимо от состояния микрофлоры рубца.

Для полноценного минерально-витаминном питания на протяжении всей лактации и необходимо в сухостойный период обеспечить использованием качественных премиксов и добавок.

Долю концентрированных кормов в рационе после отела увеличивают до тех пор, пока уровень концентратов не будет соответствовать уровню суточных удоев. Физиологично скармливание концентратов увеличивать не более чем 0,5 кг на литр молока, но не более чем 12 кг в суточном рационе. Скармливаемое сено должно быть заготовлено в фазу развития травостоя, когда в сухом веществе травы уровень клетчатки будет в пределах 20 %.

Кукурузный силос, наоборот, нужно заготавливать в фазу восковой спелости зерна. В этом случае обеспечивается не только повышение энергетической ценности корма, но и получение корма с оптимальной кислотностью (рН 4,0–4,2). Зерновые концентраты лучше скармливать грубого помола. Они более охотно поедаются коровами, а также стимулируют жизнедеятельность микрофлоры.

В соответствии с требованиями национальной нормативно-правовой документации после просеивания зерновой смеси или комбикорма на сите с диаметром ячеек 2 мм на нем не должно оставаться их более 20 %. Для эффективного переваривания в рубце у коров концентрированные корма в рационе не должны превышать 40 % по сухому веществу. Хотя во многих зарубежных рекомендациях уровень их скармливания ограничивают 60 процентами.На продуктивность коровы за лактацию оказывает существенное влияние длительность сервис-периода. Как только лактирующая корова становится стельной, секреторная активность тканей молочной железы уменьшается из-за влияния гормонов, вырабатываемых яичниками оплодотворенной матки, на гипофиз, который в свою очередь выделяет гормоны, регулирующие уровень секреции и состояние секретирующей молоко ткани.

Вполне очевидно, что если сервис-период оказывается коротким, то лактация бывает укороченной. Стандартным считается сервис-период не более 80 дней. Рекомендуется первое осеменение коров проводить через 60 дней после отела.

Таблица 16 — Кормовые рационы коров по фазам лактации в зонах достаточного увлажнения, кг

В этом случае, до первого осеменения врач-гинеколог должен при вести состояние половой сферы коровы в нормальное. Эта истина эффективна для стад средней и высокой продуктивности. В рационах высокопродуктивных коров оптимальным следует считать уровень клетчатки 16–20 % от сухого вещества. Он не должен быть менее 14 % – в этом случае возможно нарушение деятельности пищеварительного тракта. При содержании клетчатки более 25 % в сухом веществе интенсивно снижается переваримость питательных веществ, а следовательно – и продуктивность коров.

Контроль рационов по сухому веществу позволяет судить о способности коровы съесть предназначенные ей корма. Чем выше продуктивность коров, тем больше они должны потреблять кормов, тем лучшего качества должны быть объемистые корма, а в рационе соответственно увеличению удоев возрастает количество скармливаемых концентрированных кормов.

Рис. 28. Система автоматизированного кормления коров в СПК колхоз-племзавод «Казьминский»

Всех новотельных коров рекомендуется ставить на раздой, т.е. с целью увеличения молочной продуктивности кормление делать авансированным. Раздой начинают с того времени, когда молочная железа коровы после отела придет в нормальное состояние. Рацион коровы, при этом составляют увеличенным на 3–4 кормовые единицы по сравнению с фактическим удоем, если удой возрастает, то авансирование продолжают, при установлении удоя на одном уровне авансирование прекращают, корма скармливают из расчета на получение достигнутой продуктивности.

В рационах высокопродуктивных коров оптимальным следует считать уровень клетчатки 16–20 % от сухого вещества. Он не должен быть менее 14 % – в этом случае возможно нарушение деятельности пищеварительного тракта. При содержании клетчатки более 25 % в сухом веществе интенсивно снижается переваримость питательных веществ, а следовательно – и продуктивность коров.Контроль рационов по сухому веществу позволяет судить о способности коровы съесть предназначенные ей корма. Чем выше продуктивность коров, тем больше они должны потреблять кормов, тем лучшего качества должны быть объемистые корма, а в рационе соответственно увеличению удоев возрастает количество скармливаемых концентрированных кормов.

Рис. 29. Дозированная раздача зеленой массы коровам в СПК КПЗ «Казьминский»

Всех новотельных коров рекомендуется ставить на раздой, т.е. с целью увеличения молочной продуктивности кормление делать авансированным. Раздой начинают с того времени, когда молочная железа коровы после отела придет в нормальное состояние. Рацион коровы, при этом составляют увеличенным на 3–4 кормовые единицы по сравнению с фактическим удоем, если удой возрастает, то авансирование продолжают, при установлении удоя на одном уровне авансирование прекращают, корма скармливают из расчета на получение достигнутой продуктивности.

при установлении удоя на одном уровне авансирование прекращают, корма скармливают из расчета на получение достигнутой продуктивности.

Авансирование кормления для раздоя осуществляют за счет кормов, которые способствуют молокообразованию (свекла, сено, сенаж, силос хорошего качества, комбикорм).

Рис. 30. Пример высококачественного выполнения инженерных мероприятий при заготовке силоса в СПК КПЗ «Казьминский»

В ряде хозяйств нами опробованы энергетические кормовые добавки Каостарт, Лакто – энергия, Лакто – Нео, производимые фирмой Мустанг Ингредиентс, которые дают хорошие результаты при их скармливании за две недели до отела и 4–6 недель после, но необходимо помнить, что их используют параллельно с витаминно-минеральным премиксом, так как энергетические добавки витаминов и минеральных веществ не содержат.

Они эффективны тем, что препятствуют быстрой потере упитанности, профилактируют кетозы и ожирение печени, стимулируют аппетит; стимулируя поедаемость кормов, повышают продуктивность; нормализуют соотношение жирных кислот в рубце; оказывают положительное влияние на формирование яйцеклетки и ее оплодотворение.

Следует упомянуть здесь также еще и о продукте этой же фирмы — Аромабиотик, который участвует в формировании иммунитета, снижает заболевание маститами на 50 %, активизирует метаболизм азота протеина рациона, усиливая синтез белка молока, увеличивает рH в рубце, тем самым снижает риск возникновения ацидозов, а также снижает выброс CH4 (метана) при жвачке, что является показателем улучшения использования энергии, снижает согревание корма в течение 24 часов, подготовленного к скармливанию, тем самым создает предпосылку для однократного кормления животных.

В кормовых рационах зимнего периода содержания всех зон края наблюдается недостаток микроэлементов, витаминов, для их пополнения вводить в состав комбикормов необходимо вводить витаминно-минеральный премикс, например Белкофф. Для коров комбикормовая промышленность выпускает комбикорма – концентраты под номерами от К-60-1 до К-60-7. Нормирование концентрированных кормов (смесей или комбикорма) можно осуществлять, пользуясь следующим принципом:

— сухостойные коровы, глубокостельные нетели с удоем до 10 кг – 2,0 кг смеси + 0,5 кг шрота;

– дойные коровы с удоем 10–15 кг – 3,0 кг смеси + 0,5 кг шрота + 0,75 кг премикс;

– дойные коровы с удоем 15–20 кг – 6,0 кг смеси + 1,5 кг шрота, 1 кг премикс;

– дойные коровы с удоем 20–25 кг – до 7,5 кг смеси + 2 кг шрота, 1,5 кг премикс;

– дойные коровы с удоем 25–30 кг – до 10,0 кг смеси + 2,5 кг шрота, 2 кг премикс;

– дойные коровы с удоем более 30 кг – до 12,0 кг смеси + 2,5 кг шрота, 2,5 кг премикс.

Эта схема вполне применима при массовом раздое коров.

Скармливание концентратов нужно корректировать как минимум один раз в месяц после проведения контрольного доения, а лучше два. Двукратное корректирование скармливания концентратов эффективнее однократного, т. к. позволяет дополнительно увеличить удой еще примерно на 5 %. При такой технике скармливания концентратов валовой удой молока за лактацию может увеличиться еще до 300 кг. Существенным моментом при такой технике раздоя коров стада является кратность скармливания концентратов. Стельным сухостойным, дойным стельным животным с продуктивностью до 15 кг можно скармливать концентраты двукратно, с продуктивностью свыше 15 до 25 кг – трехкратно, свыше 25 кг – четырехкратно и шестикратно.

Наиболее критическими периодами являются первый месяц после отела и последний месяц перед отелом. Поэтому, в эти периоды рационы коров должны быть полноценными не только по наличию в них питательных и биологически активных веществ, но и оптимальными по соотношению кормов. Предрасполагающим фактором к кетозу может быть скармливание недоброкачественного силоса высокой кислотности (низкая рН). Как правило, это корм с влажностью выше 70 % – в нем накапливается из лишнее количество уксусной и масляной кислот. Сопутствующим фактором может быть ограниченный моцион, а тем более его отсутствие.

Одним из профилактических приемов кетоза является полноценное кормление коров в сухостойный период и впервые три месяца лактации – когда корова не всегда способна потребить и переварить то количество кормов и питательных веществ, которое требуется для образования молока.

Однотипное кормление крупного рогатого молочного скота имеет ярко выраженный сезонный характер: в зимний стойловый период скармливают силос, сенаж и грубые корма, а в летний – пастбищные зеленые или зеленые корма из системы зеленого конвейера.

Используемые на корм зеленые корма скашиваются иногда в ранней фазе вегетации, в период, когда растения сочные, но с низким содержанием клетчатки. В это время урожай еще полностью не сформировался, в результате этого наблюдается недобор кормов с единицы площади до 30 %. В результате этого под зеленый корм вынужденно увеличивается количество площадей, что сокращает ресурсы заготовки кормов для стойлового периода.

При кормлении зелеными кормами хозяйство вынуждено несколько раз в месяц менять состав и структуру рациона, что приводит к нарушению рубцового пищеварения и как следствие снижению продуктивности. Немаловажной причиной снижения продуктивности в традиционно летнем рационе также является недостаток клетчатки, которая играет существенную физиологическую роль в пищеварении жвачных. Кроме того, обеспечение молочной фермы кормами в дождливую погоду сопряжено с большими трудностями. Эти обстоятельства даже в хорошо спланированную систему зеленого конвейера вносят нежелательные коррективы: одни культуры уже скормлены, другие не созрели, образуются так называемые «окна», из-за чего резко снижается продуктивность коров.

Система однотипного кормления, предполагающая использование при кормлении жвачных одного или нескольких зимних кормов в течение всего года, позволяет повысить продуктивность коров прежде всего за счет исключения «кормовых стрессов», возникающих при частой смене в рационе зеленых кормов. При интенсивном использовании земли и внесении значительных количеств органических и минеральных удобрений под кормовые культуры в зеленых кормах накапливается небелковый азот, в том числе нитратов. При скармливании таких кормов в свежем виде нарушается нормальная деятельность организма молочных коров, снижается их продуктивность. При консервировании зеленых кормов отрицательное действие нитратов снижается.

Устранить отмеченные недостатки в кормопроизводстве и кормлении молочного скота можно путем перехода на круглогодовое однотипное его кормление: или частично используя зеленый и консервированный корм, или полностью скармливая летом консервированные корма (силос, сенаж, сено). При организации однотипного кормления скота силос является одним из основных кормов. Если силосуют кукурузу в ранние фазы (поукосные и пожнивные), то ее влажность свыше 75 %. При такой влажности корм бывает перекисленным, часто с наличием масляной кислоты.

Предотвратить это можно, добавляя в силосуемое сырье солому или мякину 10–12 % от массы силосуемого сырья. Сенаж является одним из биологически полноценных кормов, важно только выдержать технологию его заготовки. В последние годы распространяется новая технология заготовки и хранения сенажа – «сенаж в упаковке». Эта технология позволяет заготавливать корм, не отличающийся по биологической полноценности от травы, из которой он заготавливается. Использование 1000 т такого сенажа дойным коровам экономит расход комбикорма в пределах 200 т. Важным этапом организации однотипного кормления является подготовка однородной смеси для скармливания. Эта смесь может скармливаться в различных сочетаниях силоса, сенажа и сена с зеленым кормом. Для подготовки такой смеси используются самые различные смесители. В племзаводах «Ленинский путь» Новокубанского района Краснодарского края, «Казьминский» Ставропольского края получен положительный результат скармливания многокомпонентного корма дойным коровам из сена люцерны, кукурузного силоса, сенажа, свекловичной патоки, а летом добавления к этой смеси свежего измельченного зеленого корма. Такая технология использования корма позволяет избежать потерь кормов. Нормирование питательных веществ при составлении смеси обеспечивает хорошее здоровье, нормальное воспроизводство и реализацию генетического потенциала продуктивности.

Таблица 17. Динамика содержания жира и белка в молоке в стадах голштинской (I) и черно-пестрой (II) породв 2018 и 2019 гг.

Таким образом, обеспечить высокую молочную продуктивность, предотвратить нарушение обмена веществ можно лишь при содержании животных на сбалансированных рационах кормления.

Использование сбалансированных рационов кормления коров позволяет оптимизировать конверсию питательных веществ кормов в молочное сырье, так при оптимальном рационе затраты кормов на биосинтез 1 кг молока у высокопродуктивных коров составляют 0,9-1,0 кормовых единиц – для скота голштинской и черно-пестрой пород.

Молочный жир и белок являются одними из основных компонентов молока, определяющими значимость этого высокоценного продукта питания для человека, в связи с чем, изучение динамики содержания жира и белка в молоке в стадах голштинской и черно-пестрой пород представляет как научный, так и практический интерес. Результаты мониторинга, представленные в табл.17, получены на основании собственных исследований, проводимых в Лаборатории селекционного контроля качества молока ФГБОУ ВО Ставропольский ГАУ, номер госрегистрации № 262704801000 на протяжении 2018-2019 гг.

Рис. 31. Динамика содержания жира в молоке у коров голштинской породы (%), в 2018 и 2019 гг.

Среднегодовое содержание молочного жира у коров голштинской породы в 2018 и 2019 гг. составило, соответственно, 4,11% и 3,96%, а молочного белка, соответственно, 3,36% и 3,26%.У коров черно-пестрой породы среднегодовое содержание молочного жира в 2018 и 2019 гг. составило, соответственно, составило 4,01% и 4,02%, а молочного белка, соответственно, 3,34% и 3,38%.

Волатильность среднегодового содержания молочного жира у коров голштинской породы составила 0,15 абс. процента, а молочного белка, соответственно, 0,1 абс. процента. У коров черно-пестрой породы, колебания среднегодового содержания молочного жира между 2018 и 2019 гг. составили 0,01 абс. процента или на 0,14 абс. процентов ниже, чем у голштинской породы. Колебания содержания молочного белка у коров черно-пестрой породы в эти же периоды также значительно были ниже, чем у голштинской породы и составили 0,04 абс. процента, что на 0,06 абс. процентов меньше, чем у голштинской породы.

Рис. 32. Динамика содержания жира в молоке у коров черно-пестрой породы (%), в 2018 и 2019 гг.

Таблица 18. Усредненные показатели содержания жира в белка в молоке у коров голштинской и черно-пестрой пород

I – голштинская порода II – черно-пестрая порода

Более стабильные показатели содержания молочного жира и белка в молоке у коров черно-пестрой породы, по сравнению с таковыми же показателями в молоке у коров голштинской породы могут свидетельствовать о более высокой устойчивости генотипов черно-пестрой породы к внешним паратипическим факторам, по сравнению с голштинской породой.

При высоких среднегодовых показателях содержания молочного жира в 2018 и 2019 гг., визуально показана на графиках, некоторое снижение волатильности показателей молочного жира между 2018 г и 2019 г. Так, если в 2018 году дисперсия параметра «молочный жир» у коров голштинской породы составила 0,04, а стандартная статистическая ошибка (±m) составила 0,06, то в 2019 году эти показатели имели значения, соответственно, 0,05 и 0,06. Математическая разница между наибольшими и наименьшими показателями по содержанию молочного жира в молоке у коров голштинской породы составила 0,64 абс. процента в 2018 году, и 0,84 абс. процента в 2019 году. У коров черно-пестрой породы, показатели дисперсии и стандартной статистической ошибки (±m) в 2018 и 2019 гг. составили, соответственно, 0,007 и 0,02; и 0,04 и 0,06. Математическая разница между наибольшими и наименьшими показателями молочного жира в молоке у коров черно-пестрой породы в 2018 и 2019 гг. составила, соответственно, 0,29 и 0,55 абс. процентов, что по абсолютным значениям также в 1,5-1,8 раз ниже, чем у коров голштинской породы.

Рис. 33. Динамика жира в молоке у коров голштинской (I) и черно-пестрой (II) пород в 2018-2019 гг.

В таблице 18. приведены усредненные показатели содержания молочного жира и белка в молоке у коров голштинской и черно-пестрой пород, при графическое отображение среднегодовых значений молочного жира и белка, представленные на рис. 33, 34, позволяют предположить наличие некоторой закономерности во влиянии внешних паратипических факторов на динамику среднемесячных показателей жира в белка в молоке. На основании данных Федеральной службы по гидрометеорологии и мониторингу окружающей среды (Росгидромет) (Доклад об особенностях климата на территории Российской Федерации за 2018 год. – Москва, 2019. – 79 стр. — URL: https://meteoinfo.ru/images/media/climate/rus-clim-annual-report.pdf; Доклад об особенностях климата на территории Российской Федерации за 2019 год. – Москва, 2020. – 97 стр. — URL: https://meteoinfo.ru/images/news/2020/03/12/o-klimate-rf-2019.pdf), а также открытых европейских источников (CLIMATE-DATA.ORG. URL: https://ru.climate-data.org/), был проведен анализ динамики климатических параметров на протяжении 2018-2019 гг. в Ставропольском крае (рис. 35).

Рис. 34. Динамика белка в молоке у коров голштинской (I) и черно-пестрой (II) пород в 2018-2019 гг.

При этом было установлено, в указанном периоде наблюдались аномальные повышения среднегодовых температур, на 1,93-2,03⁰С в 2018 году, и на 1,89⁰С в 2019 году, по сравнению с предыдущим периодом с 1961-1990 годов. Причем, в 2018 году эти изменения температуры были выражены сильнее, чем в 2019 году, что отображено и в указанном выше коэффициенте.

Рис. 35. Средняя температура (°F) в Ставропольском крае за период 2018-2019 гг.

Рис. 36. Динамика молочного жира (%) в молоке у коров голштинской (I) и черно-пестрой (II) пород в 2018-2019 гг.

Изучение корреляционных взаимосвязей между динамикой температуры (по Фаренгейту) и усредненными показателями содержания молочного жира и белка в молоке у коров изучаемых пород показало, что для коров голштинской породы коэффициент корреляции между температурным фактором и жиром в молоке составил r = — 0,74, а для белка, соответственно, r = — 0,77. Для коров черно-пестрой породы коэффициент корреляции между динамикой температуры и содержанием жира в молоке составил r = — 0,68, а для белка, соответственно, r = — 0,32. Таким образом, отображается высокая степень отрицательной корреляции между температурным фактором и содержанием жира и белка в молоке, причем, у коров голштинской породы эта взаимосвязь выражена сильнее, что подчеркивает необходимость более тщательного контроля климатических факторов при разведении голштинского скота. Для нивелирования внутрихозяйственных и технологических факторов при определении степени влияния температурного фактора на содержание молочных компонентов (рис. 36), была изучена коррелятивная взаимосвязь между среднеквартальными величинами указанных факторов.

Рис. 37. Динамика молочного белка (%) в молоке у коров голштинской (I) и черно-пестрой (II) пород в 2018-2019 гг.

При этом была установлена практически полная взаимосвязь между изучаемыми факторами: коэффициент корреляции между динамикой молочного жира и белка среднеквартальными температурными показателями составил, соответственно, r = — 0,99. Для коров черно-пестрой породы коэффициент корреляции между динамикой молочного жира и белка и среднеквартальной температурой составил, соответственно, r = — 0,71 и r = — 0,80. Проведенный анализ динамики молочных компонентов (жир и белок) на протяжение 2018 и 2019 гг. позволяет сделать вывод о том, что изученное молочное сырье относится к категории высококачественного, поскольку средние показатели молочного жира и белка соответствуют нормативным параметрам (Приказ Минсельхоза РФ от 28.10.2010 г. №379 «Об утверждении Порядка и условий проведения бонитировки племенного крупного рогатого скота молочного и молочно-мясного направления продуктивности», а также превышают их на 10-15%.

Результаты исследования основных параметров качества молока племенных коров СПК колхоз-племзавод «Казьминский», ООО «Агрофирма «Село имени Г.В.Кайшева», проведенные в Лаборатории селекционного контроля качества молока ФГБОУ ВО Ставропольского ГАУ показывают, что наблюдаются изменения показателей молочного жира и белка на протяжении различных сезонов года. Технология содержания молочных коров в данных племенных хозяйствах отличается, так в СПК колхоз-племзавод «Казьминский» коровы содержатся на привязи, доение коров – линейное. В ООО «Агрофирма «Село имени Г.В.Кайшева» содержание коров беспривязное, доение коров происходит в доильном зале.

В целом, можно характеризовать параметры молочного жира как характерные для голштинской и голштинизированной черно-пестрой пород. При привязной системе содержания животные в меньшей степени подвержены стрессовой нагрузке, вследствие промышленной технологии производства молока, в то же время, при этом животные лишены моциона и могут обладать пониженным иммунитетом. При беспривязной системе содержания значительно снижаются затраты на содержание животных, однако, зачастую наблюдается снижение параметров воспроизводства стада вследствие снижения контроля за индивидуальным состоянием коров.

Анализ динамики содержания молочного жира в молочном сырье племенных хозяйств показывает, что наибольшая стабильность уровня молочного жира наблюдалась при линейной системе доения и привязной системе содержания коров в СПК колхоз-племзавод «Казьминский».

2.2. Изучение экстерьерных особенностей статей телосложения, оказывающие влияние на продуктивное долголетие различных генотипов высокопродуктивного крупного рогатого скота молочного направления продуктивности

В СПК колхоз-племзавод «Казьминский» Кочубеевского муниципального района Ставропольского края находится племенной завод по разведению крупного рогатого скота черно-пестрой породы. В стаде зарегистрировано 850 коров со средней продуктивностью молочной продуктивностью 8050 кг молока от коровы за год, жир 3,86%, белок 3,10%, что характеризует стадо как высокопродуктивное с показателями качества молока, характерными для коров голштинской породы.

Поголовье крупного рогатого скота, в основном, относится к четырем линиям всемирно известных выдающихся быков-производителей голштинской породы: Рефлекшн Соверинг №198998, Монтвик Чифтейн №95679, Вис Бэк Айдиал №1013415, Пабст Говернера №882933.

Проведение экстерьерной оценки коров-дочерей наиболее известных быков-производителей голштинской породы позволяет определить общие тенденции по управлению молочным стадом на основе применения современных методов линейной оценки молочного скота.

Рис. 38. Гистограмма линейной оценки коров-дочерей линии Вис Бэк Айдиал №1013415

Рис. 39. Гистограмма линейной оценки коров-дочерей линии Вис Бэк Айдиал №1013415 (п=51) с отображением направления селекции для достижения желательного производственного типа коров

Результаты сводной оценки коров-дочерей (п=51) линии Вис Бэк Айдиал №1013415вСПК колхозе-племзаводе «Казьминский», представленные на рис. 38, 39 показывают, что наиболее выраженными технологическими признаками с положительной селекционной оценкой (>5 баллов) являются следующие параметры: рост, глубина вымени и толщина плюсной кости.

Признаки, имеющие оценку в пределах 5 баллов и характеризующиеся как средние признаки, нуждающиеся в умеренном улучшении среди оцененных первотелок племзавода «Казьминский», это – расположение задних сосков и длина передних сосков вымени, поддерживающая связка, состояние скакательного сустава, задние ноги, вид сзади и угловатость ребер, глубина груди, а также длина крестца.

Признаки, имеющие балльную оценку ниже 5, нуждаются в скорейшем селекционном улучшении, это такие показатели: ширина, угол наклона и длина крестца, угол постановки копыт и постановка задних ног сбоку, ширина груди, размещение передних сосков, ширина и высота крепления вымени, крепление вымени спереди.

Для достижения желательного модельного линейного профиля коровы производственного типа в стаде необходимо повысить балльную оценку линейных статей экстерьера: длина крестца – на 2,0 балла (+2,0); ширина груди +2,0; глубина груди +1,3; угловатость ребер +2,0; задние ноги, вид сзади +1,5; задние ноги, вид сбоку + 1,5; угол постановки копыт +2,0; состояние скакательного сустава +2,2; толщина плюсной кости +0,5; крепление вымени спереди +3,2; высота крепления вымени +2,5; ширина прикрепления вымени +2,5; поддерживающая связка +1,7; глубина вымени +0,7; размещение передних сосков +2,5; длина передних сосков +0,8; расположение задних сосков +0,6; угол наклона крестца +2,8; ширина крестца +2,5; рост +0,3; обмускуленность +1,0; упитанность +1,0; характеристика передвижения +1,0, темперамент + 1,0.

Анализ линейного профиля коров-дочерей линии Рефлекшн Соверинг №198998 (п=135) (рис. ) показал, что аналогично с коровами-сверстницами линии Вис Бэк Айдиал №1013415, свыше 5 баллов имеют хорошо выраженные признаки экстерьера – рост животного, глубина вымени, расположение задних сосков, толщина плюсной кости, поддерживающая связка вымени и глубина груди.

Рис. 40. Гистограмма линейной оценки коров-дочерей линии Рефлекшн Соверинг №198998 (п=135)

Признаки, имеющие оценку в пределах 5 баллов и характеризующиеся как средние признаки, нуждающиеся в умеренном улучшении среди оцененных первотелок племзавода «Казьминский», это – толщина сосков, задние ноги, вид сзади, темперамент и характеристика передвижения.

Рис. 41. Гистограмма линейной оценки коров-дочерей линии Рефлекшн Соверинг №198998 (п=135)с отображением направления селекции для достижения желательного производственного типа коров

Признаки, имеющие балльную оценку ниже 5, нуждаются в скорейшем селекционном улучшении, это такие показатели: ширина, угол наклона и длина крестца, угол постановки копыт и постановка задних ног сбоку, ширина груди, размещение передних сосков, ширина и высота крепления вымени, крепление вымени спереди.

Для достижения желательного модельного линейного профиля коровы производственного типа в стаде коров-дочерей линии Рефлекшн Соверинг №198998необходимо повысить балльную оценку линейных статей экстерьера: длина крестца – на 1,9 балла (+1,9); ширина груди +2,1; глубина груди +1,7; угловатость ребер +2,2; задние ноги, вид сзади +1,5; задние ноги, вид сбоку + 1,7; угол постановки копыт +2,1; состояние скакательного сустава +2,3; толщина плюсной кости +0,6; крепление вымени спереди +3,3; высота крепления вымени +2,5; ширина прикрепления вымени +2,5; поддерживающая связка +1,7; глубина вымени +0,7; размещение передних сосков +2,7; длина передних сосков +0,8; расположение задних сосков +0,6; угол наклона крестца +3,0; ширина крестца +2,5; рост +0,3; обмускуленность +1,0; упитанность +1,0; характеристика передвижения +1,0, темперамент + 1,0.

Анализ линейного профиля коров-дочерей линии Монтвик Чифтейн №95679 (n=49) показал, что желательных параметров достигли следующие экстерьерные признаки, которые имеют балльную оценку свыше 5,0: рост животного (в крестце), расположение задних сосков, длина передних сосков, глубина вымени, поддерживающая связка вымени, толщина плюсной кости, угловатость ребер и глубина груди.

Признаки экстерьера, имеющие среднюю бальную оценку на уровне 5 балов и характеризующиеся как признаки, которые необходимо поддерживать на существующем уровне при некотором селекционном тренде на улучшение и повышение бальной оценки: толщина сосков, состояние скакательного сустава, задние ноги, вид сзади, ширина груди и длина крестца, темперамент и характеристика передвижения. Улучшение признаков необходимо проводить путем индивидуального закрепления быков-производителей с препотентными способностями по конкретным признакам.

Рис. 42. Гистограмма линейной оценки коров-дочерей линии Монтвик Чифтейн №95679 (n=49)

К параметрам линейного профиля, нуждающимся в селекционном улучшении относятся признаки, имеющие балльную оценку ниже 4,5 баллов: упитанность и обмускуленность, ширина и угол наклона крестца,

Рис. 43. Гистограмма линейной оценки коров-дочерей линии Монтвик Чифтейн №95679 (n=49) с отображением направления селекции для достижения желательного производственного типа коров

размещение передних сосков, ширина и высота прикрепления вымени, крепление вымени спереди, угол постановки копыт и задние ноги, вид сбоку.

Для достижения желательного модельного линейного профиля коровы производственного типа в стаде коров-дочерей линииМонтвик Чифтейн №95679необходимо повысить балльную оценку линейных статей экстерьера: длина крестца – на 1,8 балла (+1,8); ширина груди +1,9; глубина груди +1,7; угловатость ребер +1,9; задние ноги, вид сзади +1,5; задние ноги, вид сбоку + 1,7; угол постановки копыт +1,9; состояние скакательного сустава +2,0; толщина плюсной кости +0,6; крепление вымени спереди +3,0; высота крепления вымени +2,5; ширина прикрепления вымени +2,5; поддерживающая связка +1,8; глубина вымени +0,8; размещение передних сосков +2,5; длина передних сосков +0,7; расположение задних сосков +0,6; угол наклона крестца +3,0; ширина крестца +2,5; рост +0,2; обмускуленность +1,0; упитанность +1,3; характеристика передвижения +1,0, темперамент + 1,0.

Изучение наследуемости экстерьерных признаков отечественными и зарубежными авторами (О.В.Назарченко, 2012; П.Н. Прохоренко, 2005; О.М. Шевелева, 2006; Г.П. Лещук, 2006; В.И Фисинин, 2006; Н.И. Стрекозов, 2007; H.A.Попов, В.Ю. Сидорова, 2007; Л.Ю. Овчинникова, 2007; С.А. Гриценко, 2008; Л.К. Эрнст, Н.А. Зиновьева, 2008) показало, что наследственность является частью фенотипа, которая связана с генетикой.

Установлено, что некоторые признаки экстерьера формируются в большей степени генетическими факторами,коэффициент наследуемости может принимать значение 1,0 или 100%, в то же время, на формирование некоторых признаков наследственные факторы имеют минимальное значение, коэффициент может составлять 0,0, что будет обозначать, что не существует генетического компонента, который оказывает влияние на формирование признака. Научно-практическими опытами доказано, что хорошо наследуются признаки с коэффициентом 0,35 или выше. Например, такие характеристики, рост и глубина туловища являются высоко наследуемыми, поскольку они связаны с формированием скелета животных.Одновременно с другими параметрами скелета и процентом жира и белка молока, выходом жиров и белков есть целый ряд значений коэффициента наследуемости 0,25-0,4 или 25-40% в зависимости от дисперсии этих признаков в молочном стаде.

Таблица 19. Влияние наследственных факторов на формирование экстерьерных параметров

Признаки, обусловленные формированием хрящевой и соединительной ткани, такие как, переднее прикрепление вымени, как высота и ширина вымени сзади и глубина вымени имеют умеренную наследственность, ниже 0,25 или 25%. Низко наследуемые признаки, как правило, сложнее измерить и они в большей степени попадают под влияние внешних паратипических факторов. Поэтому в верхней части списка низко наследуемых черт находятся угол наклона копыт и ноги.

Признаки воспроизводства стада, такие как плодовитость коров слабо наследуются. Поскольку эти признаки попадают под влияние многих факторов, которые могут влиять на воспроизводительные качества каждой коровы:уровень кормления, комфортность содержания, состояние здоровья и др. В настоящее установлено, что плодовитость определяется наследственностью только на 4%. Поэтому изменение этой тенденции является важной задачей современных селекционно-племенных мероприятий.

Для достижения желательных параметров экстерьерного профиля в стаде молочного скота черно-пестрой породы СПК «Казьминский», с учетом коэффициентов наследуемости, необходимо в первоочередном порядке улучшить следующие параметры экстерьера животных различной линейной принадлежности:

— ширина и угол наклона крестца – улучшение этих признаков на 2,5-3 балла позволит повысить легкость отелов у коров и улучшить параметры воспроизводства молочного стада;

— размещение передних сосков, поддерживающая связка вымени, ширина и высота прикрепления вымени, крепость крепления вымени спереди, угловатость ребер – улучшение этих признаков на 2-3 балла позволит повысить технологические свойства вымени, сократить выбраковку коров по технологическим признакам, улучшить молочные качества животных;

— глубина и ширина груди, состояние скакательного сустава, угол постановки копыт – улучшение этих признаков на 1-2,5 балла позволит увеличить широтные промеры у животных, увеличить размеры пищеварительного тракта и повысить потенциал молочной продуктивности у коров, улучшить состояние конечностей и сократить выбраковку животных по указанным технологическим признакам.

Рис. 44. Количество балов, необходимых для достижения желательного модельного линейного профиля коровы производственного типа потомками основных линий быков-производителей в молочном стаде

2.3.Разработка инновационного подхода при подборе родительских пар в молочном скотоводстве, предусматривающего использование быков-производителей с препотентными способностями по улучшению желательных экстерьерно-конституциональных и технологических признаков

Современное молочное скотоводство основано на применении различных национальных систем управления высокопродуктивными генетическими ресурсами молочного скота, которые консолидированы общими принципами Международного комитета регистрации животных (ICAR) и включают в себя идентификацию животных, учет продуктивных и молочных качеств животных, регулярную индивидуальную оценку качества молока у коров, мониторинг распространения изученных генетических аномалий, линейную оценку экстерьерных особенностей коров, отработку рутинных технологических операций при производстве молока.

Выполнение указанного комплекса работ предполагает формирование достоверной информационной базы учетных данных. На основании полученных результатов разрабатывается оптимальная селекционно-технологическая модель развития молочного стада, внедрение которой позволяет достичь перспективного уровня молочной продуктивности и качества молока-сырья.

По результатам выполнения научно-исследовательских проекта в 2020 г. были разработаны инновационные подходы при подборе родительских пар в молочном скотоводстве, предусматривающего использование быков-производителей с препотентными способностями по улучшению желательных экстерьерно-конституциональных и технологических признаков:

— селекционно-генетические мероприятия;

— технологические мероприятия.

Внедрение разработанных рекомендаций по оптимизации селекционно-технологических элементов при производстве молока будет способствовать созданию высокопродуктивного стада молочного скотоводства и улучшению качества молока.

Селекционно-генетические мероприятия.

Селекционно-генетические мероприятия предусматривают внедрение современных методов учета продуктивности молочного скота с учетом апробированных на практике рекомендаций Международного комитета регистрации животных (ICAR), основанных на проведении уникальной идентификации молочного скота, проведении учета продуктивных качеств (надоев молока, приростов живой массы) независимыми сервисными службами (РИСЦ, контроль-ассистентская служба), проведение оценки качества молока независимыми референсными лабораториями (лабораториями селекционного контроля качества молока), проведение оценки экстерьерно-конституциональных качеств животных независимыми специалистами эксперт-бонитерской службы, проведение генетической оценки и ДНК-диагностики бычьего семени для формирования генетически благополучных популяций молочного скота, формирование экспертной информационной базы данных, адаптированной к консолидации с международными базами данных ICARи Interbull, что позволит национальному молочному скотоводству выйти на международный ранок торговли генетическими ресурсами.

Оптимизация подбора родительских пар.При характеристике препотентных качеств быка-производителя принято использовать логическую формулу: фенотип = генотип + окружающая среда. Действительно, реализация генетически обусловленного потенциала молочной продуктивности у коров в значительной степени зависит от условий выращивания в период от рождения до возраста первого осеменения в 15-17-месячном возрасте. Однако, при подборе родительских пар в условиях одного хозяйства, этим фактором можно пренебречь, учитывая то, что маточное поголовье выращивается, как правило, в сходных условиях кормления и содержания. Следовательно, основным фактором, влияющим на продуктивность будущего потомства, становятся наследственные качества отцовской стороны.

Многочисленными исследованиями отечественных и зарубежных исследователей установлены примерные коэффициенты наследования основных линейных статей тела у крупного рогатого скота. Так, наивысшую степень наследования, на уровне 37-42%, имеют такие параметры, как «рост» и «глубина груди». Несколько меньшие коэффициенты наследования, на уровне 28-33%, имеют следующие параметры: «угол наклона крестца», «крепость конституции», «переднее крепление вымени», «высота крепления вымени», «молочные формы», «общая балльная оценка», «глубина вымени». В пределах 21-26% имеют значение коэффициенты наследования следующих статей тела: «ширина седалищных бугров», «ширина прикрепления вымени», «поддерживающая связка вымени», «размещение передних долей вымени», «длина сосков», «вид задних ног сбоку». Наименьшую степень наследования, в пределах 11-15% имеют следующие показатели: «угол наклона копыт», «вид задних ног, сзади».

Таким образом, нужно учитывать, что для улучшения статей экстерьера необходимо проводить индивидуальный подбор родительских пар в нескольких поколениях, как правило, не менее, чем в 2-х поколениях. Поскольку, если исходная балльная оценка животного составляла, например 4-5 баллов и необходимо улучшить этот признак, например до 8-балльной оценки, то с учетом подбора быка-производителя с препотентной способностью улучшать рост потомков на уровне коэффициента не менее 1,0, то с учетом коэффициента наследования 0,4, у потомков можно ожидать улучшения признака в соответствии с выражением: 1,0 х 0,4 = 0,4 (балл). Т.е., для улучшения указанного признака «рост» с 5 до 8 баллов, при использовании быка-производителя с препотентной способностью улучшать рост у потомков на 1 балл, необходимо: 3 (балла) : 0,4 (балла – улучшение за 1 поколение) = 7,5 или 8 поколений. В тоже время, при использовании быка с препотентной способностью повышать данный признак в первом поколении, например, на 2 балла, то расчетный эффект наступит гораздо быстрее. С учетом коэффициента наследования, в первом поколении произойдет улучшение признака на 0,8 баллов: [2 х 0,4 = 0,8]. Следовательно, достижение желательной 8-балльной оценки у потомства произойдет через 4 поколения: [3 : 0,8 = 3,75].

Рис. 45. Гистограмма фактического и желательного модельного профиля линейной оценки коров-первотелок производственного типа голштинской породы, r = 0,43

Аналогичным образом, необходимо рассчитывать желательный эффект селекции и по другим признакам, при этом нужно учитывать и биологические вероятностные механизмы передачи и закрепления хозяйственно-полезных признаков в потомстве – чем выше коэффициент препотентных способностей у быка, тем более вероятен сам факт улучшения желательных признаков в потомстве. Поскольку, при низких препотентных способностях, на уровне коэффициента [1,0], могут проявить свое негативное влияние факторы окружающей среды, о которых упоминалось выше.

Анализ фактического профиля линейной оценки коров-первотелок голштинской породы и модельного профиля линейной оценки коровы производственного типа (рис. 45), рассчитанный по результатам линейной оценки коров различных стадий лактации показывает, что для достижения параметров желательного типа необходимо, за счет применения селекционно-технологических факторов улучшить экстерьерно-конституциональный профиль коров, что обусловит увеличение балльной оценки по следующим линейным статям: длина крестца – повысить на 1,9 балла (+1,9); ширина груди +2,0; глубина груди +1,8; угловатость ребер +2,2; задние ноги, вид сзади +1,5; задние ноги, вид сбоку +1,7; угол постановки копыт +2,1; состояние скакательного сустава +2,3; толщина плюсной кости +0,6; крепление вымени спереди +3,3; высота крепления вымени +2,5; ширина прикрепления вымени +2,5; поддерживающая связка +1,8; глубина вымени +0,8; размещение передних сосков +2,7; длина передних сосков +0,8; расположение задних сосков +0,6; угол наклона крестца +3,0; ширина крестца +2,5; рост + 0,2; обмускуленность +1,2; упитанность +1,6; характеристика передвижения +1,0; темперамент +1,0.

Подбор родительских пар в конкретном молочном стаде необходимо производить на основании результатов линейной оценки коров-первотелок – определить экстерьерно-конституциональные признаки, нуждающиеся в стабилизации и улучшении. Достижение желательного фенотипа модельных селекционно-технологических параметров коровы для конкретного молочного стада будет происходить в зависимости от препотентных способностей быков-улучшателей по указанным показателям (1,5-2,0) и с учетом коэффициентов наследования соответствующих признаков (0,11-0,40) на протяжении 2-4 поколений.

Мониторинг генетических аномалий молочного скота

Работа по мониторингу распространения генетических аномалий в стадах молочного скота Ставропольского края проводилась на базе лаборатории иммуногенетики и ДНК-технологий ФГБНУ ВНИИ овцеводства и козоводства и генетической лаборатории при научно-технологическом парке МГУ, ООО «Мой Ген». В качестве биоматериала от высокопродуктивного молочного скота для ДНК-диагностики кариотипа и мониторинга носительства рецессивных моногенных заболеваний: BLAD, CVM, DUMPS, BC, BY, FXID; исследования носительства летальных гаплотипов HH1, HH3, HH4, HH5, AH1, ассоциированных с нарушением фертильности; исследования носительства гаплотипа, ассоциированного с недостатком холестерина HCD; исследования носительства гаплотипа, ассоциированного с синдромом укороченного жгутика сперматозоида ARMC3B; исследования по определению замен в гене каппа-казеина (k-kas) и бета-казеина (b-kas) использовалась кровь от 145 высокопродуктивных коров, образцы кожи от 161 высокопродуктивной коровы и образцы бычьего семени от 17 быков-производителей различных пород.Для приготовления препаратов хромосом использовался стандартный тест-набор «Лимфокар-1М». Индивидуальное кариотипирование животных осуществлялось на микроскопе OLYMPUSBX43F с использованием специальной компьютерной программы.

В рамках плановой работы по анализу кариотипов крупного рогатого скота было установлено, что все проанализированные животные имели нормальный кариотип 2n=60 (рис. 46, 47).

Принимая во внимание, что анализ аберраций хромосом в соматических клетках сельскохозяйственных животных и, в частности клетках краткосрочных культур лимфоцитов, может являться одним из косвенных методов оценки нестабильности кариотипов животного, нами была исследована частота аберраций хромосом в них у коров молочного направления продуктивности.

Рис. 46. Нормальный кариотип коровы ООО АФСело им. Г.В.Кайшева» Предгорного района	Рис. 47. Нормальный кариотип коровы СПК колхоз-племзавод «Казьминский» Кочубеевского района

В тоже время, проведение ДНК-диагностики бычьего семени, которое используется в регионе, показало наличие у некоторых быков-производителей голштинской породы наличие летальных гаплотипов НН3С, НН5С и гаплотипов CDC, ассоциированных с недостатком холестерина, а также гаплотипа MMAFC, ассоциированного с синдромом укороченного жгутика сперматозоида.

Мониторинг генетических аномалий, ассоциированных с нарушением фертильности у маточного поголовья (лактирующих коров), показал присутствие генетических аномалий BL, CV, BY, CDC у 17 высокопродуктивных коров (13,2% от подопытного поголовья). Проведение кариотипирования показало отсутствие изменений в кариотипе исследуемого поголовья молочного скота (2n=60) и наличие аберрантных клеток у 5,36-5,98% высокопродуктивных коров. Роберстсоновских транслокаций и иных наследуемых аберраций хромосом не обнаружено.

Современное молочное скотоводство ориентируется на широкое применение результатов генетических исследований, которые позволяют проводить подбор родительских пар для получения потомков с заданными биологическими свойствами и технологическими параметрами.

Таблица 20 — Носительство моногенных заболеваний

Для мониторинга степени распространения различных моногенных заболеваний в стаде молочного скота голштинской породы ООО «Агрофирма Село им. Г.В.Кайшева», совместно с генетической лабораторией при МГУ «Мой Ген», была выполнена научно-исследовательская работа по тестированию 12 высокопродуктивных животных на предмет наличия 43 наиболее изученных генетических аномалий, а также изучения аллельных вариантов генов молочной продуктивности.Расшифровка условных обозначений (табл. 20-24) показывает, что при выведении высокопродуктивных молочных генотипов в мире наблюдается широкое распространение различных моногенных заболеваний.

Таблица 21 — Гаплотипы, ассоциированные с нарушением фертильности

Изучались также различные аллельные варианты белков молока (табл. 19). Ген бета-казеина: Аллели A3, E, H2 и I – подсемейство аллели А2, а аллели B, C, F, H1 – подсемейство аллели А1.

Таблица 22 – Аллельные варианты белков молока

Это означает, что если животное имеет генотип A2E по этому гену, то, если необходимо указать генотип животного с учетом только аллелей A1 и А2, этому животному можно ставить генотип A2A2.

Ген каппа-казеина: Аллели B2, C и J – подсемейство аллели B, а аллели A1, D, E, F1, F2, G1, H, I – подсемейство аллели A. Это означает, что если Ваше животное имеет генотип AE по этому гену, то, если необходимо указать генотип животного с учетом только аллелей A и В, этому животному можно ставить генотип AA.

Таблица 23 – Аллельные варианты молочных качеств

Изменчивость признаков молочной продуктивности зависит от большого количество генов и межгенных участков генома, а также от различных эпигенетических факторов. Хотя в практической селекции для отбора и подбора животных используется комплексная оценка племенной ценности с учетом информации о геноме животного целиком, большой научный интерес представляет изучение молекулярно-генетической архитектуры таких сложных количественных признаков, как удой, процент молочного жира и белка.

Научные группы многих стран провели большое количество исследований, направленных на идентификацию локусов количественных признаков или QTL, которые в большей степени влияют на изменчивость тех или иных признаков молочной продуктивности, чем прочие.

В результате, было идентифицировано несколько генов, мутации в которых показали достоверное влияние на изменчивость признаков молочной продуктивности. Одной из первых был идентифицирована мутация в гене DGAT1, кодирующим диацилглицерол О-ацилтрансферазу. Этот пептид катализирует финальный этап синтеза триацилглицеролов: превращение 1,2-диацилглицерола и в триацилглицерол. Мутация в этом гене приводит к увеличению энзиматической активности этого белка и, как результат, к увеличению процента белка и жира в молоке, но к снижению удоя. Ген ABCG2, кодирующий АТФ-связывающую кассету подсемейства G субъединицы 2 постоянно экспрессируется в клетках молочных желез во время лактации и ответственен за секрецию множества белков молока. Мутация в этом гене показала достоверную связь с увеличение процента молочного жира и белка в молоке.

Таблица 24 — Результаты ДНК-диагностики быков-производителей, допущенных к использованию в системе разведения племенного крупного рогатого скота

Таблица 25 – Результаты исследований генетических аномалий у маточного поголовья

Гены GH1и GHR, кодирующие гормон роста и его рецептор соответственно, играют важную роль в контроле лактации, развитие молочных желез, процессах роста и фертильности КРС.

В гене гормона роста было идентифицировано две мутации, которые достоверно связаны с изменчивостью молочной продуктивности: мутация GH_2141 ассоциирована со снижением выхода молочного жира и белка, а мутация GH_2291 ассоциирована с увеличением выхода молочного жира, а также с увеличением процента молочного жира и белка. В гене рецептора гормона роста была идентифицирована мутация, которая приводит к увеличению молочной продуктивности и увеличению выхода казеинов и лактозы, но снижает общий выход молочного жира и белка.

Таблица 26. — Аллельные гены, кодирующие белки молока

и молочные качества