Титульный лист и исполнители
РЕФЕРАТ
Отчет 96 страницы, 6 рисунков, 22 таблиц, 366 источников
БИОЛОГИЧЕСКАЯ ЦЕННОСТЬ, ЭКОЛОГИЧЕСКАЯ БЕЗОПАСНОСТЬ, ОРГАНИЧЕСКАЯ ПРОДУКЦИЯ, БИОЛОГИЧЕСКАЯ ЗАЩИТА.
Цель работы – разработка экологически безопасных средств биологической защиты сельскохозяйственных животных для органического животноводства.
Рассмотрены вопросы:
- Разработка экологически безопасных средств биологической защиты сельскохозяйственных животных для органического животноводства;
- Изучение продуктивных показателей цыплят-бройлеров;
- Определение эффективности использования разработанной технологии.
В ходе опытов установленочто в группах цыплят, где санация воздуха осуществлялась с помощью биоцидных препаратов, что бактериальная контаминация воздуха при использовании технологии программирования окружающей микробиоты птицеводческих помещений имеет более низкое значение и обеспечивает микробную контаминацию на более низком уровне, что позволяет нам сделать заключение о возможности и целесообразности использования биоцидных препаратов для санации воздуха помещений.
Полученные положительные результаты позволяют рекомендовать птицеводческим хозяйствам, при выращивании цыплят-бройлеров, проводить профилактическую санацию воздуха птицеводческих помещений путем применения технологию программирования окружающей микробиоты птицеводческих помещений.
К убою на 35 сутки живая масса бройлеров была выше в группах, где применялась технология программирования окружающей микробиоты птицеводческих помещений. Это обеспечило в группах больший выход мяса птицы в живой массе с 1 кв. м площади пола по сравнению с группами, где санация не осуществлялась.
Расчеты показали, что на каждый вложенный рубль при использовании нового метода обеззараживания воздуха экономическая эффективность ветеринарных мероприятий составляет 25,5 руб.
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность темы.
Среди животного мира птица имеет ряд биологических особенностей. Куры дают такие важные продукты для человека как яйцо и мясо. В настоящее время резервы роста их производства используются недостаточно. Несоответствие условий содержания кур, а особенно племенного молодняка сопровождается прежде всего снижением жизнеспособности и их продуктивности. Создание и совершенствование условий содержания кур, как одного из самых скороспелых видов птицы, на сегодня остается проблемой. При этом в условиях интенсивного птицеводства каждый фактор среды (плотность посадки, световой климат, микроклимат и т.д.) и каждый технологический аспект (метод содержания, режим облучения и т.д.) приобретают важное биологическое и экономическое значение. Изыскание тонких и точных приемов улучшения среды обитания или других прямых воздействий факторов ухода и содержания позволяют достигать высокой продуктивности и сохранности птицы.
Существенное влияние на эффективность выращивания молодняка кур оказывает (среди других многочисленных факторов) «лучистое» голодание или неправильный режим использования источников лучистой энергии. Современная промышленность выпускает большое количество различных модификаций облучателей: ультрафиолетовых, инфракрасных и видимого света. Но комплексную проверку эти облучатели с позиции ветеринарной санитарии не проходят, поэтому данная работа и посвящена решению этих актуальных задач.
В современном мире актуальным направлением является изыскание безвредных в экологическом отношении дезинфицирующих веществ и способов дезинфекции при инкубации куриных эмбрионов.Эффективность мясного птицеводства зависит от оптимального функционирования всех звеньев технологического процесса получения продукции на предприятиях отрасли. Одним из важных звеньев этого процесса является микроклимат птицеводческих помещений. При обеспечении оптимального микроклимата в птичниках повышается сохранность поголовья птицы и её продуктивность.
Кроме этого, актуально корректировать технологические приемы выращивания молодняка птицы в зависимости от его стартового качества, особенностей оборудования и ассортимента кормов.
Для решения этой проблемы нами была следующая цель работы.
Цель и задачи научного исследования. Цель работы – разработать и испытатьсредства биологической защиты сельскохозяйственных животных, а также определить качествопроведенной дезинфекции помещений объектов ветеринарного надзора, где необходимо противодействовать высококонтагиозным болезням, ежегодно наносящим экономический ущерб животноводческой отрасли, в связи с чем поставлены следующие задачи:
- Разработать экологически безопасные средства биологической защиты сельскохозяйственных животных для органического животноводства, разработать опытный образец приборно-лабораторного комплекса концентрации микроорганизмов из воздуха животноводческих помещений;
- Изучить продуктивные показателей цыплят-бройлеров в результате применения средств биологической защиты;
- Определить эффективности использования разработанной технологии.
Научная и практическая ценность работы. Результаты научно-исследовательских, опытно-конструкторских и технологических работ создают теоретическую базу для усовершенствования механизмов повышения продуктивности и качества мяса бройлеров в зависимости от способов содержания, кормления, инактивации и деконтаминации микробиоты воздушной среды птицеводческих помещений с помощью аэрозольного применения сочетанных дезинфектантов формирующих пробиотический фон микробиоценоза птичника с целью реализации концепции органического сельского хозяйства. Позволяют глубже понять характер морфофункциональных изменений, проходящих в организме бройлеров, позволяют понять механизм повышения продуктивных показателей, таких как живая масса, среднесуточный прирост живой массы, затраты кормов на 1 кг прироста живой массы. Они расширяют сведения о регулировании микробного фона птицеводческих помещений комплексными биоцидными препаратами.
Разработка комплексной экологически безопасной технологии производства продукции птицеводства может быть использована в практической деятельности специалистов ветеринарно-санитарного и сельскохозяйственного профиля, в научных целях, являться дополнительным материалом при составлении учебных справочных пособий, чтении лекций и проведении практических занятий в учебных заведениях биологического и сельскохозяйственного профиля.
РАЗДЕЛ I. РАЗРАБОТКА ЭКОЛОГИЧЕСКИ БЕЗОПАСНЫХ СРЕДСТВ БИОЛОГИЧЕСКОЙ ЗАЩИТЫ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ ДЛЯ ОРГАНИЧЕСКОГО ЖИВОТНОВОДСТВА
Ускоренные темпы развития птицеводства, повышенный уровень концентрации птиц в фермерских хозяйствах промышленного типа напрямую способствуют биологическому загрязнению воздуха. Что в свою очередь связано с нарушением процессов, связанных с технологией выращивания или несоблюдением санитарно-гигиенических норм и требований.
Негативное влияние на животных оказывают следующие факторы воздействия внешней среды, а именно – внешний и внутренний климат помещений для содержания животных и птиц, условия содержания, несоблюдение правил плотности посадки, неправильная технология питания и т.д.
Микробиологическое загрязнение воздушного пространства выглядит как значительная опасность, в ветеринарном понимании, для животных и в свою очередь для человека, а именно – контаминация, обусловленная живыми и погибшими микроорганизмами.
Для создания комфортности и безопасности воздуха необходимо осуществление мероприятий, направленных наснижение содержания микрофлоры содержащейся в нем.
Невозможной задачей является максимальная ликвидация патогенной микрофлоры, которая не имеет смысла, посколькусанитарно-значимые микроорганизмы вместе с сельскохозяйственными животными представляют целую экологическую систему их существования, находящихся в полной и закономерной связи друг с другом. Иначе говоря, в условиях животноводческих ферм и предприятий создается индивидуальнаябиологическая связь и чрезвычайно широкий диапазон патогенных воздействий на макро организм сельскохозяйственных животных.
На основании проанализированных данных предоставленных по дезинфекции аэрозолями согласно «Правил проведения дезинфекции и дезинвазии объектов государственного ветеринарного надзора» важно отметить, что сущность дезинфекции аэрозолями заключается в том, что водные растворы химических препаратов с помощью аэрозольных генераторов распыляются до туманообразного состояния – аэрозоля. Аэрозольную обработку применяют для профилактической и вынужденной дезинфекции объектов ветеринарного надзора.
Аэрозоль представляет собой газовую смесь, содержащую в немчастицы твердого или жидкого характера. Агрегатное состояние аэрозоля может быть представлено в виде тумана или пыли.
Таблица 1 – Классификация аэрозолей по размеру частиц
Дезинфекционные аэрозоли получают путем применения пневматических, дисковых и термомеханических генераторов аэрозолей̆. Одними из распространенных аппаратов для аэрозольной дезинфекции пневматического типа считаются: аэрозольный переносной аппарат – АПА-20; турбулирующая аэрозольная насадка – ТАН; струйные аэрозольные генераторы САГ-1, САГ-10; аэрозольные генераторы типа «Каскад», Аист-2м и др.
Воздух птицеводческих помещений дезинфицируют физическими и химическими методами.
Физический метод обеззараживания подразумевает коротковолновое УФ-излучение, озонирование и искусственную ионизацию воздуха, то есть биологические и физиологические процессы, осуществленные с помощью наноэлектрочастиц (электронов, протонов, ионов, фотонов) на уровне живых клеток и микроорганизмов.
В помещениях для выращивания молодняка птицы, содержания родительского и промышленного стада кур, уток, гусей и индеек с целью очистки, дезодорации и обеззараживания воздуха, а также предотвращения загрязнения окружающей среды используют установку «Кулон». Установка снабжена бактерицидной лампой ДБ-30 или ДБ-60, эритемой ЛЭ-30 и световой лампой ЛБ- 30. При напольном содержании птицы облучатели устанавливают в шахматном порядке на высоте 2, 3 м от пола на расстоянии 5-6 м друг от друга. Поток лучей от бактерицидных ламп ДБ-30 или ДБ-60 направляют в верхнюю зону помещения, от эритемных и световых – в нижнюю. Источники бактерицидного ультрафиолетового облучения работают в помещениях для выращивания молодняка 10-12 ч, а для взрослой птицы – 8-9 ч в сутки. При возникновении на птицефабрике аэрогенных инфекционных заболеваний (инфекционный ларинготрахеит, грипп, стафилококкоз и др.) бактерицидные лампы работают круглосуточно до полной ликвидации заболевания.
Химические методы дезинфекции воздуха заключаются в использовании аэрозолей дезинфицирующих веществ. В присутствии животных и птиц применяют высокодисперсные аэрозоли 40%-ой молочной кислоты, 20%-го резорцина или йодтриэтиленгликоля из расчета 0,1-0,5 мл на 1 м3, или аэрозоляхлорскипидара из расчета 2 г хлорной извести и 1 г скипидара на 1 м3, аэрозоли йодиноколя из расчета 1 мл/м3 5%-го раствора препарата при экспозиции 30 мин, антисептик Бактерицид в 0,5%-ной концентрации для аэрозольной дезинфекции птичников с помощью установки АИСТ-2.
Одной очистки воздуха без применения комплексных ветеринарно- санитарных мероприятий в животноводческих помещениях недостаточно. Потому что обработка воздуха, как правило, применяется в качестве заключительного этапа при подготовке животноводческого помещения к производству. Стоит учесть, что для предотвращения нарастания микрофлоры, вызываемой жизнедеятельностью животных и птицы или поступлением микрофлоры извне, особую значимость приобретают превентивные меры и дезинфицирующие вещества, которые можно применять в присутствии животных и птицы, не нарушая производственного процесса.
Воздух всех животноводческих помещений обеспечиваетподходящие условия для развития и формирования микроорганизмов. Микроорганизмымогут находитьсяна частицах пыли,а также содержаться в каплях жидких форм аэрозолей, которые витают в воздухе. Пыль – частица размером до 100 мкм. Пыль с размерными параметрами частиц до 10 мкм представлена взвешенной и витает в воздухе, те, что крупные оседают на поверхностях.
В России птицефабрики имеют одну из важных проблем – вытяжной системой вентиляции, одного из которых на 720 тысяч птиц, в течение часа в атмосферный воздух выбрасывалось только пыли порядком до 41,4 кг, около 174,8 млрд микроорганизмов
Вусловиях птицефабрик, в которых бактериальнаяконтаминация воздуха превышала 80-100 тыс. в 1 м3 воздуха, происходил процесс снижения продуктивности, который приводил к летальному исходу сельскохозяйственных птиц. При содержании птицы на поверхности пола в период осуществления процесса кормления в момент дачи комбикормов рассыпчатой формы в воздухе помещений, где содержится птица увеличивается содержание пыли, а также микроорганизмов в девять-десять раз в сравнении с фоновой концентрацией. Ежедневно в присутствии птицы количество микроорганизмов в воздухе помещений повышается. В нулевой день выращивания цыплят количество микроорганизмов составляло 45-65 тыс. КОЕ/м3, а в возрасте птицы 120-150 дней достигало миллиона в том же объеме воздуха.
Поэтомумероприятия, направленные на профилактику заболеваний, базируются на основном понимании референтного значения количества микроорганизмов в окружающей среде и их свойств.
Согласно методическому указанию 4.2.734-99 «Микробиологический мониторинг производственной среды», важно своевременное определениеколичества микробной контаминации. Существует два метода – пассивный и активный. Пассивный метод подразумевает использование плотных питательных сред в открытых чашках Петри. Микроорганизмы, витающие в воздухев течение пятнадцати минут,осаждаются на поверхность плотной питательной среды. Основным недостатком метода является выявление преимущественно крупных частиц и недостоверность в объеме исследуемой пробы. При активном методе микробиологического контроля воздуха является применение импакторов и центрифужных пробоотборников, с применением плотной агаровой питательной среды. Активный метод наиболее востребован на современном рынке. Широко применяются аэрозольные пробоотборники такие как Флора-100, ПУ-1Б, Biotest RCS и др.
Поэтому, своевременный контрольмикропопуляций микроорганизмовв воздухепредоставляет адекватно оценить степеньбезопасности и своевременно производить профилактику, и исключать возможность возникновения многих инфекционных аэрогенных заболеваний.
Известно, что микроорганизмы могут адаптироваться к различным экологическим, физико-химическим факторам, и поэтому не удивительно, что формируется устойчивость к широко используемым антисептикам и дезинфицирующим средствам. Из основных и защитных механизмов, является способность – образовывать споры и защитные биопленки. В этих случаях, защитные функции микроорганизмов формируют толерантность; развитие защитных функций, позволяет микроорганизмам выживать в присутствии активного агента. В свою очередь, при выборе методов борьбы по предотвращению инфекционных заболеваний необходимо учитывать все особенности микроорганизмов к самосохранению.
Существуют различные способы микробиологического анализа воздуха, которые используются как образцы биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений. Недостоверность способов может быть заключена в том, что существует риск неточной постановки анализа, за счет того, что посев осуществляют в процессе взятия пробы воздуха. Некоторые колониеобразующие единицы могут напрямую не контактировать с поверхностью плотной питательной среды, и могут остаться в своеобразном «дремлющем» состоянии, за счет чего процесс образования колоний может остановиться, что и приводит к неточности постановки анализа. Также некоторая часть микроорганизмов остается незамеченной, что также влияет на конечный результат анализа. Анализ известных способов и устройств позволяет построить приоритетное направление по разработке нового подхода контроля качества аэрозольной дезинфекции, а именно разработка опытного образца биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений.
Предложена разработка, которая сводится к повышению точности контроля качества аэрозольной дезинфекции воздуха животноводческих помещений. Точность исследований повышается за счет применения нового опытного образца биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений, включающего осаждение дезинфицирующих средств на поверхность питательных сред, содержащих в себе тест-культуры микроорганизмов с последующей доставкой проб в термостат и подсчетом результатов – наличие или отсутствие роста микроорганизмов.
Эффект достигается путем применения разработанных нами биотест-систем in vitro, содержащие тест-культуры микроорганизмов, например, группы кишечной палочки (бруцеллез, лейкоз, сальмонеллез и т.д., т.е. малоустойчивые (1-я группа) к хим. дез. средствам), стафилококки (туберкулез, ящур, орнитоз, чума, неклассифицированные вирусы и т.д. – устойчивые и высокоустойчивые (2-, 3-я группа)), микобактерии или спорообразующие аэробы рода Bacillus (сибирская язва, злокачественный отек, брадзот и т.д. – особо устойчивые (четвертая группа)) на питательных средах, например, мясопептонный агар, которые подбираются по группам устойчивости к химическим дезсредствам.
- Опытный образец приборно-лабораторного комплекса концентрации микроорганизмов из воздуха животноводческих помещений (общий вид)
В условиях Учебно-научного вивария факультетов ветеринарной медицины и технологического менеджмента проведена дезинфекция животноводческого помещения объемом 75 м3 с целью испытания опытного образца приборно-лабораторного комплекса концентрации микроорганизмов из воздуха животноводческих помещений.
Дезинфекция проведена аэрозольным методом при помощи генератора холодного тумана SM B-100 (Южная Корея), дезинфицирующим препаратом «MAGOВиродекс». Концентрация препарата – 3 % по действующему веществу. Температура воздуха в помещении – 21-26о С. Температура рабочего раствора составляла 19-20о С. Расход дезинфицирующего раствора – 30 мл/м3. Время экспозиции – 3 ч. После дезинфекции помещение оставлено открытым на 1 ч. Остатки рабочего раствора разбавляли водой. Всего обработано 1 помещение для содержания животных, площадь – 30м2, объем – 75 м3.
Приборно-лабораторный комплекс концентрации микроорганизмов (ПЛККМ) выдерживали в помещении после дезинфекции 1, 2, 3 ч с последующим термостатированием и проведением лабораторных испытаний.
- Аэрозольная дезинфекция генератором холодного тумана SM B-100 (Южная Корея)
Для удобства проведения лабораторных испытаний нами произведена разметка и нумерация опытных образцов биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений (далее – биотест-систем). Нумерация представлена в таблице 2.
Таблица 2 Схема разметки опытных образцов биотест-систем и их расположения в опытном образце ПЛККМ
| Тест-культура | № ряда | Буквенное обозначение | ||||
| a | b | c | d | e | ||
| E. coli | 1 | 1a | 1b | 2c | 2d | 2e |
| 2 | 2a | 2b | 2c | 2d | 2e | |
| S. aureus | 3 | 3a | 3b | 3c | 3d | 3e |
| 4 | 4a | ab | 4c | 4d | 4e | |
В опытный образец биотест-систем в лабораторном ламинарном шкафу (рисунок 14, 15, 16) нами нанесены тест-культуры E. coli шт. 1257 на поверхности скошенной среды Эндо (n=10 (10 (1а-е, 2a-e)), а также тест-культуры S. aureus шт. 209-P на поверхности скошенного солевого мясо-пептонного агара (n=10 (3a-e, 4a-e)), которые поместили в опытный образец ПЛККМ. Кратность испытаний составила 7 раз. Всего исследовано образцов – 420 (E. coli шт. 1257 – 210, S. aureus шт. 209-P – 2010).
Рисунок 3 — Нанесение тест-культур E. coli шт. 1257 и S. aureus шт. 209-P на поверхности скошенной среды Эндо и скошенного солевого мясо-пептонного агара
Таблица 3 — Результаты испытаний
| Наименование показателей | № проб
(n=10) |
Время экспозиции, ч | Результаты испытаний | Нормативное значение | Примечание (погрешность при необходимости) | |
| контроль | опыт | |||||
| Е. coli | 1 | 1 | обнаружено | обнаружено | не допускается | * |
| 2 | 2 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
| 3 | 3 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
| Staph. aureus | 4 | 1 | обнаружено | обнаружено | не допускается | ** |
| 5 | 2 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
| 6 | 3 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
Примечание:* – рост тест-культур в образцах биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений № 2d;
** – рост тест-культур в образцах биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений № 3c, 3e ,4a, 4c, 4d, 4e;
1а-е, 2a-e (Е. coli); 3a-e, 4a-e (Staph. aureus) – номера опытных образцов биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений.
Из таблицы 3 следует, что после 1 ч экспозиции опытного образца ПЛККМ наблюдается рост тест-культур E. coli шт. 1257 в образце биотест-системы in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений № 2d, через 2 и 3 ч экспозиции рост отсутствует. При этом после 1 ч экспозиции наблюдается рост тест-культуры S. aureus шт. 209-P в образцах биотест-систем № 3c, 3e ,4a, 4c, 4d, 4e, а после 2 и 3 ч экспозиции рост культур отсутствует.
Таблица 4 — Результаты испытаний
| Наименование показателей | № проб
(n=10) |
Время экспозиции, ч | Результаты испытаний | Нормативное значение | Примечание (погрешность при необходимости) | |
| контроль | опыт | |||||
| Е. coli | 1 | 1 | обнаружено | обнаружено | не допускается | * |
| 2 | 2 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
| 3 | 3 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
| Staph. aureus | 4 | 1 | обнаружено | обнаружено | не допускается | ** |
| 5 | 2 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
| 6 | 3 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
Примечание:* – рост тест-культур в образцах биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений № 2a, 1d;
** – рост тест-культур в образцах биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений № 3a, 3c, 3d, 3e, 4c, 4d, 4e;
1а-е, 2a-e (Е. coli); 3a-e, 4a-e (Staph. aureus) – номера опытных образцов биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений.
Результаты испытаний, приведенные в таблице 4 позволяют установить, что рост тест-культур происходил только после 1 ч экспозиции в образцах биотест-систем № 2a, 1d и № 3a, 3c, 3d, 3e, 4c, 4d, 4e.
Таблица 5 — Результаты испытаний
| Наименование показателей | № проб
(n=10) |
Время экспозиции, ч | Результаты испытаний | Нормативное значение | Примечание (погрешность при необходимости) | |
| контроль | опыт | |||||
| Е. coli | 1 | 1 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – |
| 2 | 2 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
| 3 | 3 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
| Staph. aureus | 4 | 1 | обнаружено | обнаружено | не допускается | * |
| 5 | 2 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
| 6 | 3 | обнаружено | не обнаружено | не допускается | – | |
Примечание:* – рост тест-культур в образцах биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений № 3c, 4b;
3a-e, 4a-e (Staph. aureus) – номера опытных образцов биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений.
Из результатов испытаний, приведенных в таблице 5 установлено, что после 1, 2, 3 ч экспозиции рост тест-культур E. coli шт. 1257 в образце биотест-системы in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений отсутствует. Несколько иная картина наблюдается в образцах биотест-систем № 3c, 4b в которых после 1 ч экспозиции отмечен рост тест-культуры S. aureus шт. 209-P, при этом при других режимах экспозиции роста не было.
В результате лабораторных испытаний опытного образца ПЛККМ установлено, что эффективность контроля качества аэрозольной дезинфекции подтверждается через 2, 3 и более часов экспозиции. Так, например, трудно поддающимися обеззараживанию были тест-культуры S. aureus шт. 209-P менее устойчив к действию испытуемого препарата, чем E. coli шт. 1257, рост которых наблюдали через 1 ч экспозиции.
- Результат лабораторных испытаний опытного образца ПЛККМ (1 – нет роста тест-культур E. coli шт. 1257; 2 – есть рост тест-культур S. aureus шт. 209-P)
По нашему мнению, опытный образец ПЛККМ, содержащий опытные образцы биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений, обладает высокой эффективностью по определению качества аэрозольной дезинфекции, применение которого позволяет более точно определить качество аэрозольной дезинфекции в труднодоступных местах объектов ветеринарного надзора.
Полученные результаты лабораторных испытаний опытного образца ПЛККМ согласуются с Правилами проведения дезинфекции и дезинвазии объектов государственного ветеринарного надзора (2002).
Микробиологические исследования по определению и влиянию экологически безопасных средств биологической защитысельскохозяйственных животных на условно-патогенную и патогенную микрофлору воздушной среды птичника проводили в условиях лаборатории кафедры эпизоотологии и микробиологии.
Для проведения испытаний было сформировано две группы цыплят-бройлеров кросса «Смена — 8», контрольная и опытная.
Цыплят контрольной и опытной групп выращивали в аналогичных боксах объемом 6,8 м3, площадью пола – 3,5 м2 с напольной технологией содержания. Каждый бокс содержит отдельный вход, санитарный пропускник, оснащенный дезинфицирующим ковриком, регулируемую приточно-вытяжную вентиляционную систему.В качестве подстилочного материала использовали резаную солому.
В определенные сроки выращивания цыплят-бройлеров (1, 7, 14, 21, 28 и 35 суток) был проведен контроль качества дезинфекции бактериологическим методом согласно «Правилам проведения дезинфекции и дезинвазии объектов государственного ветеринарного надзора»и «Рекомендациям по санитарно-микробиологическому исследованию смывов с поверхностей объектов, подлежащих ветеринарному надзору» а также при помощи опытного образца приборно-лабораторного комплекса концентрации микроорганизмов из воздуха животноводческих помещений.
Для бактериологического исследования в научно-испытательную лабораторию кафедры эпизоотологии и микробиологии из вивария кафедры частной зоотехнии, селекции и разведения животных факультета технологического менеджмента ФГБОУ ВО «Ставропольский государственный аграрный университет» доставлены пробы воздуха из 2-х боксов для выращивания цыплят-бройлеров кросса «Смена — 8».
Пробирки с образцами воздуха помещали в термостат для культивирования микроорганизмов при температуре 37°С на 24 часа, после чего производили идентификацию микроорганизмов из полученной культуры и вычисляли средний арифметический показатель по 3-м результатам.
Исследования уровня общей микробной обсемененности свидетельствует об одном из показателей микроклимата смонтированных боксов в зависимости от применения устройств для санации воздуха в присутствии цыплят-бройлеров кросса «Смена — 8».
Проведение испытанийэкологически безопасных средств биологической защиты сельскохозяйственных животныхпроводили в идентичных боксах при выращивании цыплят 1-35 дней.
Эффективность обеззараживания воздуха УФ-облучателем в отношении бактерий группы кишечной палочки, стафилококков и грибов, нами изучалась на 35 день исследований.
В начале были отобраны пробы воздуха из бокса для определения исходной бактериальной контаминации. Затем, проводили санацию воздуха
УФ-облучателем и повторно отбирали пробы воздуха. Из отобранных проб воздуха были сделаны бактериологические посевы на среды МПА,Эндо, солевой МПА и Чапека для определения бактериальной контаминации воздуха, а именно: общее микробное число (ОМЧ), бактерии группы кишечной палочки (БГКП), стафилококки и грибы.
Посевы выращивали в термостате при 37оС в течение 24-48 часов, а грибы – при 22-25оС в течение 5-7 суток, после чего проводили учет выросших колоний и расчет на 1 м3 воздуха. Результаты бактериологических исследований представлены в таблице 6.
Таблица 6 – Эффективность обеззараживания УФ-облучателя
| Изучаемые показатели | Количество бактерий в 1м3 воздуха, тыс | ||
| Исходный фон в боксе | На выходе из устройства | Эффективность обеззараживания воздуха, % | |
| ОМЧ | 48,25±0,12 | 0,27±0,02* | 99,45 |
| БГКП | 6,99±0,12 | 0,03±0,01* | 99,52 |
| Staphylococcus spp. | 11,11±0,63 | 0,09±0,02* | 99,16 |
| Aspergillium spp. | 9,51±0,20 | 0,01±0,01* | 99,86 |
Примечание: статистическая значимость различий данных достоверна с исходным фоном в боксе: * – p<0,05.
Из таблицы 6 видно, что в воздухе бокса общее микробное число составляло 48,25 тыс./м3. Количество бактерий группы кишечной палочки в 1 м3 воздуха составляло 6,99 тыс., а стафилококков и грибов соответственно 11,11 и 9,51 тыс. колоний.
Установлено, что после посадки суточных цыплят, последующей их жизнедеятельности, наличия подстилочного материала, комбикорма, воды и помета уже в первые сутки количество микроорганизмов в 1 м3 воздуха в боксе I и II увеличилось до 2193 и 1706 микробных тел/м3 соответственно. Значительное снижение бактериальной обсемененности воздуха в опытной группе цыплят обеспечивалась УФ-облучателем.
В двух недельном возрасте цыплят – конец стартового периода выращивания мясного молодняка кур, отмечалось снижение общего микробного числа в воздухе боксаII, при работе устройств для санации воздуха, на 32,8% (p <0,05), соответственно, в сравнении с контролем.
В возрасте трех недель отмечалось уменьшение количества микроорганизмов в воздухе бокса II на 35,4% (p <0,05), соответственно, в сравнении с контролем.
На двадцать восьмой день – завершение условного периода роста бройлеров, отмечалось уменьшение количества микроорганизмов в воздухе боксаII на 35,9% (p <0,05), соответственно, в сравнении с контролем.
На тридцать пятый день или к возрасту убоя птицы зафиксировано снижение количество микроорганизмов в воздухе боксов II на 37,6% (p <0,05) соответственно в сравнении с контрольным.
Тем не менее, по нашим данным, в течение 35 дней во всех боксах – зонах выращивания цыплят, микробное давление естественным образом увеличилось от уровня до посадки птицы в среднем в 34 раза.
Полученные положительные результаты позволяют рекомендовать птицеводческим хозяйствам, при выращивании цыплят-бройлеров, проводить профилактическую санацию воздуха птицеводческих помещений путем применения УФ-облучателя.
Результаты исследований согласуются с действующими «Методическими рекомендациями по технологическому проектированию птицеводческих предприятий РД-АПК 1.10.05.04-13».
Так же нами были проведены исследования по влиянию биоцидного препарата МАГО ВИРОДЕКС на организм цыплят-бройлеров и микробный фон.
Так согласно «Правила проведения дезинфекции и дезинвазии объектов государственного ветеринарного надзора» при большинстве вирусных заболеваний показателем качества проведенной дезинфекции служит отсутствие и наличие роста стафилококков.
Результаты проведения микробиологических исследований представлены в таблицах 7-9.
Таблица 7 – Сравнительные данные определения общего микробного числа (ОМЧ) на поверхностях боксов для выращивания бройлеров (КОЕ/см2)
| Возраст птицы,
сутки |
ОМЧ (M±m) | ||
| Бокс I (контроль)
(n=6) |
Бокс II (опыт) | ||
| До аэрозольной дезинфекции
(n=6) |
После аэрозольной дезинфекции
(n=6) |
||
| 0 | 12,83±1,64 | — | 9,00±2,03 |
| 14 | 92,00±12,39 | 56,00±3,53 | 7,00±2,24 |
| 21 | 638,67±24,29 | 116,17±9,63* | 11,33±2,73*# |
| 28 | 901,00±46,43 | 209,50±36,62* | 43,33±4,83*# |
| 35 | 848,50±36,60 | 245,33±16,03* | — |
Примечание. Статистическая значимость различий данных (p<0,05) достоверна: * – опытного бокса до аэрозольной дезинфекции с контрольным; # – после дезинфекции с показателем до дезинфекции в опытном боксе.
По мере роста цыплят повышалась концентрация микроорганизмов как в опытном, так и в контрольном боксах. Однако в контрольном боксе увеличение ОМЧ происходило более быстрыми темпами. Так на 21, 28 и 35 сутки, до проведения аэрозольной дезинфекции, общее микробное число в опытном боксе было достоверно меньше в сравнении с контрольным боксом на 81,8, 76,7 и 71,1 %, соответственно.
После проведения аэрозольной дезинфекции опытного бокса поликомпозиционным дезинфицирующим средством Маго Виродекс / MAGOVirodex в 14-дневном возрасте цыплят изучаемый показатель снизился в 8 раз, в 21-дневном в 10,3 раза, а в 28-дневном в 4,8 раза. По отношению к контрольному боксу концентрация микроорганизмов в опытном боксе после аэрозольной дезинфекциибыла ниже на 92,4%, 98,2 и 95,2% в 14-дневном, 21-дневном и 28-дневном возрасте, соответственно.
Таблица 8 – Сравнительные данные определения концентрации энтеробактерий на поверхностях боксов для выращивания бройлеров (КОЕ/см2).
| Возраст птицы,
сутки |
Энтеробактерии (M±m) | ||
| Бокс I (контроль)
(n=9) |
Бокс II (опыт) | ||
| До аэрозольной дезинфекции
(n=9) |
После аэрозольной дезинфекции
(n=9) |
||
| 0 | 2,00±1,63 | — | 2,00±1,61 |
| 14 | 21,83±4,81 | 16,50±3,08 | 1,83±1,64 |
| 21 | 82,00±4,43 | 38,83±2,83* | 0,33±0,21*# |
| 28 | 78,67±7,94 | 51,33±5,40* | 5,67±1,94*# |
| 35 | 111,00±9,55 | 35,50±4,01* | — |
Примечание. Статистическая значимость различий данных (p<0,05) достоверна: * – опытного бокса до аэрозольной дезинфекции с контрольным; # – после дезинфекции с показателем до дезинфекции в опытном боксе.
Из данных таблицы 5 видно, что количество энтеробактерий на поверхностях в боксах с возрастом птицы увеличивается. Уже к 14-дневному возрасту цыплят их количество увеличилось в 10,9 раза в контрольном боксе и 8,3 в опытном. После проведения первой аэрозольной дезинфекции новым поликомпозиционным средством Маго Виродекс / MAGOVirodex в 14-дневном возрасте цыплят концентрация энтеробактерий в опытном боксе снизилась на 88,9%. После обработки в 21-дневном и 28-дневном возрасте бройлеров отмечено достоверное снижение количества энтеробактерий на 99,2% и 89,0%, соответственно.
Следует отметить, что в опытном боксе с 21 дня выращивания цыплят концентрация энтеробактерий была достоверно ниже, чем в контрольном. Так, в 21-дневном возрасте изучаемый показатель в контрольном боксе был выше на 52,6%, в 28-дневном на 34,8%, а в 35-дневном на 68%, в сравнении с опытным боксом до проведения аэрозольной дезинфекции.
Таблица 9 – Сравнительные данные определения концентрации стафилококков на поверхностях боксов для выращивания бройлеров (КОЕ/см2)
| Возраст птицы,
сутки |
Стафилококки (M±m) | ||
| Бокс I (контроль)
(n=9) |
Бокс II (опыт) | ||
| До аэрозольной дезинфекции
(n=9) |
После аэрозольной дезинфекции
(n=9) |
||
| 0 | 2,17±1,60 | — | 2,00±1,61 |
| 14 | 55,00±5,63 | 10,17±2,71 | 2,17±1,60 |
| 21 | 143,33±9,11 | 64,33±6,84* | 6,17±3,12* |
| 28 | 180,17±44,25 | 73,83±7,24* | 6,67±3,01*# |
| 35 | 182,67±28,06 | 56,67±5,98* | — |
Примечание. Статистическая значимость различий данных (p<0,05) достоверна: * – опытного бокса до аэрозольной дезинфекции с контрольным; # – после дезинфекции с показателем до дезинфекции в опытном боксе.
Из таблицы 6 видно, что с момента посадки цыплят и до конца выращивания количество стафилококков на поверхностях контрольного бокса увеличилось в 84 раза, а в опытном боксе, где применялась аэрозольная дезинфекция воздуха новым поликомпозиционным средством Маго Виродекс / MAGOVirodex в присутствии птицы, их количество увеличилось в 28 раз.
При сравнении показателей до и после проведения аэрозольной дезинфекции в опытном боксе отмечается значительное снижение концентрации стафилококков в 14-дневном возрасте цыплят на 78,7%, в 21-дневном на 90,4% и в 28-дневном на 91,0%.
С 21-дневного возраста цыплят отмечена достоверная разница в концентрации стафилококков на поверхностях контрольного бокса и опытного до проведения аэрозольной дезинфекции. Так на 21, 28 и 35 день выращивания птицы, в опытном боксе изучаемый показатель был ниже, чем в контрольном боксе на 55,1, 59,0 и 69,0%, соответственно.
Таким образом проведенные исследования позволяют сделать вывод что применение экологически безопасных средств биологической защиты сельскохозяйственных животных показывают бактерицидное на микрофлору воздуха животноводческих помещений, и их использование в процессе выращивания цыплят-бройлеров ведет к снижению бактерицидной нагрузки на их организм.
РАЗДЕЛ II. ИЗУЧЕНИЕ ПРОДУКТИВНЫХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ В РЕЗУЛЬТАТЕ ПРИМЕНЕНИЯ СРЕДСТВ БИОЛОГИЧЕСКОЙ ЗАЩИТЫ
Ускоренные темпы развития птицеводства, повышенный уровень концентрации птиц в фермерских хозяйствах промышленного типа напрямую способствуют биологическому загрязнению воздуха. Что в свою очередь связано с нарушением процессов, связанных с технологией выращивания или несоблюдением санитарно-гигиенических норм и требований.
Качество продукции является важным фактором, определяющим здоровье нации и сохранение ее генофонда.
Негативное влияние на животных оказывают следующие факторы воздействия внешней среды, а именно – внешний и внутренний климат помещений для содержания животных и птиц, условия содержания, несоблюдение правил плотности посадки, неправильная технология питания и т.д.
Микробиологическое загрязнение воздушного пространства выглядит как значительная опасность, в ветеринарном понимании, для животных и в свою очередь для человека, а именно – контаминация, обусловленная живыми и погибшими микроорганизмами.
Для создания комфортности и безопасности воздуха необходимо осуществление мероприятий, направленных на снижение содержания микрофлоры содержащейся в нем.
В настоящее время благодаря достижениям селекции в повышении яичной и мясной продуктивности, продолжительность эмбриогенеза кур яичных кроссов увеличилась, а мясных кроссов, наоборот, сократилась в среднем на 6 ч.
Процесс биоконтроля в полном объеме достаточно трудоемкий и без специальных знаний, навыков и оборудования, единообразия приемов, регулярности, оперативной связи с предприятиями, которые производят инкубационные яйца и выращивают молодняк, не всегда достоверно отражает конечные результаты. В связи с этим, он в основном проводится эпизодически, в сокращенном виде или вообще игнорируется.
В современной инкубации относительно температуры существует понятия: температура эмбриона (непосредственно внутри яйца), температура яйца (поверхности скорлупы), температура инкубации (режим работы инкубационной машины). На протяжении значительного периода времени считалось, что определяющим для развития эмбриона является температура инкубации (воздуха внутри машины), и поэтому все инкубационное оборудование было сконструировано именно по этому критерию. Но реальную значимость имеет ощущаемая эмбрионом внутренняя температура яйца. Поскольку измерение температуры эмбриона в процессе инкубации технически затруднительно, поэтому для контроля чаще прибегают к показателю температуры поверхности яйца.
Стоит обратить внимание, что в связи с глобализацией птицеводства, суточный молодняк подвергается транспортировке, длительность которой варьируется от нескольких до одних суток и более.
Факт перевозки даже при минимальной длительности может служить провокацией обезвоживания и развития мочекислого диатеза у суточного молодняка. Поэтому важно учитывать регламент всех манипуляций, особенности используемой тары, эффективность теплоизоляции, обогрева и вентиляции в транспорте – системы жизнеобеспечения птицы.
В случае несоблюдения гигиены яйца или плохой скорлупы, увеличивается возможность проникновения бактерий вовнутрь яйца и, следовательно, под угрозу ставиться безопасность цыпленка в яйце.
Из всех параметров микроклимата в менеджменте выращивания молодняка птицы наибольшее значение имеют температура и влажность воздуха. Отклонения от биологически обоснованных норм неизбежно вызывает средовые или технологические стрессы.
Повышенный уровень смертности стада в возрасте 3-4 дней после посадки при внимательном изучении, объясняется воспалением пупочного кольца (омфалит) и желточного мешка, болезни основными виновниками которых являются Е-коли или другие бактериальные инфекции.
Исследования проводились в виварии кафедры частной зоотехнии, селекции и разведения животных факультета технологического менеджмента ФГБОУ ВО «Ставропольский государственный аграрный университет» в соответствии с актуальными зоотехническими, микробиологическими и физиолого-биохимическими методиками.
Материалом являются суточные клинически здоровые цыплята-бройлеры кросса «Смена — 8»,
Группы опыта формируются по методике ВНИИТИП по принципу аналогов методом случайной выборки с использованием шкалы оценки качества суточного молодняка сельскохозяйственной птицы «Оптистарт» (таблица 10).
Таблица 10 – Субъективно-объективные критерии качества суточных цыплят-бройлеров по 10-балльной шкале «Оптистарт»
| Критерий качества | Описание отклонений от нормы |
| Мышечный тонус шеи, 2 балла | В положении «провис головой вниз» особь не поднимает голову |
| Рефлекс поведения, 2 балла | Особи требуется более двух секунд для переворота со спины на ноги |
| Пупочное кольцо, 2 балла | Не закрыто, кровоточащее, струпик черный или белый более 2,5 мм |
| Клюв, 2 балла | Красные пятна у основания, ноздри забиты белком, уродства – узкий, искривленный, мягкий |
| Живот, 2 балла | Слишком уплотненный (поджатый) или большой |
За сутки до посадки цыплят в боксах произведена россыпь резаной соломенной подстилки из расчета 2 кг/м2 толщиной 3 см [РД-АПК] в трех термоизолированных боксах площадью 3,0 м2, высотой 1,95 м (по РДП 2,5 м), объемом 6,8 м3 (3,0х1,95=5,9), создание необходимой температуры (таблица 11), проверка работы технологического оборудования, заполнение системы поения и кормления.
Боксы оборудованы ниппельными поилками с каплеуловителями и круглыми бункерными кормушками с ограничительным бортиком по периметру поддона, а также автономной системой вытяжной вентиляции. Обогрев цыплят в стартовый период (1-14 суток) производится инфракрасными зеркальными лампами из красного стекла ИКЗК мощностью 250 вт. Освещение — энергосберегающими светильниками холодного белого света.
Для поддержания необходимого уровня влажности воздуха в течение первых 5-7 суток осуществлялось 1-2 раза в час его принудительное механическое увлажнение. Световой режим соблюдался по рекомендациям компании «KobbVantress».
Таблица 11– Рекомендуемые показатели в птицеводческих помещениях
| Показатель | Стадии выращивания птицы | ||
| Старт | Рост | Финиш | |
| Возраст, дни | 0-14 | 15-28 | 29-40 |
| Температура воздуха, оС | 31-35 | 31-20 | 20 |
| Температура подстилки, оС | 32 | 25-30 | 25-30 |
| Относительная влажность, % | 55-75 | 50-65 | 50-65 |
| Максимальная скорость движения воздуха, м/сек | <0,1 | 0,5-0,8 | 1,7-2,5
(в жаркий сезон) |
| Минимальная вентиляция, м3/кг живой массы в час | — | 0,8-1 | — |
| Максимальная вентиляция, м3/кг живой массы в час | — | 5-6 (в жаркий сезон) | — |
| Освещенность, лк | >20 | 20-10 | 10 |
| Кислород О2, % | >19,5 | >19,5 | >19,5 |
| Углекислый газ СО2, % | — | <0,3 | — |
| Угарный газ СО, % | — | <0,01 | — |
| Аммиак NН2, % | — | <0,02 | — |
| Запыленность, мг/м3 | — | <3,4 | — |
Кормление птицыосуществлялось вволю по программе ООО «Агрокормсервис плюс» гранулированными комбикормами «Старт» (крупка, 1-14 дней), «Рост» (гранула, 15-28 дней), «Финиш» (гранула, 29-37 дней) в первые 24-48 часов — с подножной бумаги, до трех-четырех суток – из лотковых кормушек (чистая картонная прокладка для яиц), далее – из бункерных кормушек.
Таблица 12–Питательность рациона кормления цыплят-бройлеров,%
| Компонент | «Старт» (0-14 дн),% |
«Рост» (15-28 дн), % |
«Финиш» (29-35 дн),% |
| Обменная энергия,ккал | 310 | 315 | 320 |
| Обменная энергия,Кдж | 1297,9 | 1318,8 | 1339,8 |
| Сыройпротеин | 22,7 | 21,5 | 19,7 |
| Сырая клетчатка | 4,49 | 4,49 | 4,52 |
| Лизин | 1,23 | 1,11 | 0,94 |
| Метионин | 0,54 | 0,50 | 0,50 |
| Метионин +цистин | 0,84 | 0,79 | 0,76 |
По мере роста и развития цыплят-бройлеров регулировался уровень поилок и кормушек. Верхний уровень бортика стационарной бункерной кормушки тарелочного типа был на уровне груди самых мелких цыплят. Наполнение кормушек на 75% объема кормового поддона для предупреждения россыпей.
На фоне постоянного наличия корма на подножной бумаге и в кормушках 6 раз или каждые 4 часа в первые 5 суток выращивания проводилосьпровокационное предстартовое кормление — добавка корма вручную на бумажную подложку или в кормушку в сочетании с голосовым сопровождением для привлечения цыплят к корму и побуждения его склевывания.
За птицей было установлено наблюдение с регистрацией общеклинического статуса и причин падежа. При наличии патологий, существенно снижающих рост и развитие цыплят (гипотрофия, хондродиплазия, перозис) осуществлялся вынужденный санитарный убой отдельных особей.
В 35 суток по методике ВНИИТИП после 8-часовой предубойной выдержки произведен контрольный убой и анатомическая разделка птицы — по 3 петушка и 3 курочки от каждой группы.
Перед посадкой цыплята-бройлеры были физиологически зрелыми. Средний балл по 10-балльной шкале «Оптистарт» в группе 1 и 2 составил 10,0 баллов, при норме не менее 8,5 баллов. По живой массе они относятся к «гипотрофикам» — средняя живая масса 42,9-44,1 г.
При напольной технологии в закрытых птичниках состояние подстилочного помета в совокупности с вентиляцией и кормлением напрямую влияют на параметры воздушной среды и продуктивность птицы. Азот в помете подвергается аммонификации и денитрификации с выделением аммиака. Аммиак ощущается при концентрации 5 мг/м3, а более 10 мг/м3 или 10 ppm угнетает рост и развитие птицы. Состояние ПП существенно зависит от исходной влажности и влагоемкости подстилочного материала, поголовья и возраста птицы, качества кормов и воды, производительности вентиляции.
Следует отметить, что по мере роста птицы и соответственно увеличением объема выделяемого помета за счет разной его консистенции, напрямую зависящей от эффективности переваримости питательных веществ комбикорма, абсолютная влажность подстилочного помета увеличилась в среднем в 4,8 раза или до 34,4% при оптимальном уровне не более 35,0%. Следует отметить, абсолютная влажность подстилочного помета в группе 2 ниже, чем в группе 1.
Уровень общей микробной обсемененности – один из показателей микроклимата смонтированных боксов.
Сравнительные испытания УФ-облучателяи контрольной группы проведены в идентичных боксах при выращивании цыплят 1–35дней.
Оценка эффективности устройства проводилась по воздействию на бактериальную контаминацию воздуха в боксах. Результаты исследований приведены в таблице 5.
Согласно «Методическим рекомендациям по технологическому проектированию птицеводческих предприятий РД-АПК 1.10.05.04-13» [32], в которых предельно допустимая концентрация микроорганизмов в 1 м³ воздуха составляет: для взрослой птицы 250 тыс. микробных тел, молодняка птицы в возрасте 5-9 недель – 50 тыс. микробных тел, в возрасте 10-14 недель – 100 тыс. микробных тел, а возрасте 15-22 недель – 150 тыс. микробных тел.
Таблица 13 – Бактериальная контаминация воздуха в боксах (тыс. КОЕ/м3) для содержания цыплят-бройлеров
| Возраст цыплят, дн. | Бокс I (контроль)(M±m) | Бокс II
(M±m) |
|---|---|---|
| Перед посадкой | 3,20±0,15 | 2,73±0,18 |
| 1 (n=3) | 21,93±0,27 | 17,06±0,27* |
| 7 (n=3) | 27,60±1,03 | 18,26±0,41* |
| 14 (n=3) | 29,86±0,84 | 20,06±0,27* |
| 21 (n=3) | 33,93±0,33 | 21,93±0,27* |
| 28 (n=3) | 36,73±0,33 | 23,53±0,27* |
| 35 (n=3) | 40,93±0,88 | 25,53±0,52* |
Примечание. Статистическая значимость различий данных (p<0,05) достоверна: * – с I боксом.
Из таблицы 13 следует, что перед посадкой цыплят-бройлеров на выращивание микробный фон в боксах для I и II групп был практически одинаковым. В 1 м³ воздуха содержалось 3,20 и 2,73 тыс. КОЕ/м3 воздуха, что значительно ниже нормы (рисунок 4).
Рисунок 4 –Количество КОЕ/м3 воздуха при выращиваниицыплят-бройлеров
Уже в первые сутки, после поступления суточного молодняка, количество микроорганизмов в 1 м³ воздуха в боксе I и II увеличилось до 21,93 и 17,06 тыс. КОЕ/м3соответственно. В боксе II, где работал УФ-облучатель бактериальная контаминация воздуха была ниже на 22,2 % в сравнении с контролем (бокс I).
На седьмой день исследований наблюдалось снижение количества микроорганизмов в воздухе боксе II на 33,8 %, соответственно, в сравнении с контролем.
В двух недельном возрасте цыплят – конец стартового периода выращивания мясного молодняка кур, отмечалось снижение общего микробного числа в воздухе бокса II на 32,8 %, соответственно, в сравнении с контролем.
В возрасте трех недель отмечалось уменьшение количества микроорганизмов в воздухе бокса II на 35,4 %, соответственно, в сравнении с контролем.
На двадцать восьмой день – завершение условного периода роста бройлеров — отмечалось уменьшение количества микроорганизмов в воздухе бокса II на 35,9 %, соответственно, в сравнении с контролем.
На тридцать пятый день, или к возрасту убоя птицы, зафиксировано снижение количество микроорганизмов в воздухе бокса II на 37,6 % соответственно в сравнении с контрольным.
А. Ф. Дмитриев и В. Ю. Морозов констатируют, что систематический контроль обсемененности воздушной среды микроорганизмами и снижение их пороговой численности представляет собой необходимое условие научной организации ветеринарно-санитарных мероприятий в птицеводстве.
Данные исследований Р. Р. Канифовой подтверждают сведения о том, что в промышленном птицеводстве с увеличением возраста птицы концентрация микроорганизмов в воздухе помещения повышается. Так, в возрасте птицы 120-150 дней она может достичь миллиона бактерий в 1 м³ воздуха.
В ходе проделанного исследования во II группе цыплят, где обеззараживание воздуха осуществлялось УФ-облучателем, при выращивании цыплят-бройлеров кросса «Смена — 8» установлено, что бактериальная контаминация воздуха имеет более низкое значение в сравнении с контрольной группой и обеспечивает микробную контаминацию на более низком уровне. Это позволяет нам сделать заключение о возможности и целесообразности использования устройства для обеззараживания воздуха птицеводческих помещений.
Полученные результаты согласуются с действующими «Методическими рекомендациями по технологическому проектированию птицеводческих предприятий РД-АПК 1.10.05.04-13».
При проведении сравнительных исследований, направленных на изучение влияния обеззараживания воздуха, при помощи экологически безопасных средств– II группа цыплят, была установлена зависимость темпов роста птицы по живой массе в сравнении с данными контрольной группы I, в которой обеззараживание воздуха не осуществлялась.
Результаты исследований по изучению влияния обеззараживания воздуха на продуктивность цыплят-бройлеров кросса «Смена — 8» представлены в таблице 14.
Таблица 14 – Влияние обеззараживания воздуха на продуктивность бройлеров
| Показатель | Возраст бройлеров, сут | Группа I
(контроль) |
Группа II |
| Живая масса, г. | 0(n=45) | 37,47±0,15 | 37,70±0,12 |
| 7(n=45) | 251,27±2,43 | 255,25±4,32 | |
| 14(n=45) | 444,78±9,91 | 476,65±8,41* | |
| 21(n=45) | 858,51±19,17 | 916,61±15,30* | |
| 28(n=45) | 1472,67±39,00 | 1603,50±27,05* | |
| 35(n=45) | 1968,05±32,80 | 2233,08±43,15* | |
| Валовый абсолютный прирост, г | 0-7 | 7483,00 | 7614,00 |
| 0-14 | 14255,90 | 15363,00 | |
| 0-21 | 28736,40 | 30761,80 | |
| 0-28 | 50231,80 | 54802,80 | |
| 0-35 | 67570,40 | 76838,10 | |
| Абсолютный прирост, г | 1930,58 | 2195,37 | |
| Среднесуточный прирост, г | 55,16 | 62,72 | |
| Валовая живая масса, г | 0 | 1311,5 | 1319,60 |
| 7 | 8794,5 | 8933,60 | |
| 14 | 15567,4 | 16682,60 | |
| 21 | 30047,9 | 32081,40 | |
| 28 | 51543,3 | 56122,40 | |
| 35 | 68881,9 | 78157,70 | |
Примечание. Статистическая значимость различий данных (p<0,05) достоверна: * – с I боксом.
Из данных таблицы 14 видно, что в недельном возрасте живая масса цыплят II группы в сравнении с I достоверно не отличалась.
На четырнадцатые сутки отмечена тенденция к увеличению живой массы цыплят II группы на 7,2 % а в 3-недельном возрасте цыплят живая масса была достоверно выше на 6,8 % по сравнению с контрольной группой.
На двадцать восьмые сутки живая масса цыплят II группы была выше на 8,9 % в сравнении с живой массой цыплят I группы.
К тридцать пятому дню живая масса цыплят-бройлеров II группы была достоверно выше на 13,5 %, соответственно, в сравнении с контролем.
Начиная с двух недельного возраста и до конца исследований, во II группе цыплят-бройлеров, где обеззараживание воздуха осуществлялась посредством «Рециркулятора вентилируемого воздуха» отмечено существенное увеличение живой массы цыплят в сравнении с контрольной группой» (рисунок 5).
Рисунок 5 – Динамика изменения живой массы цыплят-бройлеров, г
Известно, что увеличению продуктивных качеств цыплят-бройлеров способствует улучшение программы кормления и содержания птицы, включающие в себя, в том числе оптимизацию зоогигиенических условий и снижение микробиологической составляющей воздуха.
Снижение содержания микрофлоры в воздухе птицеводческих помещений, наряду с другими параметрами внутренней среды помещения– температура, влажность, газовый состав, освещенность, определяет его комфортность и безопасность.
На момент проведения исследований птица в двух группах до конца выращивания была клинически здоровой – охотно принимала корм и воду, признаков угнетения или возбуждения не было, и в совокупности с созданными условиями выращивания установлена 100 %-ная ее сохранность.
При создании биологической чистоты воздушной среды в боксе посредством применения устройства «Рециркулятор вентилируемого воздуха» и сбалансированного кормления, цыплята II группы имели высокую продуктивность: живая масса достигла 2233,08 г, а среднесуточный прирост за весь период выращивания – 62,72г, что в свою очередь больше на 13,7 % по отношению к I группе.
По нашему мнению, применение устройства «Рециркулятор вентилируемого воздуха» в сочетании с анолитом для обеззараживания воздуха, способствует формированию оптимального микроклимата в помещениях при выращивании цыплят-бройлеров – основных производителях мяса птицы в нашей стране.
Анализ полученных результатов исследований позволяет сделать заключение, что метод обеззараживания воздуха с использованием «Рециркулятора вентилируемого воздуха» обеспечивает высокую эффективность за счет снижения уровня бактериальной контаминации, что, по нашему мнению, оказало положительное влияние на продуктивность цыплят-бройлеров кросса «КОББ-500».
В созданных зоогигиенических условиях цыплята-бройлеры росли и развивались в группе 2более интенсивно, чем в группе 1, о чем свидетельствует содержание углекислого газа в воздухе, как показателя жизнедеятельности птицы (рисунок 6). При этом во всех группах (боксах) содержание углекислого газа в воздухе было ниже предельно допустимого уровня – не более 0,25 об%. Это указывает на эффективность приточно-вытяжной, особенной при максимальной производительности с 22 дней.
Рисунок 6 – Содержание в воздухе углекислого газа, об%
В результате вышеизложенного цыплята-бройлеры кросса «Смена — 8» в группе 2 росли и развивались лучше, чем при традиционной технологии в группе 1.
Таблица 15– Показатели продуктивности бройлеровкросса «Смена — 8»
| Показатель | Группа 1 (контроль) | Группа 2 | |
| Начальное поголовье, гол. | 45 | 45 | |
| Конечное поголовье в 35 сут., гол. | 42 | 45 | |
| Среднее поголовье, гол. | 43,5 | 45,0 | |
| Сохранность 0-35 сут., % | 93,3 | 100,0 | |
| Живая масса (М±m), г | суточные | 43,9±0,51 | 44,1±0,48 |
| 7 сут. | 123,9±3,33 | 118,2±2,73 | |
| 14 сут. | 362,1±12,22 | 363,2±9,89 | |
| 21 сут. | 821,3±18,49 | 817,0±18,05 | |
| 28 сут. | 1484,5±29,10 | 1513,1±23,18 | |
| 35 сут. | 2060,8±38,05 | 2113,6±27,31 | |
| от группы 1, % | — | 102,6 | |
| Выход живой массы с 1 м2, кг | 22,2 | 23,8 | |
| От группы 1, % | — | 107,2 | |
| Среднесуточный прирост, г | 57,6 | 59,1 | |
| От группы 1, % | — | 102,6 | |
| Затраты корма на прирост, кг | 1,67 | 1,56 | |
| От группы 1, % | — | 93,4 | |
| EPEF | 329 | 387 | |
| От группы 1, % | — | 117,6 | |
Наибольшая в условиях опыта сохранность птицы была в группе 2, в которой использовали для дезинфекции воздуха экологически безопасные средства. Причинами падежа цыплят в группе 1 был асцит.
К убою в 35 суток живая масса бройлеров в группе 2 была равна 2113,6 г, что больше групп 1 на 52,8 г или на 2,6% соответственно. Это обеспечило в группе 2 больший выход мяса птицы в живой массе с 1 кв. м площади пола по сравнению с группой 1 на 7,2%. Реализация генетического потенциала бройлеров кросса «Смена — 8» в группе 1 был реализован на 96,1%, а в группе 2 98,6%. Уровень более 90% соответствует высокому уровню интенсивности производства.
Среднесуточный прирост живой масса за 35 дней выращивания в группе 2 составил 59,1 г, что больше групп 1на 2,6%.
С производственной точки зрения важно, что созданные технологические, зоогигиенические и кормовые условия обеспечили достаточно высокую конверсию корма в мясо птицы в живой массе – в среднем 1,60 кг/кг при норме кросса «Смена — 8» по рекомендации фирмы «Авиаген» 1,55 кг/кг. При этом в группе 2 затраты корма на 1 кг прироста живой массы были ниже, чем в группах 1 на 6,6 %.
В результате индекс эффективности выращивания цыплят-бройлеров, объединяющий сохранность птицы к убою, убойную живую массу, срок выращивания и затраты корма на 1 кг прироста живой массы (EPEF) в группе 1 по сравнению с группой 1 больше на 58 ед.
В соответствии с поставленной целью исследования заслуживают внимания данные о мясных качествах птицы (таблица 16).
Таблица 16– Мясные качества цыплят-бройлеров кросса «Смена — 8»
| Показатель | Группа 1 | Групп 2 |
| петушки | ||
| Убойная масса, г | 2126,7 | 2203,3 |
| Убойный выход, % | 72,3 | 71,4 |
| Выход, сердца, % | 0,49 | 0,58 |
| Выход печени, % | 2,06 | 2,51 |
| Выход мускульного желудка, % | 1,05 | 1,19 |
| Выход потрохов, % | 3,60 | 4,28 |
| курочки | ||
| Убойная масса, г | 1930,0 | 2006,7 |
| Убойный выход, % | 71,5 | 72,3 |
| Выход, сердца, % | 0,53 | 0,49 |
| Выход печени, % | 2,39 | 2,14 |
| Выход мускульного желудка, % | 1,26 | 1,24 |
| Выход потрохов, % | 4,21 | 3,87 |
| в среднем | ||
| Убойная масса, г | 2028,4 | 2105,0 |
| Убойный выход, % | 71,9 | 71,9 |
| Выход, сердца, % | 0,51 | 0,54 |
| Выход печени, % | 2,23 | 2,33 |
| Выход мускульного желудка, % | 1,16 | 1,22 |
| Выход потрохов, % | 3,91 | 4,08 |
Анализ приведенных данных показывает большее влияние на мясные качества цыплят-бройлеров пола птицы, чем технологических и зоогигиенических условий выращивания. Так по совокупности двух групп исследования убойный выход потрошенных тушек петушков и курочек находится в узком диапазоне – 70,3-72,3% и 71,4-72,3%.
Результаты сравнительных исследований по определению воздействия аэрозольной дезинфекции воздушной среды 0,1% раствором поликомпозиционного дезинфицирующего средства Маго Виродекс / MAGOVirodex в присутствии птицы на продуктивные показатели цыплят-бройлеров представлены в таблицах 13-14.
Таблица 17 — Зоотехнические показатели выращивания цыплят-бройлеров.
| Показатель | Контроль | Опыт | Разница значений показателей | |
| Живая масса, г | суточные | 37,6 ± 0,17 | 37,7 ± 0,18 | + 0,1 |
| 7 сутки | 142,4 ± 4,34 | 135,7 ± 3,34 | — 6,7 | |
| 14 сутки | 416 ± 16,36 | 386 ± 17,24 | — 30 | |
| 21 сутки | 866 ± 25,91 | 801 ± 19,20 | — 65 | |
| 28 сутки | 1443 ± 38,67 | 1382 ± 30,26 | — 61 | |
| 35 сутки
♂- петушки ♀- курочки Среднее арифметическое значение живой массы, г |
2155 ± 49,1
2319 ± 72,6 2028 ± 46,1 2173 |
2077 ± 44,5
2282 ± 56,4 1950 ± 42,4 2116 |
-78
-37 — 78 -57 |
|
| Абсолютный прирост живой массы, кг | 67,6 | 69,3 | + 1,7 | |
| Среднесуточный прирост, г | 60,5 | 58,3 | — 2,2 | |
| Затраты корма на 1 кг прироста, кг | 1,66 | 1,66 | — | |
| Сохранность 0-35 сутки, % | 91,4 | 97,1 | + 5,7 | |
| EPEF | 339 | 347 | + 8 | |
Средняя живая масса цыплят опытной группы была ниже, чем в контрольной на протяжении всего периода выращивания (таблица 2). Так, в 7-дневном возрасте цыплят разница по живой массе составила 4,7%, а к окончанию опыта – 3,6%, в пользу контрольной группы. Но разница в данном показателе во все периоды была не достоверной. Среднесуточный прирост живой массы цыплят опытной группы в сравнении с контролем был также ниже на 3,6%.
При разделении цыплят по полу в 35-дневном возрасте было установлено, что в опытной группе курочек было 61,8% от общего поголовья, а в контрольной группе — 56,3%. В связи с тем, что темпы роста курочек несколько ниже, чем у петушков, соответственно и средняя живая масса в группе была ниже. Это подтверждается и показателем среднего арифметического значения живой массы между петушками и курочками в 35-дневном возрасте, который в опытной группе был ниже лишь на 2,6%, в сравнении с контролем. Кроме того, отставание в приросте живой массы у цыплят опытной группы началось до проведения первой аэрозольной дезинфекции растворомМаго Виродекс / MAGOVirodex и было не достоверным, поэтому оно не связано с изучаемым фактором.
Цыплята опытной группы отличались более высокой жизнеспособностью. Сохранность поголовья в опытной группе была выше, чем в контрольной на 5,7%. В связи с этим абсолютный прирост живой массы опытной группы был выше на 2,5%, в сравнении с контрольной.Индекс эффективности производства мяса птицы в опытной группе превзошел данный показатель в контрольной группе на8 единиц.
В таблице 3 представлены данные по убойному выходу мяса и массе внутренних органов цыплят-бройлеров в опыте.
Убойный выход петушков опытной группы был незначительно ниже, чем в контрольной группе на 0,4%. Масса внутренних органов находилась в пределах физиологической нормы и значимых различий между группами по данному показателю отмечено не было.
Таблица 18 – Убойный выход и масса внутренних органов цыплят-бройлеров
| Показатель | Контроль | Опыт | ||
| ♂ | ♀ | ♂ | ♀ | |
| Предубойная живая масса, г | 2270 ±4,8 | 1991 ±18,7 | 2168 ±28,1 | 1854 ±19,6 |
| Масса потрошеной тушки, г | 1643 ±7,8 | 1437 ±16,3 | 1562 ±23,0 | 1340 ±18,7 |
| Убойный выход, % | 72,4 | 72,2 | 72,0 | 72,2 |
| Сердце, г
% от живой массы |
13,20 ±0,5
0,58 |
12,03 ±0,5
0,61 |
14,3 ±0,9
0,66 |
11,5 ±1,1
0,62 |
| Печень, г
% от живой массы |
57,43 ±5,7
2,53 |
49,8 ±0,8
2,50 |
55,5 ±4,2
2,56 |
46,3 ±2,3
2,50 |
| Мышечный желудок, г
% от живой массы |
26,83 ±1,8
1,18 |
21,7 ±0,4
1,09 |
26,3 ±1,2
1,21 |
19,2 ±0,5
1,03 |
Основной показатель проведенных сравнительных испытаний – продуктивность, характеристики которой определяются максимальными привесами живой массы мясных пород кросса «Смена — 8».
Известно, что увеличению продуктивных качеств цыплят-бройлеров способствует улучшение программы кормления и содержания птицы, включающее в себя, в том числе, оптимизацию зоогигиенических условий и снижение микробиологической составляющей воздуха.
Снижение содержания микрофлоры в воздухе птицеводческих помещений наряду с другими параметрами внутренней среды помещения: температура, влажность, газовый состав, освещенность – определяет его комфортность и безопасность.
В эксперименте птица во всех группах исследования до конца выращивания была клинически здоровой – охотно принимала корм и воду, признаков угнетения или возбуждения не было, и в совокупности с созданными условиями выращивания установлена 100 % ее сохранность.
При создании биологической чистоты воздушной среды в боксе посредством применения УФ-облучателяи сбалансированного кормления цыплята IIIгруппы имели высокую продуктивность: живая масса достигла 2233,08 г, а среднесуточный прирост за весь период выращивания – 62,72 г, что в свою очередь больше на 7,1 и 13,7 % по отношению к I и II группам, при показателях 55,16 и 58,12 г.
По нашему мнению, применение экологически безопасных средств биологической защиты сельскохозяйственных животных способствует формированию оптимального микроклимата в помещениях при выращивании цыплят-бройлеров – основных производителей мяса птицы в нашей стране.
Анализ полученных результатов исследований позволяет сделать заключение, что экологически безопасные средства обеспечивают высокую эффективность за счет снижения уровня бактериальной нагрузки, что, по нашему мнению, оказало положительное влияние на продуктивность бройлеров кросса «Смена — 8».
Изучение влияния обеззараживания воздуха на качество мяса бройлеров
Для изучения влияния обеззараживания воздуха экологически безопасныхмсредств на качество мяса цыплят-бройлеров в возрасте 35суток был произведен контрольный убой птицы.
Из I и II групп отбирали по три тушки цыплят-бройлеров для подтверждения соответствия требованиям ТР ТС 021 «О безопасности пищевой продукции». Дополнительно были исследованы органолептические показатели тушек цыплят-бройлеров.
Одним из главных критериев оценки качества полученной продукции при изучении влияния обеззараживания воздуха, является исследование органолептических показателей мяса тушек цыплят-бройлеров кросса «Смена — 8» по ГОСТ 31962–2013 (таблица 19).
Таблица 19 –Органолептические показатели тушек бройлеров
кросса «Смена — 8»по ГОСТ 31962–2013
| Показатель | Требования НД | Группа I | Группа II |
|---|---|---|---|
| Упитанность | Мышцы развиты хорошо. Форма груди округлая. Киль грудной кости не выделяется. Отложения подкожного жира в области нижней части живота незначительные | Соответствует | Соответствует |
| Запах | Свойственный свежему мясу данного вида птицы | Соответствует | Соответствует |
| Цвет мышечной ткани | От бледно-розового до розового | Бледно-розового цвета | Бледно-розового цвета |
| Цвет кожи | Бледно-желтый с розовым оттенком или без него | Бледно-желтого цвета с розовым оттенком | Бледно-желтого цвета с розовым оттенком |
| Цвет подкожного и внутреннего жира |
Бледно-желтый или желтый | Бледно-желтого цвета | Бледно-желтого цвета |
При исследовании установлено, что органолептические показатели мяса тушек цыплят-бройлеров кросса «Смена — 8» соответствуют требованиям нормативной документации согласно ГОСТ 31962–2013 и достоверных отличий в исследуемых группах не отмечалось.
Показатели пищевой ценности мяса птицы исследуемых цыплят-бройлеров кросса «Смена — 8» представлены в таблице 20.
Таблица 20 –Пищевая ценность мяса цыплят-бройлеров по ГОСТ 31962–2013
| Показатель | Допускаемые
уровни |
Группа I | Группа II |
| Массовая доля жира | Не более 14 % | 2,9 % | 2,3 % |
| Массовая доля белка | Не менее 16 % | 19,1 % | 19,7 % |
В соответствии с ГОСТ31962–2013 для реализации и производства продуктов питания немаловажными показателями являются массовая доля жира и белка в мясе птицы.
Из данных таблицы 20 следует, что массовая доля жира в мясе птицы контрольной группы была выше на 20,7 % в сравнении с содержанием жира в мясе цыплят II группы.
Массовая доля белка в мясе птицы контрольной группы была ниже на 1,6 % по сравнению с содержанием его во II группе.
Содержание жира в мясе птицы IIгруппы было ниже на 20,7 % чем в I группе, а массовая доля белка в мясе птицы IIгруппы выше на 3,1 %, чем в I группе. Отсюда следует, что мясо цыплят-бройлеров II группы является более полноценным.
Снижение уровня бактериальной контаминации воздуха способствует лучшему обмену веществ, уменьшению отложения жира в мясе и повышению продуктивных качеств за счет лучшего формирования мышечной массы. Результаты наших исследований совпадают с данными А. И. Мирошниковой (2016), Т. С. Александровой (2011) соответствуют справочным данным ГОСТ 31962–2013.
Таблица 21– Результаты микробиологического анализа тушек бройлеров кросса «Смена — 8» по ТР ТС 021/2011
| Показатель | Допускаемые уровни | Группа I | Группа II |
|---|---|---|---|
| КМАФАнМ, КОЕ/г | 1 · 103 | 5 · 102 | 2 · 102 |
| БГКП, коли-формы | Не допускается 0,1 г | Не обнаружено | Не обнаружено |
| St. aureus | Не допускается в 1,0 г продукта | Не обнаружено | Не обнаружено |
| Сульфитредуцирующиеклостридии | Не допускается в 0,1 г | Не обнаружено | Не обнаружено |
| L. monocitogenes | В 25 г продукта не допускаются | Не обнаружено | Не обнаружено |
| Патогенные,вт.ч. сальмонеллы | В 25 г продукта не допускаются | Не обнаружено | Не обнаружено |
Из таблицы 21 следует, что показатели бактериальной контаминации мяса цыплят-бройлеров при использовании устройства для обеззараживания воздуха соответствуют нормам ТР ТС 021/2011.
При анализе полученных результатов исследований мы можем предположить, что снижение бактериальной контаминации воздуха в птицеводческих помещениях при помощи новых экологически безопасных средств биологической защиты сельскохозяйственных животных с применением нейтрального анолита при выращивании бройлеров кросса «Смена — 8» способствует интенсивному обмену веществ, повышению продуктивных качеств птицы за счет формирования мышечной массы посредством наибольшей массовой доли белка. Применение прибора для обеззараживания воздуха не оказывает отрицательного влияния на органолептические, микробиологические показатели и пищевую ценность мяса бройлеров. Следовательно, внедрение в технологию выращивания цыплят нового устройства для обеззараживания воздуха птицеводческих помещений, птицефабрик позволит получать экологически чистую и доброкачественную продукцию.
В связи с изученными показателями, полученными в ходе опытов при использовании новых экологически безопасных средств биологической защиты сельскохозяйственных животных, применяемых в присутствии птицы в период полного цикла выращивания, мы сделали вывод, что устройство способствует повышению продуктивности и сохранности цыплят-бройлеров.
Раздел III. Определение эффективности использования разработанной технологии
Экономический эффект применения новых биоцидных препаратов в соответствии с «Методикой определения экономической эффективности ветеринарных мероприятий», утвержденной Департаментом ветеринарии.
Эффективность оценивали по сумме полученной дополнительной стоимости продукции цыплят и себестоимости дезинфекционной обработки воздуха на базе птичника Ставропольского края после применения нового метода обеззараживания воздуха в корпусе в присутствии птицы (опытная группа) в сравнении с аналогичным корпусом без использования его (контрольная группа) (таблица 22).
Таблица 22 – Результат проведенных испытаний при выращивании цыплят-бройлеров
| Показатели | Контрольная группа | Опытная группа |
| Количество цыплят, гол | 15000 | 15000 |
| Сохранность, % | 94,7 | 97,5 |
| Живая масса на убойный период, г/гол | 1894,5 | 2166,5 |
| Валовая живая масса, кг | 26911,4 | 31685,1 |
| Цикл выращивания, дн | 35 | 35 |
| Цена за 1 кг живой массы, руб | 85 | 85 |
| Общая цена, руб. | 2287469,0 | 2693233,5 |
| Цена устройства, руб. | — | 9000 |
| Цена за комплект (8 шт.) устройств, руб. | — | 72000 |
| Срок службы, лет | — | 5 |
| Потребляемая мощность устройства, кВт·ч | — | 0,2 |
| Время работы в световой день, ч | — | 4 |
| Время работы устройств за цикл выращивания, ч | — | 1120 |
| Цена за 1 кВт·ч, руб. | — | 4,33 |
| Цена за цикл выращивания, руб. | — | 969,92 |
Экономическую эффективность оценивали в конце цикла выращивания, по истечению 35 дней.
Дс = (2,2 × 97,5 – 1,9 × 94,7) × 85 × 15000 ÷ 100 = 440767,5 руб.;
Зв = 937 + 303,6 + 14400 + 969,92 = 16610,5 руб.;
Эв = 440767,5 – 16610,5 = 424157 руб.;
Эв = 424157 × 1000 / 15000 = 28277,1 руб.
Таким образом, экономический эффект, полученный при применении новойтехнология по использованию новых биоцидных препаратов нового поколения, составляет 28277,1 руб. на каждые 1000 голов.
Эр = 424157 / 16610,5 = 25,5 руб.
Расчеты показали, что на каждый вложенный рубль при использовании нового метода обеззараживания воздуха экономическая эффективность ветеринарных мероприятий составляет 25,5 руб.
Таким образом, применение новой технология по использованию новых биоцидных препаратов нового поколенияв процессе выращивания цыплят бройлеров является целесообразным и экономически оправданным.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
В результате выполнения научно-исследовательских работ, впервые разработан опытный образец биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений. Изготовлен опытный образец приборно-лабораторного комплекса концентрации микроорганизмов из воздуха животноводческих помещений. Испытан в лабораторных условиях опытный образец приборно-лабораторного комплекса концентрации микроорганизмов из воздуха животноводческих помещений, получены положительные результаты и определена эффективность применении опытного образца приборно-лабораторного комплекса концентрации микроорганизмов из воздуха животноводческих помещений. Впервые разработана технология применения опытного образца приборно-лабораторного комплекса концентрации микроорганизмов из воздуха животноводческих помещений. Установлено, что применение приборно-лабораторного комплекса концентрации микроорганизмов из воздуха животноводческих помещений в производственных условиях позволяет наиболее быстро и точно проводить контроль качества аэрозольной дезинфекции, что способствует формированию наиболее лучших зоогигиенических условий на примере птицеводческих помещений, что в свою очередь благотворно отражается на продуктивности бройлеров. Инновацией разработки является новый экспресс метод контроля качества аэрозольной дезинфекции.
Предлагаемое изобретение по сравнению с прототипом и другими известными техническими решениями имеет следующие преимущества:
– легко стерилизуется всеми общепринятыми способами;
– просто в изготовлении и эксплуатации;
– доступна возможность исследования без использования микробиологического бокса, тем самым, исключая необходимость использования лабораторных условий, что существенно сократит время на проведение исследований;
– обладает повышенной эффективностью проведения исследований (не менее 70 %);
– обладает высокой надежностью хранения и транспортировки биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции;
– обеспечивает экологическую безопасность окружающей среды, за счет расположения в герметичной камере;
– возможность работы с микроорганизмами 3–4 группы патогенности;
– низкие затраты на комплектующие;
– позволять проводить испытания при температуре от +2 до +40 оС.
Полученные результаты свидетельствуют о том, что при общепринятом методе определения качества аэрозольной дезинфекции отсутствует возможность проверить качество выполненных работ в труднодоступных местах, при этом применение опытного образца биотест-систем in vitro для определения качества аэрозольной дезинфекции помещений позволяет более точно и эффективно определить качество аэрозольной дезинфекции помещений.
Результаты исследований создают теоретическую базу для усовершенствования методов и способов контроля качества аэрозольной дезинфекции животноводческих помещений. Позволяют глубже понять характер микробиологических изменений, проходящих при проведении аэрозольной дезинфекции. Они формируют знания по безопасным методам и способам контроля качества аэрозольной дезинфекции помещений промышленного типа. Опытный образец приборно-лабораторного комплекса концентрации микроорганизмов из воздуха животноводческих помещений может быть использован в деятельности специалистов ветеринарно-санитарного профиля, для составления эффективных схем проведения профилактических ветеринарно-санитарных мероприятий.
Установлено, что снижение микробного числа воздуха в птицеводческих помещениях с помощью экологически безопасных средств биологической защиты сельскохозяйственных животных при выращивании бройлеров кросса «Смена — 8» способствует интенсивному обмену веществ, повышению продуктивных качеств птицы за счет формирования мышечной массы посредством наибольшей массовой доли белка. Применение разработанного прибора для обеззараживания воздуха не оказывает отрицательного влияния на органолептические, микробиологические показатели и пищевую ценность мяса бройлеров. Следовательно, внедрение в технологию выращивания цыплят нового устройства для обеззараживания воздуха птицеводческих помещений позволит получать экологически чистую и доброкачественную продукцию.
Поэтому приобретает актуальность вопрос изучения санитарно-микробиологической оценки качества воздушной среды животноводческих помещений. Объективная и всесторонняя оценка биологического фона воздушной среды может быть проведена при условии применения наиболее эффективных методов обнаружения и анализа бактериальных, вирусных и других аэрозолей.